試験サンプル中の乳酸の定量のための比色アッセイ

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生細胞では、嫌気性条件下で、酵素乳酸デヒドロゲナーゼが解糖の最終生成物であるピルビン酸を重要な代謝産物である乳酸に変換します。細胞内で生成される乳酸の量は、細胞の代謝状態を反映しています。

細胞内乳酸濃度を定量するには、タンパク質を含まない線虫細胞溶解物の試験サンプルから始めます。マルチウェルプレートの他のウェルに、さまざまな既知の濃度の乳酸溶液を補充します。

ライセートには、内因性乳酸デヒドロゲナーゼを含むすべてのタンパク質酵素が含まれていないため、正確な乳酸定量が保証されます。

乳酸アッセイバッファーを各ウェルに追加して、最適な酵素活性のために適切なpHを維持します。乳酸デヒドロゲナーゼ酵素、ニコチンアミド-アデニンジヌクレオチド(NAD)、補酵素、および比色プローブを含む反応混合物をウェルに補充し、インキュベートします。

インキュベーション中、乳酸デヒドロゲナーゼは細胞乳酸のピルビン酸への酸化を触媒し、同時にNADをNADHに還元します。生成されたNADHは比色プローブと反応して紫色の生成物を生成する。

570ナノメートルの試験サンプルおよび乳酸標準の紫色溶液の吸光度を分光法で測定します。乳酸標準の吸光度値をプロットし、検量線を生成します。

最後に、サンプルの吸光度値を乳酸標準と比較して、試験サンプル中に存在する乳酸の量を決定します。

乳酸の濃度を測定するには、比色アッセイキットを使用して、試験サンプルの重複分析を実行します。10 マイクロリットルの試験サンプルを 96 ウェルプレートの各ウェルに加え、次に乳酸アッセイバッファーを各サンプルに加えて、容量を 50 マイクロリットルに調整します。

100ミリモルのL(+)-乳酸標準試料を乳酸アッセイバッファーで1ミリモルに希釈します。次に、一連のウェルに、0、2、4、6、8、および10マイクロリットルの希釈したL(+)-乳酸標準物質を加えます。各ウェルに50マイクロリットルの反応混合物を加え、光から保護された室温で少なくとも30分間インキュベートして色が発現します。

最後に、マイクロプレートリーダーを使用して、570ナノメートルで各ウェルの吸光度を測定します。反応混合物の吸光度からバックグラウンドコントロール混合物の吸光度を差し引きます。次に、乳酸標準曲線をプロットし、各濃度に2.25を掛けて曲線から乳酸濃度を計算します。

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最終更新:22 8月 2026