フローサイトメトリーを用いた硝子体内送達蛍光粒子のミクログリア取り込みの測定

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ミクログリア、単球、好中球を含むマウス網膜骨髄細胞の単一細胞懸濁液を含むマルチウェルプレートから始めます。

ミクログリア(または網膜食作用免疫細胞)は、硝子体内に事前に注射された真菌由来の蛍光色素標識生体粒子を飲み込むために蛍光を示します。

心分離してFc受容体抗体を添加し、非特異的相互作用部位をブロックします。」

CD11b、Ly6C、およびLy6G表面タンパク質を標的とする蛍光色素標識抗体のカクテルを導入し、それらを発現する骨髄細胞と相互作用します。

結合していない抗体を除去します。損傷した膜を透過し、死んだ細胞のみを染色するヨウ化プロピジウムで処理します。

フローサイトメトリーでは、ヨウ化プロピジウムを励起して死細胞を除外し、非蛍光生細胞を同定します。

紫色のレーザーで細胞を照らします。興奮した生細胞は、CD11bを発現する骨髄細胞を示します。

次に、赤色レーザーで照射し、CD11b陽性細胞内の近遠赤色蛍光色素を励起し、Ly6C発現単球とLy6G発現好中球を示します。

青色レーザーで細胞を励起します。残りのCD11b陽性細胞からの緑色の蛍光の発光は、蛍光粒子のミクログリアの取り込みを確認します。

硝子体内注射の3時間後、45度の角度の鉗子を使用してまぶたをそっと押し、眼球をプロプトします。鉗子を眼球の後ろに置き、引っ張ります。次に、眼球をカルシウムとマグネシウムを含む少量のPBSを含むペトリ皿の乾燥した領域に解剖顕微鏡下で移し、超極細鉗子の先端の1つを使用して角膜輪部に眼に穴を開けます。次に、細い45度の角度の鉗子で眼球を持ち、バネハサミを使用して、円周の約半分が切られるまで角膜輪部の周りを切ります。

眼球をPBSに移し、2番目のペアの細い45度の角度の鉗子を使用して角膜と強膜を引き裂きます。水晶体と網膜は無傷で出てきます。水晶体と網膜が分離されていることを確認し、網膜をカルシウムとマグネシウムを含む PBS 2 ミリリットルを含む 5.4 ミリリットルのポリスチレン試験管に移します。

網膜細胞の単一細胞懸濁液を得るには、製造元の指示に従って神経組織解離キットを使用し、細胞を200マイクロリットルの染色バッファーに再懸濁します。次に、サンプルを96ウェルUボトムプレートの1つのウェルに移します。遠心分離後、プレートを反転させて上清を廃棄し、室温で5分間、ウェルあたりCD16/CD32抗体を含む25マイクロリットルの染色バッファーでFC受容体をブロックします。次に、暗所で室温で15分間、目的の抗体で細胞を標識します。

次に、細胞をペレット化し、ウェルあたり200マイクロリットルの新鮮な染色バッファーで洗浄します。次に、ペレットを200マイクロリットルの染色バッファーと生存率色素に再懸濁し、サンプルを1.2ミリリットルのマイクロタイターチューブに移します。次に、ウェルをさらに100マイクロリットルの染色バッファーと生存率色素で洗浄し、フローサイトメトリーによる分析のために対応するサンプルで洗浄液をプールします。

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最終更新:15 8月 2026