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核RNA結合タンパク質(RBP)は、明確に定義された3次元構造と、安定性の低い本質的に無秩序な領域(IDR)を持つ秩序ある領域で構成される多機能タンパク質です。
いくつかの神経変性疾患では、IDR 特異的変異により RBP が細胞質に誤局在し、異常に弱い相互作用に関与し、動的で膜のない封入体が形成されます - 相分離と呼ばれる現象。最終的に、これらの封入体は有毒で不溶性の凝集体に成熟し、ニューロンの機能不全と変性を引き起こします。
光遺伝学を使用して in vivo での RBP 相分離を調査するには、麻酔され、絨毛膜を脱したトランスジェニックゼブラフィッシュ幼虫から始めて、蛍光レポーターと青色光感受性光受容体ドメインに融合した IDR 変異 RBP を適切なバッファーで発現します。
次に、幼虫を溶融アガロース滴に横方向に取り付けて、脊髄イメージングを行います。アガロースを固化させ、幼虫を固定します。共焦点顕微鏡を使用して、脊髄画像を取得し、神経核内に局在する蛍光RBPを視覚化します。
次に、幼虫をアガロースから取り出し、バッファーを含むマルチウェルプレートに移します。プレートを最適化された青色発光ダイオードパネルに配置し、幼虫を照らします。
ブルーライトにさらされると、変異RBPは細胞質に誤局在し、そこで光受容体ドメインがオリゴマー化してクラスターを形成し、RBPのIDRを近接させ、膜のない封入体への自己会合を促進します。
照明後、幼虫をアガロースに埋め込み、その脊髄を画像化します。蛍光RBPは、神経細胞質内に分散した個別のコンパートメントとして現れます。
光遺伝学的TDP-43を発現するゼブラフィッシュ幼虫のイメージングのために、二重トランスジェニックフィッシュを脱絨毛膜化し、トリカン1マイクロリットルあたり250マイクログラムを含むE3バッファーで麻酔します。
次に、1マイクロリットルあたり250マイクログラムの3-アミノ安息香酸エチルメタンスルホン酸塩を含む1%低融点アガロースを摂氏42度で予熱し、ガラスベース皿にアガロースを一滴垂らします。ガラス皿のドーム型アガロース滴の直径は8〜10ミリメートルでなければなりません。
次に、パスツールピペットを使用して、麻酔をかけた魚をガラスベースの皿のアガロースに加えます。魚と一緒にアガロースに添加されるE3バッファーの量を最小限に抑えます。次に、数回ピペッティングして混合します。
アガロースの固化中は、脊髄が適切な水平位置になるように、注射器の針を使用して魚を横向きに保ちます。アガロースが固まったら、ドーム型のアガロースマウントフィッシュにE3バッファーを数滴加えます。
20倍水浸対物レンズを搭載した共焦点顕微鏡を使用して、脊髄の連続共焦点Z切片を取得します。関心領域の魚の腹側の総排出腔を含めて、時点全体の脊髄セグメントを識別および比較するための参照として含めます。
イメージングが完了したらすぐに、注射器の針を使用してアガロースを慎重に割り、アガロースから魚を取り除きます。魚がアガロースに埋め込まれる時間はできるだけ短くしてくださいが、アガロースが埋め込まれる時間が30分未満であっても、魚の生存率には影響しません。
7.5ミリリットルのE3バッファーを6ウェルディッシュの1つのウェルに加え、イメージ化されたダブルトランスジェニックフィッシュをそのウェルに入れます。次に、皿とLEDパネルをスペーサーで5ミリ離して皿をLEDパネルに置き、青色のLEDライトを点灯します。
二重トランスジェニック魚を、照明のない対照魚のためにアルミホイルで覆われた別の6ウェル皿に入れます。希望の照明時間の後、前に示したように、照明された魚の脊髄を画像化します。