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2つの細菌株間の種内競合により、阻害剤株は標的集団を殺す有毒なエフェクター分子を放出します。
2つのグラム陰性菌株間の競合相互作用を視覚化するには、阻害剤と標的菌株を同量で含む共培養から始めます。
どちらの株も、イメージング中に視覚的に区別するために、異なる色の蛍光タンパク質を発現するように設計されています。培養物を濃縮して、細菌株間の細胞間接触を最大化します。皿の底に置かれたカバーガラスに混合培養物を見つけます。
固化したアガロースパッドをその場所に置き、細菌が固定できるようにし、別のカバーガラスで覆います。細菌の混雑状態をシミュレートして細菌の増殖を可能にするためにインキュベートします。
抑制株の細胞エンベロープには、特殊な分泌系、つまり6型分泌系、またはT6SSが含まれています。これは、膜複合体、ベースプレート、および収縮シースに囲まれたインナーチューブで構成されています。
接触を検出すると、阻害剤株は T6SS を活性化し、シースの収縮とチューブの排出を引き起こし、最終的に標的細菌細胞膜の穿孔につながります。これにより、エフェクター分子が標的細菌に送達されやすくなり、細菌が死に至ります。
蛍光顕微鏡を使用して、蛍光を発する細菌株を同定するための画像化。標的細菌の丸い形態とその数の減少は、阻害菌による殺傷の成功を確認します。
すべてのサンプルについて、600ナノメートルで光学密度を測定および記録します。培養物をLBS培地で希釈することにより、各サンプルを光学密度1に正規化します。
標識された1.5ミリリットルのチューブに30マイクロリットルの正規化された株を加えることにより、2つの競合する株を同じ比率で混合します。混合株培養物を1〜2秒間渦巻きします。生物学的複製と処理ごとに競合する株を混合して、合計4つの混合株チューブを生成します。
各混合培養物を遠心分離によって3倍に濃縮し、共インキュベーション中の接触依存性殺傷のために十分に密度の高い競合細胞を確保します。上清を捨てます。各ペレットと20マイクロリットルのLBS培地を再懸濁し、各サンプルの濃縮手順を実行します。
倒立顕微鏡でイメージングする場合は、まず35ミリメートルのペトリ皿の#1.5カバーガラス底に2マイクロリットルの混合培養物を見つけ、アガロースパッドを共インキュベーションスポットの上に置きます。アガロースパッドの上に12mmの円形ガラスカバーガラスを置きます。残りの3つの混合培養物について、スポッティングとカバーガラスの配置を繰り返し、4つのディッシュを画像化します。
先
に進む前に、スライドをベンチトップに約5分間置いて、細胞が寒天パッドに定着し、イメージングプロセス中の動きを避けます。
まず
、DICを使用して光退色効果を最小限に抑える細胞に焦点を当てます。1つの細菌細胞の平均サイズに基づいて、100倍のオイル対物レンズを使用します。バックグラウンド検出を最小限に抑えて、各チャンネルの露光時間と取得設定を調整します。少なくとも5つの視野を選択し、適切な各チャネルで画像を取得します。