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細胞コミュニケーションを促進するために、細胞は細胞外小胞、EV(脂質膜で囲まれたナノサイズの構造)を分泌します。EV は、高分子や代謝産物などのさまざまな生物学的貨物を運び、レシピエント細胞に送達します。
共焦点顕微鏡を使用して細胞によるEV取り込みを視覚化するには、まず、新たに単離されたEVを採取します。これらのEVは、蛍光プローブに結合した抗体で事前に標識されており、その後簡単に視覚化できます。
接着したレシピエント細胞培養物に適切な量の蛍光標識EVを追加します。希望の期間インキュベートします。インキュベーション中、標識されたEVの亜集団が細胞表面に表面的に付着し、他のEVは内在化されます。
細胞細胞質を標識するために別の蛍光色素を追加し、内在化されたEVとレシピエント細胞に付着したEVを区別するのに役立ちます。細胞を共焦点顕微鏡下に置き、Z軸に沿って異なる焦点面で画像化し、サンプルの厚さ全体に一連の光学切片を取得します。
この光学セクションのコレクション(Zスタック)をコンパイルして、高解像度の3次元サンプル画像を形成します。仮想レンダリング(イメージング後のプロセス)を適用して、細胞表面を再構築します。
表面的に付着したEVと内面化されたEVを区別するには、それらを異なる色合いのドットとしてレンダリングします。細胞体積とそれらによって内在化されたEVの数を計算し、細胞あたりのEV取り込みを定量化します。
4 x 104 PC3細胞を1ミリリットル培地で35ミリリットルの皿に播種します。最適な細胞培養条件で細胞を一晩接着させます。翌日、接着した細胞をエクソソーム枯渇培地で2回洗浄します。
蛍光標識EVをエキソソーム枯渇培地を用いて適切な濃度に希釈した後、希釈したEVを接着した標的細胞に加え、所望の実験時間インキュベートする。エクソソームフリー培地で細胞を3回洗浄して内在化していないEVを除去した後、接着した細胞の細胞質を1μg/mLのCMTMRで標識し、最適な細胞培養条件でインキュベートします。
生細胞イメージングの場合は、調製した細胞をオンステージインキュベーターに入れます。コントロールサンプルに基づいてイメージングパラメータを設定した後、ターゲット細胞の深さとz方向のスタッキングサイズの範囲を決定して、3D共焦点画像を取得します。次に、画像取得を、細胞特異的色素とEV特異的色素の両方の複数のzスタック画像に同時に設定します。
画像処理には、自動画像処理ソフトウェアを活用します。
セルの仮想サーフェスを構築するには、「新しいサーフェスを追加」をクリックします。仮想セルサーフェスを構成するには、[+ 追加] ボタンをクリックし、[フィルターの種類] として [品質] を選択します。目視検査で下限の適切な値を閾値にしきい値し、上限の最大値を設定し、「完了」ボタンをクリックします。
次に、EV の仮想ドットを構築するには、「新しいスポットを追加」ボタンをクリックします。「アルゴリズム設定」で、「異なるスポットサイズ」と「最短距離計算」を選択します。次に、「次へ」をクリックし、「ソースチャンネル」として「チャンネル1 - Alexa Fluor 488」を選択します。「スポット検出」の「推定XY直径」に適切な値を入力し、「次へ」をクリックします。
仮想EVドットを設定するには、「+追加」ボタンをクリックし、「フィルタータイプ」として「品質」を選択します。目視検査で「下限閾値」を設定し、「次へ」をクリックします。「スポット領域タイプ」で「絶対強度」を選択し、「次へ」をクリックします。
EVドットの領域を閾値設定するには、目視検査で「領域閾値」に適切な値を入力します。「リージョンボリューム」の下の「直径」を選択し、「完了」をクリックします。
構築されたサーフェス内のグループ化されたスポットを分割するには、構築された「スポット」をクリックし、「フィルター」に移動します。次に、「追加」ボタンをクリックし、「フィルタータイプ」として「サーフェスまでの最短距離サーフェス = サーフェス 1」を選択します。
下限の最低しきい値と上限の適切な値を設定したら、「セクションを新しいスポットに 複製する」ボタンをクリックします。
セル内のEVを自動カウントするには、構築された「スポット1選択」をクリックし、「統計」に移動して、「スポットの総数」から値をエクスポートします。
セルの数を取得するには、構築された「サーフェス 1」をクリックし、「統計」に移動し、「全体」から「サーフェスの総数」の値をエクスポートします。最後に、「統計」の下の「詳細」タブに移動して、ボリュームをエクスポートします。