ホスホリパーゼ活性アッセイ:Anthopleura dowii由来の粗毒抽出物中のホスホリパーゼ活性を測定するためのゲル拡散アッセイ

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リン脂質は、リン酸基を含む複雑な脂質です。これらの分子は、ホスホリパーゼと呼ばれる酵素によって加水分解されます。

ホスホリパーゼ活性アッセイを実行するには、酵素の基質として機能するリン脂質が豊富な卵黄エマルジョンを取ります。塩化ナトリウムを含む温かいアガロース溶液に卵黄を加えると、その後のステップで卵黄タンパク質の安定性が向上します。

塩化カルシウムと蛍光染料 - ローダミンを混合物に補充します。混合物をペトリプレートに注ぎます。凝固すると、卵黄リン脂質はアガロースゲルマトリックス中に均一に分布したままです。

チューブを使用して、ゲル内に適切な距離のウェルを作成します。ホスホリパーゼを含む粗タンパク質抽出物をさまざまな濃度でウェルに加えます。プレートを生理学的温度でインキュベートします。

抽出物からのホスホリパーゼは、ゲル内に放射状に拡散します。ゲル中のカルシウムイオンがホスホリパーゼに結合し、酵素を活性化します。この酵素はリン脂質を切断し、遊離脂肪酸を生成します。ゲル中のローダミン分子は、放出された脂肪酸と複合体を形成します。

紫外線で照らすと、井戸の周囲に蛍光ハローの出現を観察します。ハローは酵素活性の存在を確認します。ホスホリパーゼの濃度が高くなると、酵素分子はさらに拡散し、ハローの直径が大きくなります。

鶏卵1個を1%SDSで蒸留水で洗浄し、無菌条件下で卵黄を卵白から分離します。

溶液A、B、C、およびDを調製します。溶液Bに500マイクロリットルの溶液AとCを加え、および100マイクロリットルの溶液Dを加えます。それらを混合し、各ペトリ皿に25ミリリットルを注ぎます。無菌条件下で溶液が固まるのを待ち、細いチューブで直径約2〜3ミリメートルのウェルを作ります。

1つのウェルにネガティブコントロールとして合計20マイクロリットルのリン酸緩衝液を追加し、別のウェルにポジティブコントロールとして20マイクロリットルの決定されたホスホリパーゼを追加します。

異なる量の粗抽出物タンパク質(5、15、25、35、および45マイクログラム)を残りのウェルに入れ、それぞれ20マイクロリットルの最終容量に入れます。摂氏37度で20時間インキュベートします。

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最終更新:15 8月 2026