マイコバクテリア細胞外小胞を精製するためのサイズ排除クロマトグラフィー技術

0 閲覧数4:38 • July 8th, 2025

多糖類樹脂粒子の不活性マトリックスを充填したサイズ排除クロマトグラフィーカラムを取ります。多孔質粒子には、定義された細孔サイズがあります。

最適な精製のために、平衡化バッファーでカラムをフラッシュします。

病原菌である結核菌 の培養物から処理された濃縮培養濾液を追加します。濾液には、細胞外小胞(EV)や、細菌によって分泌されるその他の可溶性タンパク質が含まれています。

EVは、異質なサイズの小さな球形構造です。それらは脂質二重層に封入された高分子と病原性因子を含んでいます。

サンプルは重力下でマトリックスに入ります。バッファーを追加して、カラム内をサンプルを移動できるようにします。

EVは細孔サイズが小さいため樹脂に入ることができず、代わりに粒子間空間を移動し、より短い経路を移動して最初に溶出します。

サイズ

が小さいタンパク質は細孔に入り、樹脂の中をより長い経路を移動し、最後に溶出します。

下流の分析のためにEVを含む画分を収集します。

サイズ排除クロマトグラフィー(SECカラム)を室温に平衡化させます。タワーユニットの背面にある電源スイッチを使用してAFCをオンにし、必要に応じてメインメニューのタッチスクリーンのSETUPを押してロードセルの設定を調整します。SETUP画面で、CAROUSELを選択し、次にCALIBRATEを選択してカルーセルを位置合わせします。13個の小さな穴が上を向いたカルーセルをAFCタワーに挿入し、マイナスボタンまたはプラスボタンを押してカルーセルを調整し、流体ノズルがフラッシュ位置の真上になるようにします。

平衡化された SEC カラムからキャップを取り外し、SEC カラムを適切なカラムマウントにスライドさせます。AFCタワーに慎重に取り付けてください。カラムの無線周波数識別タグが AFC を向いていることを確認し、カラムとバルブ間の接続がしっかりと行われていることを確認します。廃棄物出口チューブを収集容器に入れます。SETUP画面から、収集スケジュールを選択し、マイナスボタンまたはプラスボタンを押して、カウントを13に、サイズを0.5ミリリットルに設定します。

バッファー・ボリューム設定をデフォルトの 2.7 ミリリットルのままにしてから、「収集スケジュール」ウィンドウを閉じます。ホーム画面から [収集の開始] を選択し、[はい] を選択して収集パラメーターを確認します蓋を開け、カルーセルの中心を向いた状態で、ラベル付き1.7ミリリットルの微量遠心チューブ13をロードします。OKを選択してAFCを前進させます次に、カラムリザーバーを取り付け、OKを押して再度前進します。

Yesを押してカラムをフラッシュするオプションを選択し0.2マイクロメートルでろ過したPBSのカラム容量を1つ追加して、保存バッファーを除去します。フラッシュが完了したら、[OK]を押してAFCを進めます。カルーセルカバーをAFCの上に置き、[OK]を押しますピペットを使用して、カラムから余分なバッファーを取り除きます。3 ミリグラムの 100R サンプルを 1x PBS を含む 500 マイクロリットルに持ち込み、サンプルをカラムの上部に加えます。

0.2マイクロメートルでろ過したPBSの1カラム容量を調製します。AFCを前進させ、サンプルをフリットに流します。サンプルがカラムに完全に入ったら、先ほど調製したPBSをリザーバーに加えます。AFC が最初に void ボリュームを収集し、次に指定された分数を収集している間、AFC の実行をモニターします。実行が完了し、カルーセルが廃棄物の位置に戻ったら、カバーとフラクションチューブをカルーセルから取り外します。

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最終更新:29 8月 2026