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細胞内の誤って折りたたまれたタンパク質の除去は、主に細胞のユビキチン-プロテアソームシステムによって調節され、タンパク質は最初に小さな調節タンパク質であるユビキチンによって認識およびタグ付けされ、加水分解とクリアランスのためにマルチタンパク質複合体であるプロテアソームに輸送されます。
神経変性疾患でよく見られるユビキチン-プロテオソーム系活性の障害により、誤って折りたたまれたタンパク質が細胞内に蓄積し、細胞毒性作用を伴う不溶性タンパク質凝集体が形成される可能性があります。
in
vitroでタンパク質凝集を視覚化および定量化するには、形質導入された哺乳類細胞の懸濁液(露出した疎水性残基で誤って折り畳まれたコンフォメーションを採用する蛍光標識変異タンパク質を発現する)を適切な培地で取得します。
プロテアソーム阻害剤の濃度を黒色マルチウェルプレートのウェルにピペットで移動させ、イメージング中のバックグラウンド蛍光を最小限に抑えます。哺乳類の細胞懸濁液をウェルに播種します。細胞がプレートの底に付着して増殖するようにインキュベートします。
プロテアソーム阻害剤は、プロテアソームのタンパク質分解部位に結合してその活性をブロックし、発現した変異タンパク質を蓄積させ、露出した疎水性残基を介して相互作用して細胞質凝集体を形成し、最終的に細胞死につながります。
蛍光DNA結合色素を加えて細胞核を染色します。プレートをイメージします。蛍光変異タンパク質凝集体は、未染色の細胞質内に分散しているように見えます。
プロテアソーム阻害剤濃度が高いウェルは、プロテアソーム阻害剤濃度が低いウェルよりも、タンパク質凝集体数と細胞数の比率が高いことを示します。
化合物移送では、384ウェル保存ポリプロピレンプレートに、標準の1〜3希釈シリーズで化合物の連続希釈を追加します。次に、384キャピラリーヘッドを備えたリキッドハンドラーを使用して、0.25マイクロリットルのプロテアソーム阻害剤を空の平底黒色384ウェルアッセイプレートに分配します。次に、これらのプレートに1.5 x 104細胞を播種します。摂氏37度、二酸化炭素5%で24時間インキュベートします。
プロテアソーム阻害剤で処理した細胞株をイメージングする前に、10マイクロリットルの予熱したDMEMを染色液とともに加え、室温で10分間インキュベートします。
染色後、「顕微鏡」タブを選択して自動顕微鏡操作ソフトウェアを起動します。まず、「構成」タブを選択し、次に 20X 対物レンズと正しいプレート タイプを選択します。
さまざまなプレートタイプで適切な焦点を合わせるには、「カラー」が対物レンズの正しい値に設定されていることを確認してください。
次に、「露出 1」を選択し、焦点高さを「0 マイクロメートル」に設定し、「フォーカス」を選択します。ピントが合ったら、カメラ1を露出させます。
露出面を最適化するには、焦点の高さを調整して「高さを取る」をクリックします。露光時間をレーザー出力で最大約3,000ピクセル強度に変更し、露出パラメータを保存します。
「実験定義」タブを選択します。レイアウトとサブレイアウトを作成します。次に、関連するレイアウト、露出、参照画像、スキュークロップファイル、およびサブレイアウトをドラッグアンドドロップします。次に、実験を保存します。
最後に「自動実験」タブを選択し、画像を取得します。2チャンネル画像の場合、最初にソフトウェアアルゴリズムを選択して、核、細胞質ゾル、凝集体などの主要なオブジェクトをセグメント
化します。