抗真菌化合物のスクリーニングのためのIn vitroブロス微量希釈アッセイ

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マイクロタイタープレートを取り、新規抗菌ペプチドまたはAMP(試験化合物)の連続希釈液を追加します。

ウェルのサブセットを成長コントロールとして指定し、AMPを含まない滅菌水を追加します。

成長培地に懸濁した病原性真菌を選択したウェルに加えます。

真菌を含まない培地のみを、ブランクコントロールとして指定されたウェルのサブセットに追加します。

プレートを密封し、真菌の増殖を助長する湿気の多い条件下でインキュベートします。

インキュベーション後、顕微鏡でウェルを観察します。

AMPがない場合の真菌の増殖により、成長コントロールは濁って見えます。AMPのすべての希釈液の濁度は、真菌に対して効果がないことを示しています。

真菌の増殖を除いた空白のコントロールは、明確に見えます。テストウェルをブランクコントロールと比較して、AMPの抗真菌活性を示す増殖がないことを確認します。

真菌の増殖を阻害するAMPの最低濃度は、最小阻害濃度(MIC)と呼ばれます。

抗真菌アッセイは、各ペプチドと対照抗真菌剤の 2 倍の連続希釈とウェルあたり 50 マイクロリットルの最終容量を使用して、96 ウェル ポリスチレン マイクロプレートで 3 回実行されます。

プロトコルで最も重要なステップは、連続希釈です。したがって、次のいくつかの手順では、分析全体を損なうエラーを避けるために細心の注意を払ってください。

ピペットを使用して、100マイクロリットルの抗真菌ペプチドを、行Aの列1から3の列に、所望の最高最終濃度の倍倍の強度濃度で添加します。マルチチャンネルピペットを使用して、50マイクロリットルの滅菌水を列BからHの他のウェルに加えます。最高濃度のウェルの50マイクロリットルを取り除きます。 次の濃度の対応するウェルに移し、数回上下にピペッティングして均質化します。

最も濃度の低いウェルに達するまで段階希釈を繰り返し、これらのウェルから50マイクロリットルを廃棄します。行 A、B、および C の列 11 と 12 には、ブランク コントロールまたは負の成長コントロール用の水のみを残します。培地中の50マイクロリットルの倍強度調整接種物RPMI1640カラム1〜3とカラム11の各ウェルに加えます。

C. albicans の最終濃度は 2,000 細胞/ミリリットル、C. neoformans の最終濃度は 10,000 細胞/ミリリットルになります。抗真菌剤を含まずに50マイクロリットルの水と50マイクロリットルの調整された接種物を混合することにより、負の成長コントロールを調製します。50マイクロリットルの水と50マイクロリットルの細胞なし培地を組み合わせて、ブランクコントロールを調製します。

コントロールを適切なウェルにロードします。倒立光学顕微鏡を使用してすべてのウェルを観察し、プレートを37度で200RPMで振とうしながらインキュベートします。インキュベーション期間の後、すべてのウェルを再度観察して、形態の変化を確認し、汚染の兆候を確認します。

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最終更新:15 8月 2026