タンパク質プロセッシングのための化学発光ウェスタンブロットアッセイ

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死受容体であるCD95は、そのアゴニスト抗体に結合し、プロカスパーゼ8を動員する多タンパク質複合体である死誘導シグナル伝達複合体(DISC)の集合を引き起こします。DISCでは、プロカスパーゼ8が二量体化して処理され、さまざまな中間切断産物を形成し、最後にアポトーシスを開始する活性型

を形成します。

化学発光ウェスタンブロッティングを使用してカスパーゼ-8プロセシングを分析するには、カスパーゼ8のDISC関連中間切断生成物を含むライセートをチューブに取ります。これをプロテインA-アガロースビーズ捕捉抗CD95抗体で補います。抗CD95抗体はDISC成分-CD95に結合し、タンパク質複合体を形成する

サンプルをSDS-ポリアクリルアミドゲルにロードし、異なるサイズの免疫沈降カスパーゼ8中間体を別個のバンドとして分離します。ゲルをブロッティングメンブレンの上に置き、電流を流します。カスパーゼ8中間体はゲルからブロッティングメンブレンに移動します。

膜をブロッキングタンパク質含有溶液で処理して、タンパク質結合部位を飽和させ、非特異的結合を防ぎます。

特定の部位でカスパーゼ-8産物に結合する一次抗体の溶液を追加します。

一次抗体の相補的なFc領域に特異的に結合する酵素タグ付き二次抗体を添加して、カスパーゼ-8切断産物-一次抗体-二次抗体複合体を形成します。

二次抗体結合酵素と反応して発光する化学発光基質を追加します。放出される光の強度は、カスパーゼ-8切断生成物の量と相関します。

ウェスタンブロットを実行するには、20マイクロリットルの4Xローディングバッファーをビーズに加え、摂氏95度で10分間加熱します。同時に、ライセートコントロールを摂氏95度で5分間加熱します。溶解物、免疫沈降物、およびタンパク質標準試料を12.5%SDSゲルにロードし、80ボルトの定電圧で実行します。

ゲル実行が完了したら、SDSゲルからタンパク質をニトロセルロース膜に移します。移写が完了したら、ブロットしたメンブレンを箱に入れ、穏やかに撹拌しながらブロッキング溶液中で1時間インキュベートします。次に、メンブレンをPBSTで5分間3回洗浄します。

タンパク質を検出するには、最初の一次抗体を指示された希釈でメンブレンに加え、穏やかに撹拌しながら摂氏4度で一晩インキュベートします。翌日、メンブレンを5分間のPBST洗浄を3回洗浄し、次に、20ミリリットルの二次抗体とともにメンブレンを室温で1時間穏やかに振とうしながらインキュベートします。

メンブレンをPBSTで再度3回洗浄します。最後のPBST洗浄を廃棄した後、約1ミリリットルの西洋わさび過酸化物基質を膜に加え、化学発光シグナルを検出します。