0 閲覧数 • 4:07 分 • July 8th, 2025
液滴デジタルポリメラーゼ連鎖反応またはdPCRテクノロジーは、単一のPCR反応の反応物を数百万のナノ液滴PCR反応に分割します。このマスパーティショニングとそれに続く増幅により、野生型DNAの大きなバックグラウンドに対して微量の変異DNAが検出され、がんの早期発見が可能になります。
まず、蛍光標識オリゴヌクレオチドを含むdPCRマスターミックスを、他のPCR試薬および液滴安定化オイルとともに吸引します。気泡を避けるために、このマスターミックスをPCRストリップチューブ内の各ウェルの底に直接添加します。次に、反応混合物にDNAサンプルを加え、ピペットで複数回混合します。
次に、反応混合物全体を液滴発生装置の特殊なチップに移します。新しいPCRストリップチューブを液滴生成装置に取り付けます。液滴発生器は、サンプルとオイルを組み合わせて、液滴間の相互汚染を防ぐカプセル化された領域を持つ個別のナノ液滴を形成します。
液滴化が完了したら、PCRストリップチューブをサーマルサイクラーに移して、標的DNAを増幅します。続いて、蛍光検出器を含む液滴リーダーにPCR産物をロードし、蛍光陽性および陰性の液滴をカウントします。陽性液滴の数を使用して、サンプル中のターゲットDNA濃度を計算できます。
液滴デジタルPCR手順を開始する前に、ベンチスペースと機器を10%漂白剤と70%エタノールで洗浄し、液滴安定化油を除くすべての試薬を穏やかにボルテックスして短時間遠心分離します。圧縮窒素ガスボンベが液滴発生装置に取り付けられていること、およびシリンダータンクが90ポンド/平方インチに設定されていることを確認します。38マイクロリットルのデジタルPCR反応混合物を8ウェルPCRチューブストリップの各ウェルの底に直接加え、清潔なピペットチップで気泡を取り除きます。
12マイクロリットルのプレ増幅DNAサンプルをチューブストリップの適切なウェルに3回ずつ加えます。全容量を10回静かにピペットで移動させ、反応混合物をDNAサンプルと混合し、各ウェルから液滴生成装置チップの対応するA〜Hチャネルに全容量をピペットで移動させます。新しいPCRチューブストリップを液滴生成装置に挿入し、液滴生成装置チップIDを装置コンピューターのソフトウェアにスキャンします。
次に、「実行の開始」をクリックしてサンプルの液滴化を開始します。液滴化が完了したら、PCRチューブストリップを取り外し、チューブストリップキャップを装着します。チューブストリップをサーマルサイクラーに移し、ウェルあたり80マイクロリットルの水を含む別のチューブストリップとチューブのバランスをとります。次に、適切なサーマルサイクル条件下でサーマルサイクラーを実行します。ストリップキャップを高速キャップに交換してください。
熱サイクルが完了したら、チューブストリップを定量装置に移します。装置ソフトウェアの「Setup a run」をクリックし、チューブストリップを定量装置に入れます。金属シールドを新しい定量装置チップの上に置きます。チップIDを装置にスキャンし、チップを機械に挿入します。器具の蓋を閉めます。コンピュータソフトウェアで、デジタルPCRランの名前と8つのチャンネルのそれぞれの名前を入力します。次に、「高速モード」を選択し、「開始」をクリックして定量化を開始します。
本記事では、がん診断における変異DNA検出のためのドロップレットデジタルポリメラーゼ連鎖反応(dPCR)技術の応用について解説します。この手法では、単一のPCR反応を数百万個のナノドロップレットに分画することで、標的DNAの増幅および定量が可能になります。
ドロップレットデジタルPCR(dPCR)により、循環DNA中の希少な腫瘍変異の精密な定量が可能となり、がんの早期発見および微小残存病変(MRD)のモニタリングがサポートされます。この技術はPCR反応を数百万個のナノドロップレットに分画することで、野生型が大量に存在する背景においても、変異アレルを高感度に検出することを可能にします。この能力により、低頻度の遺伝子改変を定量的かつ再現性高く測定でき、オンコロジー領域の創薬におけるターゲット検証の信頼性が向上します。
dPCRは、ターゲットの検証からリード最適化、そして前臨床候補の選定に至るオンコロジー創薬のコンティニュアムに適合し、各段階で定量的な核酸測定を提供します。
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最終更新:22 8月 2026