DNA-タンパク質相互作用を研究するための円二色性分光法

0 閲覧数4:38 • July 8th, 2025

ATP依存性クロマチンリモデリングタンパク質は、ATP依存的にDNAコンフォメーションを変化させることにより、密に充填されたクロマチンの遺伝子発現を調節します。

環二色性(CD)分光法を使用してクロマチンリモデラーとDNAの相互作用を研究するには、二本鎖DNAオリゴヌクレオチドの溶液を取ります。加熱してオリゴヌクレオチドを変性させ、氷の上に置きます。

急速冷却により、二次構造を形成しながらDNAが再自然します。二本鎖から一本鎖への移行領域は、クロマチンリモデラーに最適な結合部位を提供します。

熱冷したDNAをキュベットに加えます。ATP依存性クロマチンリモデラー、ATP、およびマグネシウムイオンを含むバッファーを追加します。

リモデラーはDNAに結合し、続いてマグネシウムイオン複合体ATPがタンパク質に結合し、タンパク質を活性化します。活性化されたリモデラーはATPを加水分解し、DNAにステムループコンフォメーションを誘導します。

相差が90°ある左右の円偏光をサンプルに通します。光学的にキラルなDNAは、左右の円偏光をさまざまな程度に吸収します。

円二色性と呼ばれる差分吸収により、透過光は楕円偏光になり、楕円率として測定されます。CDスペクトルの特定の波長で2つの正のピークは、ステムループ構造を確認します。

EDTAを加えてマグネシウムイオンをキレート化し、ATPアーゼ活性を阻害します。

キレート化時のCDスペクトルの変化(特定の波長で負のピークと広い正のピークを示す)は、ATP加水分解がない場合のステムループコンフォメーションの破壊を示しています。

高透明度の石英キュベットでCDスペクトルを収集します。長方形または円筒形のキュベットを使用します。キュベットを洗浄するには、キュベットを水で数回洗浄し、キュベット内の水または緩衝液をスキャンして、キュベットがきれいかどうかを確認します。

反応には、PAGE精製DNAオリゴヌクレオチドを使用します。急速冷却の場合は、加熱ブロックでDNAを摂氏94度で3分間加熱し、すぐに氷上で冷却します。ゆっくりと冷却するには、DNAを摂氏94度で3分間加熱した後、毎分摂氏1度の速度で室温まで冷却します。

ベースラインスペクトルを記録するには、1.5ミリリットルの遠心分離管に合計5つの対照反応を1つずつ設定します。すべての反応で反応量を300マイクロリットルに保ちます。

CDスペクトルを記録するには、1.5ミリリットルの遠心分離管で合計5つの実験反応を1つずつ設定します。

スキャンを記録するには、ガスをオンにし、CD分光計のスイッチを入れます。10〜15分後、ランプのスイッチを入れ、ウォーターバスのスイッチを入れ、ホルダーの温度を摂氏37度に設定します。

次に、CDスペクトルソフトウェアを開き、温度を摂氏37度、波長範囲を180〜300ナノメートル、ポイントあたりの時間を0.5秒、スキャン数を5に設定します。次に、Pro-Data Viewer をクリックして新しいファイルを作成し、実験の詳細と日付で名前を変更します。

次に、ベースライン反応と実験反応をピペッティングで混合し、反応混合物を 1 つずつ慎重にキュベットに移し、気泡がないことを確認します。

時間経過実験を行う場合は、反応を摂氏37度で必要な時間インキュベートします。次に、スキャンを行います。DNA、ATP、マグネシウム、タンパク質を含むバッファーにEDTAを加えて、ATPの加水分解を止めます。ATPアーゼ活性を完全に阻害するには、EDTA濃度とインキュベーション時間を増やします。

ソフトウェアの対応する反応からベースラインを減算し、CDスペクトルソフトウェアまたはデータプロットソフトウェアのいずれかでデータを平滑化します。次に、平均残基楕円率に対する波長のグラフをプロットし、ピークを分析します。

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最終更新:29 8月 2026