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末
梢血単核球またはPBMCは、リンパ球と単球を含む混合細胞集団です。
死んだ細胞を識別するために蛍光生存率色素を加え、さまざまな細胞タイプを同定するために蛍光標識抗体カクテルを追加します。
蛍光色素A結合抗体は、表面マーカー(T細胞のCD3、γδT細胞のγδT細胞受容体またはTCR、ナチュラルキラーまたはNK細胞のCD56)に結合します。
蛍光色素B結合抗体は、T細胞のCD4およびCD8、B細胞のCD19、および単球のCD14に結合します。
フローサイトメトリーを使用して、生細胞サブセットを同定します。
CD8+ および CD4+ T 細胞は CD3+ ですが、CD4+ 細胞は CD3 単陽性細胞と CD3-CD8 二重陽性細胞の間にあります。
γδ T 細胞は、CD4+ および CD8+ 細胞と比較して、γδ TCR およびより高い CD3 を発現します。
B細胞とNK細胞はCD3-ですが、B細胞ではCD19、NK細胞ではCD56によって同定されます。
単球はCD14発現によって同定されます。
染色用のPBMCを準備するには、各サンプル100マイクロリットルを96ウェルVボトムプレートに移します。プレートを室温で350回gで3分間遠心分離します。慎重に、細胞ペレットを乱さずに上清を吸引します。各ウェルに、タンパク質上の遊離アミンと反応する生/死固定可能な色素を含む100マイクロリットルのPBSを加え、PBMC混合物を慎重に再懸濁します。
その後
、プレートを室温で10分間放置して、死細胞を標識します。各サンプルについて、7つの抗体すべてを含む30マイクロリットルの混合物を調製します。この段階で、異なる標的分子および異なる蛍光色素に対する滴定抗体も添加できます。96ウェルプレートを室温で350回gで3分間遠心分離し、細胞ペレットを乱さずに上清を注意深く吸引します。
抗体カクテルを各ウェルに加え、気泡を発生させないように慎重に再懸濁します。暗所で室温で30分間インキュベートします。30分後、各ウェルに150マイクロリットルの染色バッファーを加え、プレートを350倍gで室温で3分間遠心分離します。細胞ペレットを乱すことなく上清を慎重に吸引し、細胞を200マイクロリットルのPBSに再懸濁します。これで、細胞はフローサイトメトリー分析の準備が整いました。
この2蛍光色素、7マーカーのゲーティング戦略を開始するには、リンパ球ゲートを選択し、このプロトコルで使用される2つの蛍光色素の1つを各軸にドットプロットを作成します。ドットプロットの右上隅でCD3およびCD8二重陽性細胞として識別されるCD8陽性T細胞のゲート。NK T細胞を含む可能性のある薄暗いCD8集団を除外します。CD4陽性T細胞のゲートは、CD8陽性T細胞とCD3単陽性集団の間の集団として識別されます。
ガンマデルタT細胞上のゲートは、高CD3細胞として同定されています。ガンマデルタT細胞をCD8陽性とCD8陰性に細分化します。CD3陽性細胞とCD3陰性細胞の間の集団として同定されるNK細胞のゲート。NK細胞をB細胞のCD8陽性およびCD8陰性ゲートに細分し、ドットプロットの右下隅でCD3陰性、CD19陽性集団として識別します。
単球ゲートを選択し、このプロトコルで使用される2つの蛍光色素の1つを各軸に含むドットプロットを作成します。CD3陰性、CD14陽性集団のゲート。