ヒト直腸吸引生検切片におけるS-100タンパク質の免疫組織化学的染色

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曝露されたタンパク質抗原と不活化された内因性ペルオキシダーゼを含む固定ヒト直腸吸引生検切片を採取します。

非特異的抗体結合を防ぐためにブロッキング溶液を追加します。

ブロッキング溶液を、ヒルシュスプルング病のマーカーである標的グリア細胞タンパク質S-100に結合する一次抗体に置き換えます。

結合していない抗体を除去し、ペルオキシダーゼポリマーとインキュベートしてシグナルを増幅します。

余分なポリマーを取り除くために洗浄します。酵素ポリマーに結合する二次抗体と一次抗体を追加します。

結合していない抗体を除去し、発色基質を追加します。

ペルオキシダーゼは基質と反応し、着色された沈殿物を形成します。

すすぎ、余分な沈殿物を取り除きます。

核を染色するために染料を加えます。

酸エタノール溶液で洗浄して余分な染料を取り除きます。

次に、濃度を上げたエタノールとキシレンを使用して切片を脱水します。

最後に、マウントして顕微鏡下で観察し、標的タンパク質の存在を示す染色を視覚化します。

余分なウシ血清アルブミンを廃棄し、摂氏4度で一晩50マイクロリットルの目的の一次抗体で細胞を標識します。翌朝、PBSで3分間の洗浄でスライドをすすぎ、各スライドに50マイクロリットルのポリマーエンハンサーを加えます。摂氏37度で20分後、スライドをPBSで3回洗浄し、各組織切片に50マイクロリットルの二次抗体Bを加えます。

摂氏37度で30分後、PBSで5分間の洗浄を3回行って切片をすすぎ、各スライドに調製したばかりのDABワーキング溶液を一滴加えます。光学顕微鏡で適切なレベルの茶色染色が検出されたら、スライドをPBSで5分間すすぎ、1滴のヘマトキシリンで核を1分間対比染色します。

を少し流して余分な汚れを約30〜40秒間取り除き、その後、新鮮なPBSで25〜30秒間洗浄します。1%塩酸エタノールで組織を10秒間分化し、続いて1分間PBS洗浄します。

水和と逆の順序で5分間の浸漬でスライドを脱水し、スライドをキシレンの5分間の交換に2回さらします。次に、ウルトラクリーンマウントを使用してカバーガラスを取り付け、スライドを乾燥させてから光学顕微鏡で視覚化します。

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最終更新:29 8月 2026