バクテリオファージを列挙するための定量的ポリメラーゼ連鎖反応

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定量的ポリメラーゼ連鎖反応(qPCR)を介してバクテリオファージを数えるには、最適化されたバッファー中にTaq DNAポリメラーゼ、プライマー、デオキシヌクレオチド三リン酸(dNTP)、および蛍光レポーター色素分子を含むqPCR反応カクテルを取得します。qPCRプレートのウェルに移します。

熱処理されたバクテリオファージを追加します。熱処理により、バクテリオファージ粒子からバクテリオファージDNAが放出されます。プレートを密閉し、混合物の蒸発を防ぎます。プレートをqPCRシステムにロードし、適切なサイクル条件を設定します。

高温に加熱すると、二本鎖DNAが一本鎖に変性します。また、Taq DNAポリメラーゼを活性化します。アニーリングにより、配列特異的プライマーが相補的なバクテリオファージDNA鎖に結合します。伸長により、活性化されたTaq DNAポリメラーゼがプライマーの3'末端にdNTPを追加し、成長するDNA鎖を5'から3'方向に伸ばすことができます。

色素分子は新しく合成された二本鎖DNAに挿入され、蛍光強度が増加します。各PCRサイクルは、ターゲットDNA量を2倍にし、蛍光強度を高めます。

測定された蛍光がバックグラウンドレベルを超える閾値サイクルCt値を決定します。

Ct 値は開始 DNA 量に反比例し、各バクテリオファージ ゲノムは 1 つのバクテリオファージ粒子に相当し、バクテリオファージ DNA 標準曲線からのバクテリオファージの定量を容易にします。

増幅後、溶融曲線分析を実行し、反応温度を徐々に上昇させます。特定の融解温度では、DNAの半分が一本鎖に分離し、色素分子を放出し、突然の蛍光低下を引き起こします。

qPCR産物に固有の明確な融解温度は、製品の特異性を検証します。

濃度不明のバイオパン化ファージサンプル10個と標準濃度の標準濃度サンプル7個のqPCRプレミックスを3回調製すると、255マイクロリットルのqPCRマスターミックス、51マイクロリットルのプライマー、および102マイクロリットルの水を含む51サンプルのプレミックスが得られます。

調製したPCRミックスの8マイクロリットルを96ウェルqPCRプレートの51ウェルに分注します。次に、2マイクロリットルの熱処理されたT7ファージサンプルをこれらのウェルのそれぞれに加え、qPCRプレミックスの表面の下に分注します。粘着フィルムを使用して、プレートを密封します。

プレートをアルミホイルで包んで蛍光光退色を最小限に抑え、qPCR装置でプレートを実行に進みます。テキストプロトコルに概説されているように、サイクル条件と溶融曲線の設定を設定します。

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最終更新:22 8月 2026