フローサイトメトリーを用いた試験アレルゲン存在下での好塩基球活性化の解析

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刺激バッファーに懸濁された蛍光標識モノクローナル抗体を含む染色混合物を含むサイトメーターチューブを取ります。

濃度

が低下する試験アレルゲンを複数のチューブに加えます。抗IgE抗体を1つのチューブに追加してIgEを介したポジティブコントロールとして機能し、陰性コントロールのために別のチューブにバッファーを追加します。

ヒト末梢血をチューブにピペットで入れます。インキュベート。

個人が試験アレルゲンに感作されている場合、この曝露により、アレルゲンは好塩基球表面のFc受容体に結合したアレルゲン特異的IgE抗体に結合します。

アレルゲンはIgE結合Fc受容体を架橋し、好塩基球の活性化を引き起こします。

好塩基球は脱顆粒を受け、炎症性メディエーターを含む細胞内顆粒を放出し、CD63 および CD203c 分子がアップレギュレーションされます。

蛍光標識モノクローナル抗体は、好塩基球上のCD63、CD203c、CCR3にそれぞれ結合します。

好塩基球の脱顆粒を止めるために温度を下げます。

バッファーを加えて赤血球を溶解し、細胞を固定します。

フローサイトメーターを使用して、リンパ球集団から好塩基球を特定します。

CD63を活性化マーカーとして使用し、アレルゲン濃度の低下による好塩基球の活性化を分析します。

まず、

末梢血を 9 ミリリットルのヘパリン化チューブに採取し、サンプルをローターに入れて、実験プロトコルに必要になるまで室温に維持します。

ネガティブコントロールとポジティブコントロール用にそれぞれ2本の5ミリリットルサイトメーターチューブにラベルを付けます。また、テスト対象の異なるアレルゲンまたは薬物濃度について、それぞれ1本のチューブにラベルを付けます。次に、チューブが滑らずに完全にフィットするように、チューブをラックに置きます。

最初のポジティブコントロールについては、好塩基球の品質を確認するために、0.05%PBST中のN-ホルミルメチオニル-ロイシル-フェニルアラニン(fMLP)の4マイクロモル溶液を調製します。2番目のポジティブコントロールについては、PBSTを使用して1ミリリットルあたり0.05ミリグラムの抗IgE溶液を調製します。刺激バッファー20マイクロリットルあたり、CCR3-APC、CD203c-PE、およびCD63-FITC抗体をそれぞれ1マイクロリットル添加して、染色ミックスを調製します。次に、この染色混合物を各チューブに23マイクロリットル加えます。

100マイクロリットルのPBSTを陰性対照チューブに加え、100マイクロリットルのfMLPを一方の陽性対照チューブに加え、もう一方の抗IgEを100マイクロリットルに加えます。残りのチューブに、100マイクロリットルの異なるアレルゲンまたは薬物濃度を加え、摂氏37度で10分間インキュベートします。インキュベーション後、溶血を避けるために、各チューブに100マイクロリットルの血液を穏やかに加えます。次に、チューブを穏やかにボルテックスし、中程度の攪拌で摂氏37度のサーモスタット浴で25分間インキュベートします。

脱顆粒を止めるために、チューブを摂氏4度に少なくとも5分間保ちます。各チューブに、2ミリリットルの溶解バッファーを加えて赤血球を溶解します。各チューブをボルテックスし、室温で5分間インキュベートします。チューブを摂氏4度で300 x g で5分間遠心分離します。次に、ラックをシンクにひっくり返して、細胞がチューブの底に残っている間に上清をデカントします。各チューブに3ミリリットルのPBSTを加えて細胞を洗浄し、チューブをボルテックスします。同じパラメータセットを使用して2回目の遠心分離を実行し、ラックをシンクにひっくり返して上清をデカントします。次に、サンプルを摂氏4度に保ち、フローサイトメトリーまで光から保護します。

フローサイトメーターをコンピューターソフトウェアに接続し、サイトメーターの準備ができるまで待ちます。テキスト原稿の説明に従って、テンプレートと機器の設定をロードします。サンプル取得のプロセスを開始します。

活性化された好塩基球を選択するには、まず、側方散乱 - 前方散乱プロットからリンパ球を取得します。次に、リンパ球集団から好塩基球をCCR3陽性CD203c陽性細胞として取得し、チューブあたり少なくとも500個の好塩基球を獲得します。ネガティブコントロールチューブを使用してCD63陰性閾値を約2.5%に設定し、サンプルを分析します。

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最終更新:1 8月 2026