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蚊の摂食アッセイは、血液粉を調製し、所望の濃度の活性試験化合物を除細化されたウサギの血液に加えることから開始します。血粉にはフィブリンが不足しており、血液凝固を防ぎます。
この血液粉を膜供給ユニットのデリバリーポートにロードします。加熱ユニットに取り付けて、血液を最適な温度に保ちます。膜を乳酸溶液でコーティングします。
このユニットを、飢えたメスの蚊の成虫がいるケージに入れて、餌を与える可能性を高めます。暗闇の中でインキュベートします。乳酸は蚊を摂食ユニットに引き寄せます。暗い条件は彼らが餌を食べることを促します。
血液を与えられた蚊を成長室に移します。血粉が消化された後、活性試験化合物が蚊の体内に入り、さまざまな臓器に影響を及ぼし、一部を死に至らし
めます。
蚊の死骸の数を数え、死亡率を計算します。チャンバー内に卵カップを導入することにより、生き残った蚊の生殖器系に対する試験化学物質の影響を評価します。
メスの蚊は血粉からのタンパク質を利用して卵を産み、カップの中に集められます。卵の数を数え、繁殖力の低下を推定します - 産卵能力。
高い死亡率と低い繁殖力は、化合物の殺虫能力に対応します。
生後約150匹の生後4〜5日の成虫のメス蚊を吸引器で集め、別のケージに移します。給餌アッセイの1〜24時間前に糖源を取り除きます。
試験化合物の80ミリモルの原液を水中に調製します。次に、水で連続希釈して、所望の濃度の作業原液を得る。
所望の試験濃度を得るには、1.5ミリリットルのチューブ内の960マイクロリットルの除細動ウサギ血液に各希釈液40マイクロリットルを加え、ピペッティングで混合します。メンブレンフィルターを供給ユニットに置き、ゴムリングで密閉します。
次に、ピペットを使用して、給餌ユニットの裏側にあるデリバリーポートから検査液を含む1ミリリットルの血液を移送します。給餌ユニットを加熱ユニットに取り付けます。次に、調製したばかりの10%乳酸溶液で膜表面を優しく拭きます。
給餌ユニットをケージに入れます。ケージを暗い布で覆い、蚊に1時間餌を与えます。蚊が餌を食べたら、ケージを摂氏4度の冷蔵庫に5分間入れて蚊を麻酔します。次に、ケージ内の蚊の総数を数えて記録します。
腹部を調べることにより、完全に餌を与えられたメスの蚊と部分的に餌を与えられたメスの蚊の総数を数えて記録します。1回の投与ごとに最低50匹の血液を与えられた蚊を得る必要があります。餌を与えていない蚊をすべて取り除きます。次に、ケージを成長チャンバーに移し、スコアシートを使用して、適切な時点での死んだ蚊の数を記録します。
採血後3日目に、卵カップをケージに72時間入れます。解剖顕微鏡を使用して、処理ごとに生成される卵子の総数を数えます。