DNA二本鎖切断の分析のための免疫蛍光顕微鏡

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免疫蛍光顕微鏡を使用して、DNA二本鎖切断、DSB部位の特定のDNA損傷応答タンパク質を視覚化するために、DSBを含むヒト単核細胞単層を含む顕微鏡スライドから始めます。細胞をパラホルムアルデヒドで固定します。

細胞内標的にアクセスするための非イオン性界面活性剤、透過性膜で処理します。タンパク質を含むブロッキング溶液を加え、細胞の非特異的結合部位をブロックします。標的応答タンパク質に結合する一次抗体とインキュベートします。

タンパク質に結合したそれぞれの一次抗体に特異的に結合するために、異なる蛍光色素でタグ付けされた二次抗体混合物で処理します。DAPIでDNAを染色する封入剤を追加します。カバーガラスを取り付けます。

蛍光顕微鏡検査では、入射光ビームが励起フィルターに到達し、特定の励起波長の光が通過します。ダイクロイックミラー(ビームスプリッター)に到達すると、励起光は対物レンズに向かって選択的に反射し、対物レンズが光をサンプルに集束させます。

入射励起光は、蛍光色素の電子をより高いエネルギー状態に励起します。基底状態に戻ると、電子はより長い波長の光を放出し、対物レンズによって収集され、ダイクロイックミラーに戻ります。

ミラーは、放出された蛍光が発光フィルターを通過することを可能にし、これにより目的の蛍光のみが検出器に到達します。画像を処理します。異なる色の蛍光病巣を分析して、DSB部位でのDNA損傷応答タンパク質の共局在を視覚化します。

各調製について1 x 105細胞の遠心分離により、患者サンプルの単核細胞を含む2つのサイトスピンを調製します。200マイクロリットルの4%PFAで細胞を10分間固定します。

固定後、細胞を30ミリリットルのPBSでシェーカー上でそれぞれ5分間3回穏やかに洗浄します。次に、200マイクロリットルの0.1%オクトキシノール-9で細胞を10分間透過処理します。細胞を30ミリリットルの5%ブロッキング溶液で3回、ラボシェーカーでそれぞれ5分間穏やかに洗浄します。30ミリリットルの新鮮な5%ブロッキング溶液で細胞を1時間ブロックします。

4%パラホルムアルデヒドと0.1%オクトキシノール-9による細胞の固定と透過処理により、ガンマH2AXと53BP1病巣が明確

に保存されました。

細胞の1つの調製物をマウスモノクローナル抗ガンマH2AX抗体と、もう1つの細胞調製物をマウスモノクローナル抗ガンマH2AX抗体とポリクローナルウサギ抗53BP1抗体で摂氏4度で一晩インキュベートします。

実証済みの抗ガンマH2AX抗体および抗53BP1抗体の使用を強くお勧めします。

インキュベーション後、ラボシェーカーで5分ごとに30ミリリットルの2%ブロッキング溶液で細胞を3回穏やかに洗浄します。

次に、細胞の最初の調製物を、2%ブロッキング溶液で500分の1に希釈したAlexa488結合ヤギ抗マウス二次抗体でインキュベートします。細胞の2番目の調製物を、Alexa488結合ヤギ抗マウス二次抗体およびAlexa555結合ロバ抗ウサギ二次抗体を2%ブロッキング溶液で500分の1に希釈してインキュベートします。

実験室のシェーカーで30ミリリットルのPBSで細胞を3回穏やかに洗浄します。PBSを取り出し、封入培地で細胞を封印します。気泡が埋め込まれないように、慎重に封入媒体の上にカバーガラスを置きます。蛍光顕微鏡で細胞を分析する前に、封入剤が固まるまで少なくとも3時間待ちます。

最後に、DAPI、Alexa488、およびCy3用のフィルターを備えた蛍光顕微鏡を使用して、細胞核内のガンマH2AXおよび53BP1病巣を100倍の対物レンズ倍率でイメージング中に分析します。

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最終更新:1 8月 2026