細胞外マトリックスの硬さ依存性細菌播種を評価するための定量的タイムラプス顕微鏡法

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さまざまな剛性のコラーゲンでコーティングされたポリアクリルアミドヒドロゲル上にヒト内皮細胞単層を接着させたマルチウェルプレートを取ります。

いヒドロゲル上の細胞は、柔らかいヒドロゲルと比較して、細胞骨格の大幅な再編成を受け、細胞内張力を高めます。

細胞を培地で洗浄し、操作されたリステリア菌を添加し、アクチン集合誘導タンパク質(ActA)プロモーターの下で蛍光タンパク質を発現させます。

細胞と細菌の接触を促進するための遠心分離機。細菌のエンドサイトーシスを媒介するためにインキュベートします。

メディアで洗ってください。ゲンタマイシンで処理して、内在化されていない細菌を排除します。インキュベート。

内在化された細菌は細孔形成毒素を放出し、食体膜を破壊します。細胞質ゾル細菌は、ActAと蛍光タンパク質の発現をアップレギュレートし、細胞内細菌を標識します。

ActAタンパク質はアクチン重合を誘導し、アクチン彗星の尾を形成して細菌を前進させ、隣接する細胞による内在化を引き起こし、播種を促進します。

インキュベーション後、色素含有培地を使用して細胞核を染色します。培地をゲンタマイシンを含む培地に交換します。

タイムラプス顕微鏡検査を行います。

らかいヒドロゲルは、細胞内張力が増加する硬いヒドロゲルと比較して、細菌の細胞間急速な拡散を促進し、マトリックスの剛性依存性細菌の播種を示唆しています。

テキストプロトコルに従ってL.モノサイトゲネスの一晩培養を調製した後、培養物1ミリリットルを微量遠心チューブに移し、2,000倍gおよび室温で4分間スピンダウンします。組織培養グレードのPBSを使用してペレットを2回洗浄した後、1ミリリットルのPBSを使用してペレットを再懸濁します。

10または50マイクロリットルの細菌懸濁液と1ミリリットルのMCDB-131フル培地を組み合わせて、宿主細胞あたり約50個の細菌または宿主細胞あたり10個の細菌の感染の多様性(MOI)を混合して、感染ミックスを調製します。ヒドロゲルや細胞を破壊しないように注意しながら、24ウェルプレートのウェルから培地を取り出します。

1ミリリットルのMCDB-131フル培地を使用して細胞を1回洗浄し、次に1ミリリットルの細菌を各ウェルに加えます。皿に蓋をし、漏れを防ぐためにポリエチレン製のフードラップで包みます。プレートを2,000 x g で10分間遠心分離して、侵入を同期させます。次に、培養物を摂氏37度で30分間インキュベートします。MCDB-131フル培地を使用して、サンプルを4回洗浄し、組織培養インキュベーターに戻します。さらに30分後、培地をゲンタマイシン1ミリリットルあたり20マイクログラムを添加したMCDB-131フル培地と交換します。

HMEC-1細胞をPAヒドロゲルに播種し、テキストプロトコルに従ってゲンタマイシンで処理した後、プレートを5時間インキュベートして、ActAプロモーターがオンになり、mTagRFPオープンリーディングフレームの発現を駆動します。

感染の4時間後、1マイクロリットルの1mg / mlのヘヒスト色素と1ミリリットルのL15フル培地を混合し、各ウェルに添加して核を染色します。細胞を10分間インキュベートした後、ゲンタマイシン1ミリリットルあたり20マイクログラムを添加した1ミリリットルのL15フル培地で培地を交換します。

オートフォーカス機能を使用して5分ごとに複数の位置を画像化し、さまざまな剛性のヒドロゲルに播種されたHMEC-1単層を介してLM細菌がどのように広がるかを監視します。

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Last updated: 18 July 2026