共焦点顕微鏡法を用いた異なる腫瘍領域における常在性T細胞遊走のリアルタイム解析

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常在T細胞を含む肺腫瘍スライスから始めます。

T 細胞は腫瘍微小環境内を移動し、腫瘍細胞や間質要素と相互作用して免疫機能を実行します。

腫瘍微小環境の組成は、T 細胞の変位と速度に強く影響します。

異なる蛍光共役抗体を添加して、微小環境内のT細胞、腫瘍細胞、および間質要素を標識します。

損傷

した原形質膜で細胞に浸潤して核を染色するDAPIを加え、腫瘍内の壊死領域を視覚化できるようにします。

染色したサンプルを共焦点顕微鏡で観察します。

適切な蛍光光を使用して、常在T細胞を含む目的の腫瘍領域を選択します。DAPI 陽性細胞を評価することにより、細胞の生存率を評価します。

リアルタイム分析の場合は、時間間隔と合計記録時間を定義します。

Zスタック画像をキャプチャするには、標識されたT細胞の下の深さから始めて、さまざまな時間間隔で画像をキャプチャします。

追跡ソフトウェアを利用して、さまざまな腫瘍領域における T 細胞変位長と平均速度を比較します。

必要な蛍光標識抗体と蛍光核色素DAPIを、フェノールレッドフリーRPMI培地で必要な最終濃度まで希釈します。次に、培養プレートをインキュベーターから取り外し、細い先端を使用して、ステンレス鋼のワッシャー内の液体を吸引します。

次に、スライスに触れずに、40マイクロリットルの希釈抗体を各腫瘍スライスに加えます。染色を可能にするには、プレートを摂氏37度で15分間インキュベートします。染色ステップが完了したら、細い鉗子を使用してワッシャーを取り外します。次に、スライスをそっと取り出し、フェノールレッドフリーのRPMI1640培地に10秒間浸します。スライスを細胞培養インサートに戻し、各スライスにフェノールレッドフリー RPMI1640培地を一滴加えます。プレートを摂氏37度で10分間インキュベートしてから、イメージングに進みます。

この実験を開始する数時間前に、顕微鏡の加熱室の温度を摂氏37度に設定し、酸素化されたフェノールレッドフリーRPMI培地で腫瘍スライスを絶えず灌流するようにセットアップされた顕微鏡を準備し、蠕動ポンプを使用して溶液を廃棄物収集フラスコに吸引します。

細い鉗子を使用して、染色されたスライスを6ウェルプレートから持ち上げ、フェノールレッドフリーのRPMI培地で満たされた35ミリメートルのプラスチック皿に移し、スライスの上にスライスアンカーを置いてサポートします。次に、このペトリ皿を顕微鏡のイメージングステージに置きます。

灌流システムの入口と出口の先端を接続した後、蠕動ポンプをオンにして、酸素化媒体が灌流管を通過できるようにします。水浸対物レンズをスライスまで下げ、明視野光または適切な波長でスライスの上部に焦点を合わせます。

次に、適切なフィルターを使用して、目的のすべての蛍光標識細胞、すなわちCD8 T細胞、腫瘍膵島、およびCD90陽性間質細胞を含む関心領域を視覚化して選択します。観察された蛍光信号の明るさに合わせて、適切なレーザー強度と露光時間を使用してイメージングセッションを設定します。次に、腫瘍スライス内で画像化するZスタックの厚さを設定します。

次に、Zスタック画像の時間間隔と合計記録時間を選択して、特定の時間間隔で画像をキャプチャします。蛍光画像をキャプチャしてエクスポートした後、テキストプロトコルに記載されているようにCD8 T細胞遊走を分析します。

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最終更新:29 8月 2026