ビーズ担持脂質二重膜を用いたT細胞からのシナプス出力の調査

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ビーズ支持脂質二重層(BSLB)、抗原ペプチド-MHC複合体、接着、共刺激分子と結合した脂質二重層でコーティングされたシリカビーズを取り上げ、合成抗原提示細胞として機能します。

T細胞とインキュベートします。

TCRはBSLB上の抗原ペプチドに結合し、共刺激シグナルとともに免疫シナプスを形成し、T細胞を活性化します。

この結合は細胞内シグナル伝達カスケードを引き起こし、アクチン再構成を誘導し、接着分子とシグナル伝達分子を含むシナプスにマイクロクラスターを形成します。

T 細胞は、TCR、共刺激分子、および溶解顆粒内容物が豊富なトランスシナプス小胞をシナプスに放出し、BSLB に結合します。

共培養を徐々に冷却して、BSLBをT細胞から分離します。

遠心分離して上清を廃棄します。タンパク質含有バッファーを使用して、表面の遊離結合部位をブロックします。

BSLBおよびT細胞を遠心分離し、特定のシグナル伝達および共刺激分子に結合する蛍光色素結合抗体で処理します。

フローサイトメトリーを使用して、BSLBおよびT細胞からの蛍光シグナルを分析し、シナプス出力を定量化します。

ウェルあたり500,000BSLBを200マイクロリットルのHBS / HSAバッファーに再懸濁します。ウェルあたり100マイクロリットルのBSLBを新しいU底96ウェルプレートに移して複製し、ウェルあたりの最終的なBSLB量が250,000になるようにします。BSLBを室温で300回gで2分間スピンダウンします。上清を廃棄し、100マイクロリットルのT細胞懸濁液を使用してBSLBを再懸濁します。気泡の発生を防ぐために穏やかに混ぜます。共培養物を摂氏37度で90分間インキュベートします。

細胞を光から保護し、最初に室温で最低15分間インキュベートして共培養物を冷却します。共培養物を室温で500回gで5分間遠心分離します上清を廃棄し、ブロッキングのために室温でカルシウムおよびマグネシウムイオンを含まない2%BSA-PBSに共培養物を再懸濁します。細胞を氷の上に45分間置き、光から保護します。

氷冷した0.22マイクロメートルでろ過した2%BSAおよびPBSを染色バッファーとして使用して、抗体マスターミックスを調製します。このマスターミックスは、追加のブロッキングを提供します。共培養物を500回gで5分間、摂氏4度でスピンダウンします。上清を廃棄し、マルチチャンネルピペットを使用して、最適化された抗体濃度を含むスタンディングマスターミックスに細胞を再懸濁します。

アイソタイプ標識細胞とBSLB、蛍光および非蛍光BSLB、および単独で染色された細胞とBSLBを含めます。容量の半分を上下にピペッティングして穏やかに混合します。氷上で30分間インキュベートし、光から保護します。氷冷した2%BSA-PBSを使用して細胞とBSLBを2回洗浄し、摂氏4度で5分間500回gで回転させます。遠心分離後、ウェルの底に沈殿した共培養物を確認します。次に、洗浄した共培養物を100マイクロリットルのPBSに再懸濁し、すぐに取得します。

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最終更新:1 8月 2026