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一部の神経変性疾患では、疾患関連タンパク質は、拡張されたポリグルタミン、polyQ、管(連続するグルタミン残基の文字列)を含み、異常に適合しています。コンフォメーションの障害はタンパク質の恒常性を不安定にし、タンパク質の蓄積と有毒な凝集体の形成を引き起こし、神経細胞の機能不全と死につながります。
polyQ凝集関連のタンパク質毒性を緩和する試験化合物の保護能力をスクリーニングするには、体壁筋細胞で蛍光タグ付きpolyQタンパク質を発現するトランスジェニックCaenorhabditis elegans幼虫の懸濁液を取得します。
細菌性食品を添加した培地を含むマルチウェルプレートを取ります。試験化合物を1セットのウェルに加えます。幼虫をマルチウェルプレートに移します。培地の脱水や微生物汚染を防ぐために、プレートを密閉します。孵化させ、幼虫が成虫に成長できるようにします。
発生中、線虫が老化するにつれて、polyQタンパク質は筋細胞内に徐々に蓄積し、凝集体を形成します。
試験化合物が培地中に存在する場合、筋肉細胞に入り、その保護能力に応じて、抗polyQ凝集効果を発揮し、polyQ凝集を抑制および遅延させる可能性があります。
成
虫の線虫を収穫し、遠心分離します。ペレット状の線虫を再懸濁します。マルチウェルプレートに移します。アジ化ナトリウムを使用して線虫を固定化します。
高分解能蛍光装置を使用して、線虫ごとにpolyQ凝集体を表す蛍光句点をカウントします。
対照井戸よりも処理中のpolyQ凝集体の平均数が少ないことは、polyQ凝集関連のタンパク質毒性を緩和する際の試験化合物の保護能力が高いことを示唆しています。
まず、
AM141線虫の同期したL1幼虫300〜500匹を、大腸菌のOP50株を含む500マイクロリットルのS培地とアストラガラン1ミリリットルあたり5ミリグラムを含む48ウェルプレートの各ウェルに移します。プレートをパラフィルムで密封し、摂氏20度、毎分120回転で所望の時間間隔でインキュベートします。
線
虫を滅菌1.5ミリリットルの微量遠心チューブに移し、遠心分離によってM9バッファーで3回洗浄し、残りのOP50細胞を除去します。次に、AM141線虫をM9バッファーに再懸濁します。
次に、10〜15個の線虫を384ウェルプレートの各ウェルに移し、処理ごとに10個の複製ウェルを設定し、各ウェルに10マイクロリットルの200ミリモルアジ化ナトリウムを追加して、線虫を底に沈降させることで麻痺させます。
プレートをハイコンテントイメージングシステムに入れて、蛍光画像を取得します。画像取得ソフトウェアを開き、テキスト原稿に記載されているパラメータを設定します。「プレートデータの確認」ウィンドウを開き、画像解析用の「テストプレート」を選択して、画像データを解析します。
テストウェルをダブルクリックして、その画像を表示します。次に、分析方法として「核を数える」を選択し、「設定の構成」ボタンをクリックします。FITCチャネルからソースイメージを定義し、「標準アルゴリズム」を選択します。
テキスト原稿に記載されているように画像解析パラメータを設定し、解析方法を最適化するためにテストします。設定を保存し、すべてのウェルで解析を実行します。「Total Nuclei」を、各ウェル内のQ40::YFP集合体の総数としてエクスポートします。
各ウェル内の線虫の数を数え、各グループの線虫あたりのQ40::YFP凝集体の平均数を計算します。次に、阻害指数を計算します。