0 閲覧数 • 4:13 分 • July 8th, 2025
ヒト卵巣がん細胞懸濁液を取ります。基底膜マトリックス培地を加え、ゲル形成を避けるために氷上に置いてください。
混合物を注射器にロードし、無胸腺ヌードマウスに皮下注射します。マトリックスがゲル化したら針を取り外し、混合物の排出を防ぎます。
免疫不全マウスに免疫応答がないため、注射された細胞の生存率が維持されます。ゲルの細胞外マトリックスタンパク質と成長因子は成長促進シグナルを提供し、腫瘍形成を促進します。
腫瘍細胞は、表面結合葉酸受容体α-1、またはFOLR1を過剰発現します。
FOLR1特異的抗体を取ります。蛍光色素を加えてインキュベートし、抗体との色素結合を可能にします。
標識抗体を麻酔した担腫瘍マウスに静脈内注射します。
抗体は循環を介して腫瘍に到達し、腫瘍細胞上のFOLR1に結合し、細胞表面を蛍光標識します。
invivo蛍光イメージングを実行します。励起されると色素は蛍光を発し、腫瘍内の抗体局在の評価を容易
にします。1リットルのコンジュゲーションバッファーに透析カセットを使用して、0.5ミリリットルの抗体を透析します。4時間後、透析カセットを新しいバッファーに移し、一晩透析します。結合反応を設定するには、抗体1ミリグラムあたり0.03マイクログラムのIRDye 800CWを総量500マイクロリットルに加えます。
混合物を摂氏20度で2時間インキュベートします。次に、PBSに対する広範な透析によって標識された複合体を精製します。780ナノメートルで色素の吸光度を測定し、280ナノメートルでタンパク質の吸光度を測定することにより、標識の程度を推定します。
マウス異種移植片を開発するには、動物の皮膚をそっと持ち上げ、下にある筋肉層から分離します。100 ゲージの針で 26 マイクロリットルの細胞懸濁液を皮下にゆっくりと注入します。基底マトリックス培地が皮膚の下の細胞とともに半固体のゲル状構造を形成し、混合物が注射部位から出てくるのを防ぐことができるように、針を取り出す前に数秒待ちます。
in vivoイメージングを行うには、尾静脈を介して色素標識抗体を注入します。マウスを麻酔した後、ペダル反射に対する反応がないか確認し、ぬるま湯を流して静脈を拡張します。1 CC インスリン注射器と 26 ゲージの針を使用して、25 マイクログラムの標識抗体を 100 マイクロリットルの容量で注入します。ネガティブコントロールとして、がん細胞を標的としない非特異的IgGアイソタイプ抗体を標識して注射します。
抗体注射の8時間後、24時間、48時間後にin vivoイメージングを行います。イメージングソフトウェアで、[初期化]をクリックします。ステージ温度が37°Cであることを確認します。コントロールパネルで、イメージングウィザードを使用して蛍光イメージングを設定し、励起を773ナノメートル、発光を792ナノメートルに設定します。
麻酔をかけたマウスをイメージングチャンバーに移し、ノーズコーンを使用してイメージングフィールドに配置します。準備ができたら、画像取得のコントロールパネルで[取得]をクリックし、[自動露出]をクリックします。生成された画像は、写真画像上の蛍光の重ね合わせであり、光学蛍光強度はカウントまたは光子の単位で表示されます。
本研究では、ヒト卵巣がん細胞を用いたマウス異種移植片の開発方法を実証し、in vivoイメージングにおけるFOLR1特異的抗体の有用性を強調します。この手法により、蛍光イメージングを通じて腫瘍内における抗体の局在評価が可能となります。
この手法により、バイオ医薬品開発チームは腫瘍標的抗体の特異性をin vivoで検証することができ、早期段階の標的バリデーションおよびメカニズム的なリスク低減を支援します。異種移植モデルにおける抗体の局在を定量化することで、リード化合物の選択に対する予測的な信頼性を提供し、後期段階における生物学的要因による脱落を減少させます。このワークフローは、創薬から前臨床評価までのトランスレーショナルな連続性をサポートします。
本手法はディスカバリー・コンティニュアム(創薬探索の連続的なプロセス)に適合しており、前臨床段階の最適化に先立ち、腫瘍特異的な抗体候補の機能的検証を通じてリード化合物の同定を支援します。
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最終更新:22 8月 2026