0 閲覧数 • 3:08 分 • July 8th, 2025
生細胞では、嫌気性条件下で、酵素乳酸デヒドロゲナーゼが解糖の最終生成物であるピルビン酸を重要な代謝産物である乳酸に変換します。細胞内で生成される乳酸の量は、細胞の代謝状態を反映しています。
細胞内乳酸濃度を定量するには、タンパク質を含まない線虫細胞溶解物の試験サンプルから始めます。マルチウェルプレートの他のウェルに、さまざまな既知の濃度の乳酸溶液を補充します。
ライセートには、内因性乳酸デヒドロゲナーゼを含むすべてのタンパク質酵素が含まれていないため、正確な乳酸定量が保証されます。
乳酸アッセイバッファーを各ウェルに追加して、最適な酵素活性のために適切なpHを維持します。乳酸デヒドロゲナーゼ酵素、ニコチンアミド-アデニンジヌクレオチド(NAD)、補酵素、および比色プローブを含む反応混合物をウェルに補充し、インキュベートします。
インキュベーション中、乳酸デヒドロゲナーゼは細胞乳酸のピルビン酸への酸化を触媒し、同時にNADをNADHに還元します。生成されたNADHは比色プローブと反応して紫色の生成物を生成する。
570ナノメートルの試験サンプルおよび乳酸標準の紫色溶液の吸光度を分光法で測定します。乳酸標準の吸光度値をプロットし、検量線を生成します。
最後に、サンプルの吸光度値を乳酸標準と比較して、試験サンプル中に存在する乳酸の量を決定します。
乳酸の濃度を測定するには、比色アッセイキットを使用して、試験サンプルの重複分析を実行します。10 マイクロリットルの試験サンプルを 96 ウェルプレートの各ウェルに加え、次に乳酸アッセイバッファーを各サンプルに加えて、容量を 50 マイクロリットルに調整します。
100ミリモルのL(+)-乳酸標準試料を乳酸アッセイバッファーで1ミリモルに希釈します。次に、一連のウェルに、0、2、4、6、8、および10マイクロリットルの希釈したL(+)-乳酸標準物質を加えます。各ウェルに50マイクロリットルの反応混合物を加え、光から保護された室温で少なくとも30分間インキュベートして色が発現します。
最後に、マイクロプレートリーダーを使用して、570ナノメートルで各ウェルの吸光度を測定します。反応混合物の吸光度からバックグラウンドコントロール混合物の吸光度を差し引きます。次に、乳酸標準曲線をプロットし、各濃度に2.25を掛けて曲線から乳酸濃度を計算します。
本記事では、嫌気条件下における線虫細胞溶解液中の細胞内乳酸濃度を定量する方法について説明します。このプロセスでは、乳酸脱水素酵素を用いて乳酸をピルビン酸に変換し、比色分析によって乳酸レベルを正確に測定します。
細胞内乳酸の正確な定量は、細胞の代謝フラックスを直接的に読み取ることが可能であり、糖新生やエネルギー恒常性に関連するパスウェイにおけるターゲットバリデーションを可能にします。この比色アッセイは、ライセートから再現性のある定量データを提供することでメカニズム的なリスク低減をサポートし、初期段階の仮説検証における曖昧さを軽減します。また、ハイスループット形式との互換性により、代謝性疾患モデルにおけるリード化合物同定のためのスクリーニングカスケードへの統合が可能です。
このアッセイは、初期のターゲットバリデーションからリード最適化に至る創薬の連続的なプロセスに適合し、特に代謝リプログラミングや低酸素応答経路を標的としたプロジェクトにおいて有用です。
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
最終更新:22 8月 2026