0 閲覧数 • 3:37 分 • July 8th, 2025
拘束された成体マウスから始めて、腹部を滅菌します。外因性鉄源を右下腹部に腹腔内に注入し、周囲の臓器への偶発的な損傷を防ぎます。
注入された鉄源は体循環に入り、さまざまな臓器に移動して、髄膜炎菌の複製に適切な鉄を供給します。
麻酔をかけたマウスを腹臥位に置き、脊柱をまっすぐに保ち、脳脊髄液内の特定の領域である大槽、脳を取り巻く髄膜の中層と内層の間のCSFで満たされたくも膜下腔へのアクセスを容易にします。
マウスの頭を滅菌します。グラム陰性病原菌である髄膜炎菌または髄膜炎菌の懸濁液を、後頭のバー穴からCSFで満たされた大槽に注入します。
注射から数時間以内に、髄膜炎菌はCSF内で増殖し、非効率的な宿主防御機構を持つくも膜下腔
を占めます。細菌は髄膜の層を覆う細胞と相互作用します。この相互作用は炎症反応を引き起こします。細胞は炎症誘発性サイトカインを放出し、免疫細胞が動員され、髄膜炎症または髄膜炎を引き起こします。
最終的に、髄膜炎菌は体循環に入り、他の臓器に定着することもあります。
実験を開始する前に、動物の体重を量り、体温を評価します。首から下を首筋にし、腹部を70%エタノールで消毒します。感染の約2〜3時間前に、25ゲージの針を使用して、腹部の右下象限に鉄デキストランを腹腔内に注射します。
動物に麻酔をかけた後、つま先をつまんだときに痛みの反応がないことを確認し、麻酔の深さを確認します。マウスを層流キャビネットに入れた後、胸骨褥瘡に置き、頸椎の手足を慎重に伸ばして脊柱をまっすぐな位置に保ちます。
細菌懸濁液を一定に保つには、8 ミリメートル、30 ゲージの針が付いた注射器に装填する前に、そっと混合します。70%エタノールで頭を消毒します。動物を横臥位に置き、耳を邪魔にならないようにし、首を適度に曲げます。
首と頭の正中線がテーブルトップと完全に平行な位置にあることを確認してください。次に、アトラスの翼に触れて重なっていることを確認し、針が後頭の穴に入る可能性が最も高い正中線の自然なくぼみを感じます。
注射器に 8 ミリメートルの 30 ゲージの針を、確立された亜致死量の髄膜炎菌または鉄デキストランを添加した GC ブロスを対照として充填し、総量 10 マイクロリットルで満たします。針を使用して注射点を特定し、後頭のバーホールを通してマウスのシリンジマグナ
に注射します。注射後は注射器と針を安全に廃棄してください。動物を層流キャビネットの下のケージに入れます。覚醒して動きが完全に回復するのを待って、プロトコルに記載されているように、感染した動物の動物の生存を進
めます。本記事では、髄液中にNeisseria meningitidisを注入することにより、成マウスに髄膜炎を誘発する方法について概説します。本プロトコルでは、動物福祉と実験の正確性を確保するため、滅菌処理と適切な麻酔技術の重要性を強調しています。
信頼性の高い感染症モデルの構築は、抗菌薬開発における前臨床段階のターゲットバリデーションおよび機序的なリスク低減において極めて重要です。本脳槽内投与法により、疾患に関連したシステム内での髄膜炎菌の病原性および宿主・病原体相互作用の定量的な評価が可能になります。このモデルは、リード化合物の同定に向けた再現性のある炎症リードアウトと、治療候補薬に対する予測的な信頼性を提供することで、初期の創薬ワークフローを支援します。
本手法は、抗菌メカニズムの仮説検証を可能にし、リード最適化のための定量的CNS感染指標を提供することで、初期探索から前臨床ワークフローまでの段階に位置づけられます。
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最終更新:22 8月 2026