$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
組
換えアデノ随伴ウイルス、rAAV、遺伝子操作された非エンベロープ一本鎖DNAウイルスは、有望な治療用遺伝子キャリアです。
rAAVは標的細胞膜受容体に付着し、クラスリンを介したエンドサイトーシスを受け、rAAVゲノムの核送達と治療遺伝子発現を促進します。しかし、rAAVに対する中和免疫系抗体は、特定のrAAVエピトープに結合し、細胞膜結合、細胞侵入、遺伝子導入を妨
害します。
羊血清中の特定の rAAV に対する中和抗体を検出するには、まず、適切な濃度の希釈血清を取得します。ヒト胎盤アルカリホスファターゼ、hPLAP、遺伝子を発現する組換えAAVを追加します。中和抗体がAAVに結合して中和できるようにします。
この混合物を、接着ヒト上皮細胞培養物を含むマルチウェルプレートのウェルに移します。インキュベーション時に、AAVは細胞エンドサイトーシスを受けます。形質導入された細胞は、細胞膜結合hPLAPを発現します。ただし、中和されたAAVは細胞に入ることができません。
ウェルから培地を廃棄します。パラホルムアルデヒドを使用して細胞を固定します。予熱したバッファーを加え、細胞を加熱して内因性細胞アルカリホスファターゼを不活性化します。hPLAPは熱不活化に強いです。
hPLAP基質(ブロモクロロインドリルリン酸、BCIP、およびニトロブルーテトラゾリウム、NBT)を加えます。hPLAPはBCIPを脱リン酸化し、BCIPは二量体化を受け、青色の中間体を形成します。放出された水素イオンはNBTを還元し、不溶性の紫色の沈殿物を生成します。形質導入された細胞の周囲の紫色の沈着物を観察するための画像。
紫色の領域の割合が低いほど、AAV中和抗体の濃度が高いことを示唆しています。
予
熱した完全DMEM培地で細胞を1 x 10 5細胞/mLの濃度に希釈することにより、HT1080細胞のプレーティングを初日に開始します。
次に、ウェルあたり100マイクロリットルの細胞を、ウェルあたり1 x 104細胞の濃度の透明な96ウェル平底プレートに播種します。プレートを摂氏37度で5%二酸化炭素とともに一晩16〜22時間インキュベートします。
2日目に、予熱した完全DMEMを使用して、1.5ミリリットルの微量遠心チューブで目的の血清サンプルの連続希釈液を生成します。
希
釈した血清サンプルを含む各チューブに、マイクロリットルあたり 66 マイクロリットルの 7.5 x 106 ウイルスゲノムをウイルス作業溶液に加えます。ウイルス/血清希釈液をピペッティングで混合し、ウイルス/血清混合物を含むチューブを摂氏37度のインキュベーターに5%二酸化炭素で30分間入れ、中和の可能性を許容します。
30分後、100マイクロリットルのウイルス/血清混合物を、ウェルあたり1 x 104細胞を含む96ウェルプレート上の各ウェルにピペットで移し、プレートをホイルで包み、摂氏37度のインキュベーターに5%二酸化炭素を一晩16〜24時間
入れます。
3日目に、接着した細胞を破壊することなく、ヒュームフード真空を使用して96ウェルプレートのウェルから培地を吸引し、各ウェルに50マイクロリットルの4%パラホルムアルデヒドを加えます。プレートをホイルで包んだ後、室温で10分間放置します。
その後、室温で200マイクロリットルのPBSで細胞を2回洗浄し、吸引します。2回目の洗浄後、200マイクロリットルの予熱したPBSを各ウェルにピペットで入れ、プレートをホイルで包み、続いて摂氏65度で90分間インキュベートして、内因性アルカリホスファターゼ活性を変性させます。
インキュベーション後、50マイクロリットルの新しく調製され、溶解したBCIP / NBTを各ウェルに加え、包まれたプレートを室温で2〜24時間インキュベートします。その後、光学顕微鏡カメラの4倍対物レンズを使用して各ウェルの写真を撮影し、すべてのアッセイで同じ露出、ホワイトバランス、および光設定を一貫して使用できるようにします。