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セプチンは、末端アミノドメインとカルボキシルドメインに隣接するGTP結合ドメインで構成される細胞骨格タンパク質であり、多様な細胞機能のために内原形質膜でフィラメントと高次構造に自己組織化する固有の能力を持っています。
生物学的膜模倣物を使用してin vitroでセプチンと膜の相互作用を研究するには、切断された微量遠心チューブを入手します。カットされていない平らな縁に紫外線接着剤を塗布し、プラズマ処理された親水性ガラスカバーガラスの上に置きます。紫外線が当たると接着剤が硬化し、開いた反応チャンバーが形成されます。
一価および二価の陽イオン含有緩衝液を添加した、所望の脂質組成の単分散両性イオン性単層脂質小胞をチャンバーに移します。陽イオンは、脂質小胞がカバーガラスに吸着して蓄積することを容易にします。チャンバーを軽く振って小胞の破裂を開始し、インキュベートします。
破裂
した小胞は展開し、親水性のヘッドグループを介してカバーガラスに融合し、平面の脂質二重層パッチを形成します。パッチの端は残りの小胞の破裂を引き起こし、連続的な平面支持脂質二重層であるSLBを生成します。適切なバッファーで余分な未吸着小胞を除去します。
次に、蛍光標識セプチン懸濁液をクラウディング剤含有バッファーとともに添加し、インキュベートします。クラウディング剤により、セプチンがSLBコーティングされたカバーガラスに堆積します。最適な条件下では、セプチンはSLB内の脂質と結合し、組織化された構造に集合する可能性があります。
全反射蛍光顕微鏡を使用してカバーガラスを選択的に照射し、SLB上に付着した蛍光標識セプチンを励起し、セプチンの集合を観察します。
スライドのプラズマ洗浄を開始するには、プラズマクリーナーを酸素で5分間パージして、ラインとチャンバーから空気を除去します。乾いたカバーガラススライドをセラミッククレードルに配置します。パージ中は、マイクロカバースライドガラスに不活性ガスを流し、ほこりや微粒子を除去します。
カバーガラスがチャンバーの長辺と平行になるように、プラズマチャンバーの背面にクレードルを置きます。プラズマクリーナーを酸素で最大出力で15分間実行します。
チャンバーの準備のために、0.2ミリリットルのPCRチューブのつや消し部分のすぐ下のキャップを切り取ります。PCRチューブの縁をUV活性化接着剤で塗装し、チューブの内側を避けます。プラズマ洗浄したカバーガラスの中央に接着したPCRチューブをそっと置き、チャンバーを長波長のUV光の下に5〜7分間置き、接着剤を硬化させます。
二重層を形成するには、試薬をウェルに加えます。チャンバーを左右に軽く振ってSUVを乱し、摂氏37度で20分間インキュベートします。
インキュベーション後、ピペッティングして余分な脂質を洗い流すことにより、二重層を150マイクロリットルのSLBBで6回すすぎます。次に、セプチンとインキュベートする前に、二重層を150マイクロリットルの反応緩衝液で6回洗浄します。
最後の洗浄ステップで、反応バッファーを除去し、ウェルに75マイクロリットルを残します。SSBで希釈した25マイクロリットルのセプチンを加え、TIRF顕微鏡で画像化します。