0 閲覧数 • 3:10 分 • July 8th, 2025
網膜を湿らせた細胞ストレーナーの上に置き、円を描くように浸軟させて、網膜細胞を細胞外マトリックスから分離します。
ストレーナーを収集チューブに移します。
リン酸緩衝液と血清溶液をストレーナーに加えて、細胞を洗浄して収集します。
遠心分離機で細胞を沈殿させます。上清を廃棄し、細胞をリン酸緩衝液と血清溶液に再懸濁します。
細胞上のFc受容体に結合するブロッキング抗体を添加し、標的抗体の非特異的結合を防ぎます。
次に、さまざまな細胞型の特定の細胞表面マーカーに結合する蛍光タグ付きおよびタグなしの一次抗体を追加します。
結合していない抗体を洗浄して除去します。
蛍光タグ付き二次抗体を添加して、タグなしの一次抗体に結合します。
結合していない抗体を洗浄して除去します。
蛍光活性化細胞選別(FACS)を実行して、標識細胞の異なる蛍光シグナルを捕捉し、さまざまな網膜細胞集団から網膜神経節細胞を選別します。
PBSとFBSで湿らせた滅菌70ミクロンのナイロンストレーナーに最大12個の網膜を置き、円を描くように10ミリリットルのシリンジプランジャーの後端で網膜を穏やかに浸軟させます。すべての細胞が解離したら、ストレーナーをポリプロピレン収集チューブの上に置き、P1000ピペットを使用して、ストレーナーを介して細胞をろ過して収集チューブに送ります。
ストレーナーをPBSとFBSですすぎ、洗浄液を収集チューブにプールします。十分なPBSとFBSを加えて、網膜あたり最大1ミリリットルの溶液に最終容量を上げ、遠心分離によって細胞を収集します。次に、ペレットをPBSとFBSに網膜濃度5あたり1ミリリットルの培地で再懸濁します。次に、1 x 106細胞あたり1マイクロリットルの抗マウスCD16/32抗体で、各チューブ内の非特異的FC受容体結合を室温で10分間ブロックします。
ブロッキングインキュベーションの最後に、目的の抗体カクテルを穏やかなピペッティングで細胞に加え、光から保護された氷上で30分間インキュベートします。次に、4ミリリットルのPBSおよびFBSの最終容量で細胞を2回洗浄します。光から保護された氷上でさらに30分間、適切な二次抗体で細胞を標識し、その後PBSとFBSで2回洗浄し、サンプルチューブをフローサイトメーターにロードします。
本記事では、蛍光活性化細胞分取法(FACS)を用いてマウス網膜から網膜神経節細胞を単離するためのプロトコルを詳しく解説します。この手法では、網膜細胞の分散、非特異的結合のブロッキング、および分取のための抗体による細胞標識を行います。
初代網膜神経節細胞を単離することで、機能解析のための精製された疾患関連システムが提供され、神経変性疾患の標的バリデーションにおけるメカニズム的なリスク低減が可能になります。このアプローチは、RGC特有の経路や治療仮説を直接的に検証することを可能にし、初期探索段階における予測の信頼性を高めます。本手法は、視覚神経科学プログラムにおいて、標的の同定から前臨床モデリングまでのトランスレーショナルな連続性を向上させます。
この手法は、ターゲットバリデーションからアッセイ開発、そして前臨床評価に至るディスカバリー・コンティニュアムに適合しており、RGC特異的なリードアウトに基づいた治療候補物質の反復的な最適化を可能にします。
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最終更新:22 8月 2026