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レシピエント細胞の懸濁液をチューブに取り込むことから始めます。目的の遺伝子を含む誘導性プラスミドをチューブに補充します。この遺伝子の発現は、テトラサイクリンオペレーターまたはTetOに融合した上流のプロモーター配列の制御下にあり、テトラサイクリン応答性要素またはTREを形成します。
さらに、組換えテトラサイクリントランスアクチベータータンパク質またはtTAをコードする遺伝子を含む調節性テトラサイクリンオフベクターを追加します。細胞-DNAミックスをエレクトロポレートして電気パルスを使用して、細胞によるプラスミドの取り込みを促進します。
エレクトロポレーション後、細胞をプレーティングし、所望の時間インキュベートします。核に入ると、テトラサイクリンオフベクターはtTAタンパク質を発現します。tTAは、TetレプレッサーまたはTetR部分とウイルスVP16転写トランスアクチベータードメインを含むハイブリッドタンパク質です。
TetR 部分は TRE 要素の TetO 配列に結合し、VP16 ドメインは RNA ポリメラーゼが下流の DNA から mRNA を合成することを可能にし、最終的に遺伝子発現につながります。培養プレート内の増殖培地をドキシサイクリン含有培地に交換し、インキュベートします。
合成テトラサイクリン類似体であるドキシサイクリンは、TetRタンパク質に結合し、そのコンフォメーションを変化させます。この変化により、TetR タンパク質と TetO 配列との相互作用が破壊され、標的遺伝子の発現が阻害されます。
100 mm ペトリ皿に 1 x 10 6 細胞/cm2 で、完全な最小必須培地の存在下で細胞を播種します。湿度のある5%二酸化炭素で摂氏37度で24時間培養します。翌日、抗生物質を含まない500マイクロリットルの完全培地を新しい12ウェルプレートの各ウェルに加え、プレートを摂氏37度で30分間予熱します。
このインキュベーション中に、1マイクログラムの応答プラスミドと1マイクログラムの調節ベクターを、ウェルあたり1つの1.5ミリリットルチューブに加えます。肺胞上皮細胞をカルシウムまたはマグネシウムを含まない摂氏37度のPBSのウェルあたり10ミリリットルで洗浄し、細胞培養インキュベーターで2〜4分間、摂氏37度の0.05%トリプシンのウェルあたり5ミリリットルで細胞を処理します。
細胞が剥離したら、抗生物質を含まない完全培地のウェルあたり10ミリリットルでトリプシンを中和し、細胞を新しい50ミリリットルのチューブに集めます。4ミリリットルの新鮮な培地で皿を洗浄して残りの細胞を収集し、遠心分離によって細胞を沈殿させます。
ペレットを1ミリリットルのPBSに再懸濁して計数し、細胞を再度遠心分離します。ペレットを4 x 107細胞/mLの再懸濁バッファーの密度で再懸濁し、プラスミドとベクターの各チューブに4 x 105細胞を穏やかに混合して添加します。エレクトロポレーション装置にチューブを1本入れ、チューブに3.5ミリリットルの電解バッファーを入れます。
ピストンを完全に押し下げて、金メッキの電極チップをピペットに挿入し、チューブの内容物を穏やかに混合します。ピペットで細胞を慎重に吸引し、カチッという音がするまでピペットをエレクトロポレーションステーションに挿入します。肺胞上皮細胞に適切なエレクトロポレーションプロトコルを選択し、タッチスクリーンの[開始]を押します。
トランスフェクションの直後に、ピペットを取り外し、細胞を予熱した12ウェルプレートの1つのウェルに移します。すべての細胞がエレクトロポレーションされ、プレーティングされたら、プレートを細胞培養インキュベーターに入れ、2日後に各ウェルの上清を抗生物質を含む完全培地に置き換えます。トランスフェクションの成功は、蛍光顕微鏡またはコントロールベクターを使用したフローサイトメトリーで観察されるEGFPの発現によって確認できます。
目的の遺伝子の転写を阻害するために、トランスフェクションの72時間後に、上清を、新たに調製したドキシサイクリン1ミリリットルあたり1マイクログラムを添加した完全培地のウェルあたり1ミリリットルに置き換えます。目的の遺伝子のmRNA半減期を評価するには、プレートを15分から6時間まで細胞培養インキュベーターに戻します。
市販のフェノールクロロホルムRNA抽出キットからの500マイクロリットルの溶解バッファーで細胞を溶解する前に、1ミリリットルの氷冷PBSで1ウェルを洗浄し、各実験時点で穏やかに振とうします。次に、キットの指示に従ってRNAを単離し、230、260、および280ナノメートルで分光光度法によってRNA収量と純度を決定します。
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