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デジタルポリメラーゼ連鎖反応(dPCR)は、ゲノム内の特定の位置で一塩基が置換されると2つのヌクレオチド変異または対立遺伝子が生成される変異である一塩基変異体(SNV)の定量化に役立ちます。
チップインアチューブdPCR技術を使用して定量を開始するには、SNV(変異対立遺伝子、および対応する野生型対立遺伝子)を含むDNAサンプルを採取します。耐熱性DNAポリメラーゼ酵素、dNTP、およびプライマーを含む混合物を加えます。
次に、対立遺伝子を区別するために異なる色の蛍光のレポーターで標識された対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチドプローブとクエンチャー分子を追加します。クエンチャーがレポーターに近づくと、その蛍光が抑制されます。
溶液をマイクロ流体チップの反応チャンバーに分配します。対立遺伝子を含む各チャンバーは、独立した反応容器として機能します。
チップの入ったチューブをサーマルサイクラーの中に入れ、反応を開始します。高温では、二本鎖DNAは一本鎖に変性します。温度を下げて、プライマーとオリゴヌクレオチドプローブを相補領域にアニールします。
適切な伸長温度で、DNAポリメラーゼはプライマーを伸長させ、プローブを切断します。クエンチャーからの距離により、レポーターの蛍光発光が可能になります。
異なる色の蛍光シグナルを読み取り、対立遺伝子を含むチャンバーを検出するための位置プロットを作成します。
変異対立遺伝子(変異対立遺伝子画分)の頻度を決定するには、変異体を含むチャンバーと野生型対立遺伝子の比率を計算します。
以前に設計されたプライマー、プローブ、およびゲノムDNAを新しい8チューブストリップに追加して、合計15マイクロリットルの容量を実現します。上下にピペットで混ぜます。
新しい 8 チューブ ストリップに組み込まれたチップにローディング プラットフォームを追加し、チューブ ストリップをオートローダーに置きます。チップとローディングプラットフォームの間に接触があることを確認してください。次に、ローディングスライダーをプラットフォームに置き、ストッパーを使用してスライダーをローダーから外します。スライダーの先端付近で15マイクロリットルのPCR混合物をピペットで入れ、ローダーボタンを押してローダーを1分間運転します。
実行後、ローダーからチューブストリップを取り外し、シーリングエンハンサーに入れます。スライド蓋と上蓋の端を慎重に押します。シーリングエンハンサーを約2分間実行します。液体の水たまりで示されるシールが不完全な場合は、さらに1分間実行を繰り返します。
230マイクロリットルのシール液をチューブに加えます。チューブストリップをサーマルサイクラーに入れ、プロトコルに記載されているようにPCRを実行します。陽性パーティションの分布が不均一な場合は、温度またはPCRの持続時間を調整します。
PCR産物の蛍光強度を検出・分析するには、チューブストリップを検出治具に置き、6ミリリットルの蒸留水を加えます。ピペットチップを使用して目に見える気泡を取り除きます。
治具を検出器にセットします。検出ソフトウェアで、「蛍光」、「実験」、「サンプル/NTC」タブを選択し、「実行」ボタンをクリックして実行を開始します。実行が完了したら、位置プロット、ヒストグラム、および 2D 散布図を確認します。
PCR産物を採取するには、チューブからシール液を取り除きます。100マイクロリットルのTEバッファーを加え、30秒間激しくボルテックスします。卓上遠心分離機でチューブを短時間遠心分離し、テキストプロトコルに記載されているとおりに進めて、PCR産物の収集を完了します。