0 閲覧数 • 3:25 分 • July 8th, 2025
定量的ポリメラーゼ連鎖反応(qPCR)を介してバクテリオファージを数えるには、最適化されたバッファー中にTaq DNAポリメラーゼ、プライマー、デオキシヌクレオチド三リン酸(dNTP)、および蛍光レポーター色素分子を含むqPCR反応カクテルを取得します。qPCRプレートのウェルに移します。
熱処理されたバクテリオファージを追加します。熱処理により、バクテリオファージ粒子からバクテリオファージDNAが放出されます。プレートを密閉し、混合物の蒸発を防ぎます。プレートをqPCRシステムにロードし、適切なサイクル条件を設定します。
高温に加熱すると、二本鎖DNAが一本鎖に変性します。また、Taq DNAポリメラーゼを活性化します。アニーリングにより、配列特異的プライマーが相補的なバクテリオファージDNA鎖に結合します。伸長により、活性化されたTaq DNAポリメラーゼがプライマーの3'末端にdNTPを追加し、成長するDNA鎖を5'から3'方向に伸ばすことができます。
色素分子は新しく合成された二本鎖DNAに挿入され、蛍光強度が増加します。各PCRサイクルは、ターゲットDNA量を2倍にし、蛍光強度を高めます。
測定された蛍光がバックグラウンドレベルを超える閾値サイクルCt値を決定します。
Ct 値は開始 DNA 量に反比例し、各バクテリオファージ ゲノムは 1 つのバクテリオファージ粒子に相当し、バクテリオファージ DNA 標準曲線からのバクテリオファージの定量を容易にします。
増幅後、溶融曲線分析を実行し、反応温度を徐々に上昇させます。特定の融解温度では、DNAの半分が一本鎖に分離し、色素分子を放出し、突然の蛍光低下を引き起こします。
qPCR産物に固有の明確な融解温度は、製品の特異性を検証します。
濃度不明のバイオパン化ファージサンプル10個と標準濃度の標準濃度サンプル7個のqPCRプレミックスを3回調製すると、255マイクロリットルのqPCRマスターミックス、51マイクロリットルのプライマー、および102マイクロリットルの水を含む51サンプルのプレミックスが得られます。
調製したPCRミックスの8マイクロリットルを96ウェルqPCRプレートの51ウェルに分注します。次に、2マイクロリットルの熱処理されたT7ファージサンプルをこれらのウェルのそれぞれに加え、qPCRプレミックスの表面の下に分注します。粘着フィルムを使用して、プレートを密封します。
プレートをアルミホイルで包んで蛍光光退色を最小限に抑え、qPCR装置でプレートを実行に進みます。テキストプロトコルに概説されているように、サイクル条件と溶融曲線の設定を設定します。
本記事では、定量ポリメラーゼ連鎖反応(qPCR)を用いてバクテリオファージを定量する方法について詳述します。このプロセスには、qPCR反応カクテルの調製、熱処理したバクテリオファージの添加、および得られた蛍光の解析によるバクテリオファージ粒子の定量が含まれます。
定量PCRに基づくバクテリオファージの計数は、探索段階のワークフローにおいてウイルス粒子の精密かつハイスループットな定量化を可能にします。このアプローチは、初期の意思決定に不可欠な定量的で再現性のあるアウトプットを提供することで、堅牢なターゲットバリデーションおよびアッセイ開発を支援します。バイオファーマのパイプラインにqPCR計数を組み込むことで、ファージベースまたはマイクロバイオーム調節療法の予測信頼性とポートフォリオの選別能力が向上します。
qPCRを用いたファージ定量は、初期探索からリード同定に至る一連の流れに適合し、仮説検証およびアッセイの準備に向けた定量的なデータを提供します。
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
関連動画
0 再生回数
最終更新:22 8月 2026