生きた細菌におけるタンパク質間相互作用の特性評価のためのFLIM-FRETイメージング

0 閲覧数4:26 • July 8th, 2025

蛍光寿命イメージング顕微鏡を使用して生きた細菌における特定のタンパク質間相互作用を研究するために、FLIM とフェルスター共鳴エネルギー移動 (FRET) を組み合わせて、組換え細菌懸濁液から始めます。細菌は、代謝経路に関与する特定の細胞質タンパク質を発現し、FRET に適したドナーおよびアクセプター蛍光タンパク質で標識されます。

微鏡スライド上で細菌を固定するアガロースパッド上の細菌懸濁液を見つけます。スライドにカバーガラスを置き、シールします。

FLIM-FRET顕微鏡用の2光子励起倒立走査顕微鏡のステージにスライドを配置します。蛍光ランプを使用して、細菌単層上の関心領域を選択してスキャンします。

発現した細胞質タンパク質間の相互作用により、ドナーとアクセプターの蛍光タンパク質が適切な方向に近づきます。適切な波長のレーザー照射により、ドナー蛍光タンパク質が励起されます。

蛍光タンパク質が近接すると FRET がトリガーされ、ドナーからアクセプター蛍光タンパク質への非放射エネルギー伝達が引き起こされ、それが励起されて最終的に基底状態に戻り、蛍光を発します。

非放射エネルギー移動により、励起されたドナー蛍光タンパク質が基底状態に戻るまでの時間が短縮され、ドナー蛍光寿命(FLIMで測定)が測定されます。FRETによるドナー蛍光タンパク質の平均蛍光寿命の減少は、細菌におけるタンパク質間相互作用を裏付けています。

顕微鏡スライドガラスを平らな水平面に置き、その周囲に2層の粘着テープを貼った2つのスライドガラスを配置します。1%溶融アガロースの70マイクロリットルの液滴をスライドガラスにピペットでかけ、その上に4枚目のスライドを置いてアガロース液滴を平らにします。約1分間軽く押します。

上部のスライドを取り外し、アガロースパッド上の異なる場所の3〜4つのスポットに約3マイクロリットルの細菌を落とします。アガロースパッドを顕微鏡ガラスカバーガラスで覆い、溶かしたパラフィンで固定して、四隅からスライドガラスに密封します。

顕微鏡スライドをステージに置き、カバーガラスを対物レンズに向けます。フィルターキューブタレットを回してeGFPキューブを選択し、蛍光ランプシャッターを開きます。次に、蛍光光を顕微鏡の接眼レンズに送ります。顕微鏡ノブを使用して、対物レンズを細菌に焦点を合わせます。

電動ステージを制御するジョイスティックを使用して、サンプル内の関心領域を選択します。蛍光発光経路を検出器に戻し、フィルターキューブタレットを戻して930ナノメートルレーザー用のダイクロイックキューブを選択し、レーザー出力を20ミリワットに設定します。関心領域のサイズを30マイクロメートルに設定すると、ガルボミラーを動作させる電圧が調整され、ガルボミラーの動きの範囲が定義されます。

検出器の電源を入れ、サンプルのスキャンを開始します。最後にコンピューターインターフェイスからステージを移動して、イメージングの視野を選択します。これは、画像の新しい中心を定義する顕微鏡制御ソフトウェアで画像上の十字を動かし、「ステージの移動」を押すことで、セットアップで実行できます

取得に適した視野には、10〜30個の不動の細菌が含まれており、すべて焦点が合っている必要があります。単一細胞のFLIM-FRETデータの抽出に関心がある場合は、細菌が十分に個別化されていることを確認してください。

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最終更新:22 8月 2026