0 閲覧数 • 3:02 分 • July 8th, 2025
曝露されたタンパク質抗原と不活化された内因性ペルオキシダーゼを含む固定ヒト直腸吸引生検切片を採取します。
非特異的抗体結合を防ぐためにブロッキング溶液を追加します。
ブロッキング溶液を、ヒルシュスプルング病のマーカーである標的グリア細胞タンパク質S-100に結合する一次抗体に置き換えます。
結合していない抗体を除去し、ペルオキシダーゼポリマーとインキュベートしてシグナルを増幅します。
余分なポリマーを取り除くために洗浄します。酵素ポリマーに結合する二次抗体と一次抗体を追加します。
結合していない抗体を除去し、発色基質を追加します。
ペルオキシダーゼは基質と反応し、着色された沈殿物を形成します。
すすぎ、余分な沈殿物を取り除きます。
核を染色するために染料を加えます。
酸エタノール溶液で洗浄して余分な染料を取り除きます。
次に、濃度を上げたエタノールとキシレンを使用して切片を脱水します。
最後に、マウントして顕微鏡下で観察し、標的タンパク質の存在を示す染色を視覚化します。
余分なウシ血清アルブミンを廃棄し、摂氏4度で一晩50マイクロリットルの目的の一次抗体で細胞を標識します。翌朝、PBSで3分間の洗浄でスライドをすすぎ、各スライドに50マイクロリットルのポリマーエンハンサーを加えます。摂氏37度で20分後、スライドをPBSで3回洗浄し、各組織切片に50マイクロリットルの二次抗体Bを加えます。
摂氏37度で30分後、PBSで5分間の洗浄を3回行って切片をすすぎ、各スライドに調製したばかりのDABワーキング溶液を一滴加えます。光学顕微鏡で適切なレベルの茶色染色が検出されたら、スライドをPBSで5分間すすぎ、1滴のヘマトキシリンで核を1分間対比染色します。
水を少し流して余分な汚れを約30〜40秒間取り除き、その後、新鮮なPBSで25〜30秒間洗浄します。1%塩酸エタノールで組織を10秒間分化し、続いて1分間PBS洗浄します。
水和と逆の順序で5分間の浸漬でスライドを脱水し、スライドをキシレンの5分間の交換に2回さらします。次に、ウルトラクリーンマウントを使用してカバーガラスを取り付け、スライドを乾燥させてから光学顕微鏡で視覚化します。
本記事では、ヒルシュスプルング病に関連するマーカーであるS-100タンパク質を検出するための、ヒト直腸生検切片の免疫組織化学染色のプロトコルについて説明します。この手法は、ブロッキング、抗体反応、および標的タンパク質の存在を可視化するための手法を含むいくつかの工程で構成されています。
直腸吸引生検切片におけるS-100タンパク質の免疫組織化学的染色は、グリア細胞の存在に関する強固で定量的な読み取り値を提供し、ヒルシュスプルング病などの腸管神経病におけるターゲットバリデーションを直接的にサポートします。このワークフローにより、組織サンプルの標準化され再現性のある評価が可能となり、確実な生物学的リスク低減と研究間の比較可能性が促進されます。このような検証済みマーカーの統合は、神経胃腸学における早期診断およびトランスレーショナルリサーチのパイプラインを強化します。
この免疫組織化学プロトコルは、初期の探索から前臨床検証までの連続的なプロセスに適合し、ヒト組織検体におけるターゲットおよびバイオマーカー確認のための標準化された手法を提供します。
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最終更新:29 8月 2026