0 閲覧数 • 3:14 分 • July 8th, 2025
単量体のSおよびF成分を含むロイコシジン(細孔形成毒素)を分泌する病原菌である黄色ブドウ球菌の培養を取ります。
細胞をペレット化し、上清を連続的に希釈します。ロイコシジン含有上清を多形核白血球(PMN)を有するマイクロプレートに移し、インキュベートします。
S成分はPMN上の特定の膜貫通受容体に結合し、続いてF成分とのヘテロオリゴマー化が細胞膜に挿入され、細孔が形成されます。
細孔は細胞内カリウムイオンの減少を引き起こし、NLRファミリーのピリンドメイン含有3またはNLRP3タンパク質を活性化します。
NLRP3 は、プロカスパーゼ-1 を動員するカスパーゼリクルートメントドメイン (ASC) を含むアポトーシス関連斑点様タンパク質に結合し、インフラマソームを形成します。
自動タンパク質分解はプロカスパーゼ-1を活性カスパーゼ-1に変換し、細胞死を引き起こします。
定義された間隔でセルを収集します。ヨウ化プロピジウムまたはPIを加えると、損傷した膜から死細胞に入り、DNAに結合し、蛍光を発します。
フローサイトメトリーを使用して、PI染色細胞を定量化し、ロイコシジン濃度とインキュベーション時間の両方の細胞毒性効果を評価します。
S. aureus を適切な培地で一晩培養し、実験の前日に摂氏 37 度に設定した振とうインキュベーターを使用して。継代培養 黄色ブドウ球菌 新鮮な培地で一晩細菌培養を1〜100希釈することにより。細菌が初期の定常成長期に達するまで、振とうしながら摂氏37度でインキュベートします。5時間の増殖後、1ミリリットルの代替培養物 黄色ブドウ球菌を1.5ミリリットルの微量遠心チューブに移し、5000 gで室温で5分間遠心分離します。
遠心分離後、上清を吸引します。吸引された上清を0.22ミクロンのシリンジフィルターに通し、新しい1.5ミリリットルの微量遠心チューブに入れ、氷の上に置きます。黄色ブドウ球菌の培養に使用する氷冷培地で上清を段階的に希釈します。前述のように、PMNと氷を含む96ウェルプレートの個々のウェルに、ネガティブコントロールとポジティブコントロールの上清サンプルまたは培地のみをそっと加えます。
プレートをそっとロックして上清とウェルを分配し、摂氏37度でインキュベートします。必要な時間に、インキュベーターからプレートを取り出し、氷の上に置きます。1マイクロリットルのヨウ化プロピジウムを含む300マイクロリットルの氷冷DPBSを各フローサイトメトリーチューブに加えます。サンプルを氷上のフローサイトメトリーチューブに移します。ポジティブコントロールウェルの場合は、フローサイトメトリーチューブに移す前に、20マイクロリットルの10%Triton Xをサンプルに加えます。フローサイトメトリーを用いて中毒PMNのよう化プロピジウム染色を分析する
本研究では、黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)が産生する毒素であるロイコシジンが、多形核白血球(PMNs)に及ぼす細胞毒性作用について調査します。そのメカニズムは、PMNsにおける孔形成による細胞死であり、フローサイトメトリーを用いて評価します。
細菌の細胞外タンパク質がヒトPMNに及ぼす細胞毒性の定量的評価により、感染症のターゲットバリデーションにおけるメカニズム的なリスク低減が可能になります。本アッセイは、病原体による免疫回避戦略を評価するための予測的信頼性を提供し、抗感染症薬の研究開発における初期段階のポートフォリオ決定を支援します。フローサイトメトリーに基づく細胞毒性読み取りを統合することで、創薬から前臨床モデルの選択に至るトランスレーショナルな連続性が強化されます。
本アッセイは、創薬から前臨床に至る連続的なプロセスの中に位置づけられ、抗感染症プログラムにおけるメカニズム的なターゲット検証と、トランスレーショナルモデルの選定を橋渡しするものです。
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最終更新:22 8月 2026