0 閲覧数 • 4:14 分 • July 8th, 2025
ストレスによって活性化された心臓線維芽細胞は、損傷した領域に過剰なコラーゲンを沈着させ、線維症と呼ばれる状態になり、心臓機能が損なわれます。
線維症の程度を視覚化するには、まずパラフィン包埋心臓ブロックを切片します。セクションをスライドに配置します。スライドを加熱してパラフィンを溶かし、切片を接着させます。
スライドをキシロールに浸して組織を脱パラフィン化します。切片を降りるアルコール強度で処理し、切片を再水和し、その後の水性染色成分の結合を助けます。
タンパク質を架橋する酸性固定液で切片をインキュベートし、組織構造を安定させます。水ですすぎ、残留固定剤を取り除きます。
スライドをヘマトキシリン溶液に浸します。カチオン性色素は負に帯電したDNAに結合し、核を青く染めます。余分な汚れを取り除くために水ですすいでください。
正に帯電した細胞質タンパク質やコラーゲンと相互作用し、赤く染色する小分子陰イオン色素である酸性フクシンポンソーでスライドをインキュベートします。余分な汚れを取り除くために、希釈した酢酸で処理します。
スライドをホスホモリブジン酸-オレンジG溶液に浸します。低分子色素であるオレンジGは、赤血球をオレンジレッドに染色します。高分子酸であるホスホモリブジン酸は、コラーゲンから低分子染料を排出し、コラーゲンを無色にします。
分子がコラーゲン線維に結合し、緑色に着色する薄緑色の染料で切片をインキュベートします。顕微鏡下では、線維化領域が緑色に見え、過剰なコラーゲン沈着を示します。
この手順では、手動ミクロトームを使用してパラフィンブロックから5ミクロンの厚さの組織切片を調製します。次に、各心臓セクションから1枚のスライドを、各ラットについて、Masson-Goldner Trichrome染色で染色します。パラフィン切片の場合は、オーブンで摂氏60度で組織を溶かします。ヒュームフードの下で、キシロールで2回、それぞれ10分間脱パラフィンします。
次に、100%エタノール、95%エタノール、70%エタノール、そして蒸留水でそれぞれ3分間再水和します。脱パラフィン切片、および凍結切片の場合は、ブアン溶液で一晩固定します。翌朝、流水道水で10〜15分間すすいでください。その後、蒸留水でもう一度すすいでください。
ブアンでの固定は、素晴らしいゴールドナー染色を確実にするための最も重要なステップです。
それらをメイヤーのヘマトキシリンで3分間インキュベートします。3分後、スライドを取り出し、蒸留水に5分間放置します。その後、ポンソー酸フクシンで5分間インキュベートし、1%酢酸で1分間すすぎます。
次に、切片をリン酸オレンジGで1分間インキュベートし、次にそれらを1%酢酸で1分間すすぎます。薄緑色の染料で10分間インキュベートし、その後、1%酢酸で1分間すすぎます。最後に、切片を70%エタノールで30秒間、95%エタノールで30秒間、100%エタノールで5分間連続して脱水します。樹脂封入剤を組織切片に1滴塗布し、カバーガラスで覆い、乾燥させます。
本記事では、心臓組織における線維化の可視化手法について、特にストレス活性化心筋線維芽細胞による過剰なコラーゲン沈着に焦点を当てて解説します。この手順では、顕微鏡下で線維化領域を強調するために、いくつかの染色技法を用います。
心臓組織におけるコラーゲン沈着を可視化することで、線維化に関連する治療仮説のメカニズム的なリスク低減が可能になります。この組織学的アプローチは、細胞外マトリックスのリモデリングに関する定量的で再現性のあるリードアウトを提供し、ターゲットの検証をサポートします。これにより、心血管薬物開発における前臨床モデルの選定やポートフォリオの優先順位付けに有用な知見が得られます。
本手法は、心血管疾患モデルにおけるターゲット変調の組織病理学的確認を提供することにより、創薬から前臨床に至る一連の流れ(discovery-to-preclinical continuum)に適合します。
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最終更新:29 8月 2026