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リンパ球やマクロファージなどの浸潤した免疫細胞を含むホルマリン固定、脱パラフィン、および再水和された側頭動脈生検切片を含むスライドから始めます。
活性化されたマクロファージは、マクロファージを他の免疫細胞と区別する疾患関連マーカーである葉酸受容体ベータまたはFR-βを発現します。
スライドを予熱したバッファーに移して、表面受容体を回収します。
切片を過酸化水素で処理し、細胞内ペルオキシダーゼ活性をブロックします。
CD3、CD68、およびFR-βを標的とする一次抗体の混合物を導入し、これらのタンパク質を発現する免疫細胞に結合します。
ビオチン化二次抗体を加え、一次抗体と相互作用し、洗浄します。
ビオチンと結合するストレプトアビジン結合酵素と重ね合わせます。
酵素と相互作用し、局所的な茶色の沈殿物を生成する発色基質で処理します。
対比染色剤であるヘマトキシリンを導入し、核を青く染色します。
小さくて丸い茶色に染色された細胞をCD3発現リンパ球として、大きくて不規則な茶色に染色された細胞をCD68およびFR β発現マクロファージとして顕微鏡で同定します。
セクション内のマクロファージを定量化して、浸潤した免疫細胞全体におけるマクロファージの比率を見つけます。
抗原回収のために、ラックを摂氏95度の200マイクロリットル、10ミリモル/リットル、クエン酸緩衝液を入れたガラス容器に30分間移します。インキュベーションの最後に、スライドを室温まで20分間冷却してから、流水で5分間すすいでください。
内因性ペルオキシダーゼ活性を除去するには、まず疎水性マーカーを使用して各組織サンプルの周囲に円を描き、サンプルを200マイクロリットルの3%過酸化水素で10分間インキュベートし、続いて200マイクロリットルのトリス緩衝生理食塩水またはTBSSで3回洗浄します。最後の洗浄後、各スライドを軽くたたいて余分なバッファーを取り除き、200マイクロリットルの目的の一次抗体カクテルとカバーガラスを各スライドに加え、室温の湿ったチャンバーで1時間インキュベートします。
インキュベーションの最後に、カバーガラスを廃棄し、スライドを新鮮なTBSSで2分間の3回洗浄してすすぎます。余分なバッファーを除去した後、200マイクロリットルの適切なビオチン化二次抗体溶液とカバーガラスを各スライドに加え、室温の湿ったチャンバーで45分間インキュベートします。カバーガラスを廃棄した後、示されているように、スライドをTBSSですすいでください。余分なバッファーを取り除きます。
200マイクロリットルのDAB基質バッファーで切片を室温で10分間有効にします。インキュベーションの最後に、スライドをTBSSと流水水で10分間洗浄してから、ヘマトキシリンで3分間対比染色します。次に、各スライドに70マイクロリットルの適切な封入剤を追加し、カバーガラスを所定の位置に下げるときに気泡が発生しないように、ガラスカバーガラスを封入剤にゆっくりと傾けます。
組織病理学的分析のために、スライドを光学顕微鏡のステージに置き、最初の組織切片の血管構造を評価します。次に、切片あたりのリンパ球数に対するマクロファージの数を定量化します。