0 閲覧数 • 4:48 分 • July 8th, 2025
死にかけた細胞は、細胞外に無細胞またはcfDNAの断片を放出します。cfDNA断片のサイズ分布を分析するには、マルチウェルDNAチップ(小型毛細管電気泳動システム)から始めます。チップ内の各ウェルには、その底部に多数のマイクロ流体分離チャネルが含まれています。
多糖類ゲルマトリックスと蛍光色素混合物をチップ上の指定されたウェルにロードします。空のシリンジを備えたプライミングアセンブリにチップを配置します。プライミングアセンブリを閉じ、プランジャーを押し下げて下向きの圧力を作り出します。これにより、ウェルからそれぞれの分離チャネルへの粘性ゲルの侵入が容易になります。
アセンブリを開き、残りのウェルにcfDNA懸濁液と既知のサイズ範囲のDNAラダーを充填します。チップをフラグメントアナライザーに取り付けます。強い電圧により、サンプルウェルからゲルマトリックスがあらかじめロードされた分離チャネルにcfDNA懸濁液が入り、そこでDNAが色素で染色されます。
DNAがカソードからアノードに向かって移動すると、小さなDNAフラグメントはゲル内をより速く移動しますが、大きなフラグメントはよりゆっくりと移動します。これにより、DNA断片のサイズベースの分離が可能になります。検出器は断片から相対蛍光を検出し、それをDNAラダーと比較し、電気フェログラム(cfDNAのサイズ分布を示すグラフ)を生成します。
DNA断片のサイズを分析するには、まずベースプレートをチッププライミングステーションに固定し、クリップを最も低い位置に調整します。新しい高感度DNAチップをチッププライミングステーションに配置し、「G」チップウェルの底に9マイクロリットルのゲル色素混合物を加えます。プランジャーを1ミリリットルに配置し、チッププライミングステーションを閉じます。カチッと音がするまでラッチのロックを閉じ、タイマーを60秒に設定し、クリップで保持されるまでプランジャーを押し下げます。
ちょうど60秒後、クリップリリース機構を使用してプランジャーを解放します。プランジャーが少なくとも 300 マイクロリットルのマークまで後退したら、5 秒間待ってから、プランジャーをゆっくりと 1 ミリリットルの位置まで後退させます。チッププライミングステーションを開いて9マイクロリットルのゲル色素混合物を除去し、ゲルを高感度DNAチップ「G」ウェルの底に移します。
DNAマーカーをロードするには、5マイクロリットルのDNAマーカーをラダーウェルと11個のサンプルウェルに分注します。ラダーとサンプルをロードするには、1マイクロリットルのDNAラダーをDNAラダーウェルに加え、1マイクロリットルのサンプルを使用済みのサンプルウェルに、1マイクロリットルのマーカーを未使用のサンプルウェルに追加します。高感度DNAチップをアダプターに水平に置き、毎分2,400回転で60秒間ボルテックスし、高感度DNAチップを固定する膨らみが損傷しないように注意します。
ボルテックス後、電極カートリッジが正しく挿入されていること、チップセレクターが二本鎖高感度DNAに配置されていることを確認します。高感度DNAチップをレセプタクルに慎重に取り付け、蓋を閉める前に、電極カートリッジがチップのウェルに正確に収まっていることを確認します。フラグメントアナライザーソフトウェア画面には、チップが挿入され、蓋が閉まっていることを示すチップアイコンが表示されます。
分析を開始するには、アッセイメニューを開き、二本鎖DNA高感度アッセイを選択します。サンプル名を表に入力し、「開始」をクリックしてチップの実行を開始します。実行の最後に、適切な実験室の慣行に従って、すぐにチップを取り外して廃棄します。
本記事では、マルチウェルDNAチップを用いて、死滅細胞から放出されるセルフリーDNA(cfDNA)フラグメントのサイズ分布を分析する方法について解説します。このプロセスでは、チップにゲルマトリックスとcfDNAサンプルをロードし、次にフラグメントサイズに基づいた電気泳動分離を行います。
自動キャピラリー電気泳動は、cfDNAフラグメントの精密なサイジングを可能にし、オンコロジーにおけるバイオマーカー探索のターゲットバリデーションを支援します。本手法は定量的なサイズ分布データを提供し、リキッドバイオプシーアッセイのメカニズム的なリスク低減に寄与します。また、フラグメントプロファイルを細胞死の生物学的メカニズムと結びつけることで、初期探索における予測の信頼性を高めます。
この手法は、バイオマーカーの妥当性を判断するためのサイジングデータを提供することで、仮説検証からリード同定に至るディスカバリー・コンティニュアムに適合します。
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最終更新:29 8月 2026