官能基化ナノボディを用いたトランスゴルジ体ネットワークへのGFPタグ付き表面タンパク質の到着のモニタリング

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GFPタグ付き表面タンパク質を発現する硫酸塩欠乏がん細胞から始めます。

放射性標識硫酸塩と修飾抗GFPナノボディ(チロシン硫酸化モチーフを持つ単鎖抗体)を加え、インキュベートします。

硫酸塩を欠乏した細胞は放射性標識硫酸塩を内在化し、それらを細胞成分に組み込みます。

抗GFPナノボディは、GFPタグ付き表面タンパク質に結合し、小胞にエンドサイトーシスされます。この小胞は、トランスゴルジネットワーク(TGN)を含む特定の細胞内経路に沿ってナノボディ表面タンパク質複合体を輸送します。

TGN内では、基質の存在下でスルホトランスフェラーゼが放射性硫酸塩をナノボディ上の特定のチロシン残基に転移し、それによって放射性標識します。

細胞を洗います。次に、細胞を溶解します。

ライセートを遠心分離して、大きな細胞破片を除去します。ニッケルビーズベースの精製法を使用してナノボディを単離します。

単離した画分をSDS-PAGEゲルにロードして、放射性標識ナノボディを別個のバンドに分離します。

ゲルをオートラジオグラフィーにさらします。

得られたオートラジオグラフィーは、放射性標識ナノボディの存在を示す暗い領域を明らかにします。

細胞培養フードで、GFPタグ付きレポータータンパク質を安定的に発現する400,000〜500,000個のHeLa細胞を、抗生物質を含む完全培地で35mmディッシュまたは6ウェルクラスターにシードします。細胞を摂氏37度で7.5%の二酸化炭素とともに一晩インキュベートします。翌日、完全な培地を取り出し、室温で1X PBSで細胞を2回洗浄します。硫酸塩を含まない培地で細胞を摂氏37度、二酸化炭素7.5%で1時間飢餓させます。

一方、放射能作業用に指定された換気フードまたはベンチで、硫酸塩を含まない培地中に1ミリリットルあたり0.5ミリキュリーの硫酸ナトリウムS35を含む硫酸塩標識培地を調製します。次に、VHH二層硫酸塩を1X PBSと硫酸標識培地に混合し、最終濃度2マイクログラム/ミリリットルにします。インキュベーションが完了したら、硫酸塩を含まない培地を、硫酸ナトリウムS35とVHH二層硫酸塩を含む調製した培地混合物0.7ミリリットルと交換します。放射能の作業用に設計された7.5%二酸化炭素インキュベーターで細胞を摂氏37度で1時間インキュベートします。

この後、標識培地を取り除き、冷却プレートまたは氷上で氷冷した1X PBSで細胞を2〜3回洗浄します。1ミリリットルの溶解バッファーを加え、2ミリモルのPMSFと1Xプロテアーゼ阻害剤のカクテルを添加します。細胞を摂氏4度のロッキングプラットフォーム上で10〜15分間インキュベートします。次に、ライセートをこすり落として新しい1.5ミリリットルのチューブに移し、ライセートをボルテックスし、摂氏4度のエンドオーバーエンドローテーターに10〜15分間置きます。10,000 g、摂氏4度で10分間遠心分離して、核後溶解物を調製します。核後ライセートを調製したニッケルビーズの入った1.5ミリリットルのチューブに移し、摂氏4度のエンドオーバーエンドシェーカーで1時間インキュベートしてナノボディを単離します。

この後、1X PBSまたは溶解バッファーのいずれかでビーズを1000 gで1分間穏やかにペレット化して3回洗浄します。ビーズからすべての洗浄バッファーを慎重に取り除き、50マイクロリットルの2Xサンプルバッファーを追加します。摂氏95度で5分間沸騰させます。次に、沸騰したビーズをミディ12.5%SDS-PAGEゲルにロードし、参照色素が分離ゲルの末端に達するまで、標準的なPAGEプロトコルに従って実行します。分離ゲルを約30ミリリットルの固定バッファーに室温で1時間固定します。テキストプロトコルに概説されているように、約50ミリリットルの脱イオン水でゲルを3回洗浄し、ゲルを乾燥させます。乾燥が完了したら、蛍光体スクリーンイメージャーを使用してゲルのオートレントゲン写真を画像化します。

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最終更新:22 8月 2026