0 閲覧数 • 4:38 分 • July 8th, 2025
ATP依存性クロマチンリモデリングタンパク質は、ATP依存的にDNAコンフォメーションを変化させることにより、密に充填されたクロマチンの遺伝子発現を調節します。
環二色性(CD)分光法を使用してクロマチンリモデラーとDNAの相互作用を研究するには、二本鎖DNAオリゴヌクレオチドの溶液を取ります。加熱してオリゴヌクレオチドを変性させ、氷の上に置きます。
急速冷却により、二次構造を形成しながらDNAが再自然します。二本鎖から一本鎖への移行領域は、クロマチンリモデラーに最適な結合部位を提供します。
熱冷したDNAをキュベットに加えます。ATP依存性クロマチンリモデラー、ATP、およびマグネシウムイオンを含むバッファーを追加します。
リモデラーはDNAに結合し、続いてマグネシウムイオン複合体ATPがタンパク質に結合し、タンパク質を活性化します。活性化されたリモデラーはATPを加水分解し、DNAにステムループコンフォメーションを誘導します。
位相差が90°ある左右の円偏光をサンプルに通します。光学的にキラルなDNAは、左右の円偏光をさまざまな程度に吸収します。
円二色性と呼ばれる差分吸収により、透過光は楕円偏光になり、楕円率として測定されます。CDスペクトルの特定の波長で2つの正のピークは、ステムループ構造を確認します。
EDTAを加えてマグネシウムイオンをキレート化し、ATPアーゼ活性を阻害します。
キレート化時のCDスペクトルの変化(特定の波長で負のピークと広い正のピークを示す)は、ATP加水分解がない場合のステムループコンフォメーションの破壊を示しています。
高透明度の石英キュベットでCDスペクトルを収集します。長方形または円筒形のキュベットを使用します。キュベットを洗浄するには、キュベットを水で数回洗浄し、キュベット内の水または緩衝液をスキャンして、キュベットがきれいかどうかを確認します。
反応には、PAGE精製DNAオリゴヌクレオチドを使用します。急速冷却の場合は、加熱ブロックでDNAを摂氏94度で3分間加熱し、すぐに氷上で冷却します。ゆっくりと冷却するには、DNAを摂氏94度で3分間加熱した後、毎分摂氏1度の速度で室温まで冷却します。
ベースラインスペクトルを記録するには、1.5ミリリットルの遠心分離管に合計5つの対照反応を1つずつ設定します。すべての反応で反応量を300マイクロリットルに保ちます。
CDスペクトルを記録するには、1.5ミリリットルの遠心分離管で合計5つの実験反応を1つずつ設定します。
スキャンを記録するには、ガスをオンにし、CD分光計のスイッチを入れます。10〜15分後、ランプのスイッチを入れ、ウォーターバスのスイッチを入れ、ホルダーの温度を摂氏37度に設定します。
次に、CDスペクトルソフトウェアを開き、温度を摂氏37度、波長範囲を180〜300ナノメートル、ポイントあたりの時間を0.5秒、スキャン数を5に設定します。次に、Pro-Data Viewer をクリックして新しいファイルを作成し、実験の詳細と日付で名前を変更します。
次に、ベースライン反応と実験反応をピペッティングで混合し、反応混合物を 1 つずつ慎重にキュベットに移し、気泡がないことを確認します。
時間経過実験を行う場合は、反応を摂氏37度で必要な時間インキュベートします。次に、スキャンを行います。DNA、ATP、マグネシウム、タンパク質を含むバッファーにEDTAを加えて、ATPの加水分解を止めます。ATPアーゼ活性を完全に阻害するには、EDTA濃度とインキュベーション時間を増やします。
ソフトウェアの対応する反応からベースラインを減算し、CDスペクトルソフトウェアまたはデータプロットソフトウェアのいずれかでデータを平滑化します。次に、平均残基楕円率に対する波長のグラフをプロットし、ピークを分析します。
本研究では、DNAのコンフォメーションを変化させることで遺伝子発現を調節するATP依存性クロマチンリモデリングタンパク質の役割を調査します。円二色性(CD)スペクトルを用いて、クロマチンリモデラーとDNAの相互作用を分析します。
円二色性分散スペクトロスコピーは、DNAの構造変化を定量的なラベルフリーのリードアウトとして提供することで、クロマチンリモデル標的のメカニズム的なリスク低減を可能にします。これにより、ATP依存性活性を構造的な結果に結びつけ、初期探索段階での標的バリデーションをサポートし、エピジェネティック創薬プログラムにおけるゴー/ノーゴーの判断に情報を提供します。本手法は、アッセイの開発やスクリーニングキャンペーンに先立ち、標的メカニズムに対する予測的な信頼性をもたらします。
CDスペクトロスコピーは、標的仮説の策定とリード化合物の同定の間に位置し、化合物スクリーニングの前にメカニズム的な相互作用を検証することで、エピジェネティック標的プログラムにおける偽陽性を減少させます。
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最終更新:29 8月 2026