$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
骨再生中に、骨芽細胞(骨形成細胞)が骨折部位に動員され、そこで増殖して類骨(膠原性マトリックス)を分泌します。成熟期間の後、骨芽細胞はカルシウムイオンとリン酸イオンの調節された沈着によって類骨を石灰化し、新しい骨合成を開始します。
in
vitroで骨芽細胞の石灰化の程度を定量化するには、適切な培地で一次骨芽細胞懸濁液を入手します。懸濁液を多孔質骨移植片代替ディスクを含むマルチウェルプレートに播種し、インキュベートします。
ディスクは足場として機能し、細胞の接着と増殖を可能にします。
使用済み培地を骨形成サプリメントを含む新しい培地と交換します。長時間インキュベートします。骨形成サプリメントは、骨芽細胞を刺激してコラーゲンマトリックスを生成し、その後石灰化します。
固定後、石灰化マトリックスをアリザリンレッドS、ARS、溶液で染色します。負に帯電した色素であるARSは、マトリックス内の正に帯電したカルシウムイオンに結合し、赤い複合体を形成します。余分な汚れを取り除きます。プレートを画像化して、骨芽細胞の石灰化を示唆する赤色のカルシウム沈着物を検出します。
次に、塩化セチルピリジニウム、CPC、溶液を加えます。ミセル状の正に帯電した界面活性剤であるCPCは、マトリックス中のカルシウムイオンに結合した反対に帯電したARSとヘッド基を介して錯体化し、溶液への色素抽出を促進します。
溶液を収集して遠心分離します。CPC-色素複合体を含む上清をマルチウェルプレートに移し、マイクロプレートリーダーを使用して吸光度を測定します。
CPC-色素錯体の吸光度は、マトリックス中のカルシウム沈着物の量、骨芽細胞の石灰化の程度の推定値を示します。
染色したベータリン酸三カルシウムディスクを新しいウェルに移し、フラットベッドスキャナーでプレートをスキャンして石灰化を記録します。
画像キャプチャ後、250マイクロリットルの10%塩化セチルピリジニウム溶液を加え、15分間振とうしてアリザリンレッドS色素を抽出します。次に、溶液をウェルから個々の1.5ミリリットルチューブに移し、室温で17,000倍gで5分間遠心分離します。
抽出物を10%塩化セチルピリジニウム溶液で1.5ミリリットルチューブで1:10〜1:20の希釈比で希釈します。次に、希釈した各サンプル300マイクロリットルを96ウェルプレートのウェルに移します。10%塩化セチルピリジニウムのみを含む2つのブランクウェルを含めます。
次に、40ミリモルのアリザリンレッドS染色液を10%塩化セチルピリジニウム溶液で希釈して標準曲線を生成することにより、4〜400マイクロモルの範囲の7つのアリザリンレッドS標準標準物質を調製します。
各標準品を300マイクロリットルをプレートにロードします。最後に、サンプル、ブランク、および参照標準の吸光度を520ナノメートルで読み取ります。