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赤血球枯渇脾細胞を、細胞透過性カルシウム感受性蛍光色素Indo-1 AMを含むバッファーに収めます。
細胞内エステラーゼは、Indo-1 AMを膜不透過性のIndo-1に切断し、カルシウムイオンに結合し、Indo-1の蛍光シグナルを青から紫に変化させます。
細胞上のそれぞれの抗原に特異的に結合する蛍光色素結合抗原特異的抗体を導入します。
フローサイトメトリーを使用して、蛍光色素標識B細胞を同定し、それらのインド-1紫と青の蛍光比を測定します。
次に、リポソーム二重層に結合したIgM Fabフラグメントを含む抗原性リポソームで細胞を処理します。
B 細胞受容体はリポソーム共役抗原に結合し、関連する細胞質チロシンキナーゼを活性化し、ホスホリパーゼ-C ガンマ-2 活性化を引き起こします。
活性化されたホスホリパーゼ-Cは、膜リン脂質であるホスファチジルイノシトール4,5-ビスリン酸を切断し、イノシトール1,4,5-トリスリン酸、またはIP3を含むセカンドメッセンジャーを生成します。
IP3 は小胞体の IP3 依存性カルシウム チャネルに結合し、カルシウムイオンを細胞質に放出します。
これらのカルシウムイオンは、結合していないインド-1分子に結合し、紫色の蛍光を増加させます。
標識B細胞におけるインド-1紫と青の蛍光比が高いと、抗原性リポソームによる活性化が成功していることが確認されます。
抗原性リポソーム活性化に対するB細胞応答を監視するには、1.5 x 107個の脾細胞をカルシウムフラックスローディングバッファーに再懸濁し、1.5マイクロモルのインド-1を細胞に加え、チューブ内の溶液を数回反転させて混合します。光から保護された摂氏37度で30分間のウォーターバスインキュベーションの後、5倍の量のカルシウムフラックスローディングバッファーを加え、Indo-1標識細胞を遠心分離します。
B細胞ゲーティングの場合、抗CD5抗体および抗B220抗体で細胞を0.5ミリリットルのローディングバッファーで摂氏4度で光から保護して20分間染色します。インキュベーションの最後に、細胞を新鮮なカルシウムフラックスローディングバッファーで洗浄し、ペレットを1〜2 x 10 7細胞の新鮮なカルシウムフラックスランニングバッファー1ミリリットルで再懸濁し、分析まで光から保護された氷上に保管します。
次に、キャップ付きの5ミリリットルの丸底ポリスチレンチューブに0.5ミリリットルの細胞を加え、水浴で細胞を摂氏37度に温めます。3〜5分後、チューブを再循環ウォーターバスに接続された摂氏37度のウォータージャケットチャンバーに移し、フローサイトメーターのウォータージャケットにチューブを通します。
毎秒5,000〜10,000のイベントを収集した後、セルを15〜30秒間安定させ、データ収集を再開し、少なくとも10秒間データを収集してバックグラウンド読み取りを確立します。10秒のマークで、フローサイトメーターからチューブをすばやく取り外し、適切な実験濃度の抗原性リポソームを追加します。次に、細胞をパルスボルテックスし、サイトメーターでチューブをさらに3〜5分間読み取ります。