0 閲覧数 • 3:14 分 • July 8th, 2025
マウス脳幹の両側に位置する青斑核領域には、ノルエピネフリン産生ニューロンが含まれており、脳全体のさまざまな領域を調節しています。
これらの青斑核領域を検出するには、固定された凍結保存されたマウス脳幹切片を運ぶスライドガラスから始めます。
スライドをバッファーで洗浄し、固定トレースを除去します。
界面活性剤を含むバッファーを加え、インキュベートしてメンブレンを透過処理し、洗浄します。
ドーパミンを神経伝達物質であるノルエピネフリンに変換するドーパミンβ-ヒドロキシラーゼ酵素に特異的な一次抗体を導入します。
抗体がドーパミンβ-ヒドロキシラーゼと相互作用するようにインキュベートします。
結合していない抗体を洗浄して除去します。
次に、緑色の蛍光色素共役二次抗体を加え、暗所でインキュベートします。
二次抗体は一次抗体に結合し、洗浄します。
脳セクションに封入剤を加え、蓋をして乾燥させます。
蛍光顕微鏡でスライドを観察します。
脳切片の標識ノルエピネフリン産生ニューロンを表す緑色の蛍光は、青斑核領域の存在を示しています。
初日に、24ウェルプレート内の脳スライスをPBSでそれぞれ5分間3回洗浄します。その後、0.5%PBSを洗剤で加え、摂氏4度で24時間透過処理します。
翌日、スライスを0.5%PBSDでそれぞれ5分間3回洗浄します。次に、一次抗体を0.5%PBSDに1〜500の希釈で添加し、摂氏4度で18時間インキュベートします。
3日目に、スライスを0.5%PBSDでそれぞれ10分間3回洗浄します。次に、二次抗体を1〜1,000の希釈で0.5%PBSDに添加します。プレートをアルミホイルで包み、摂氏4度で16時間インキュベートします。
インキュベーション後、スライスを0.5%PBSDでそれぞれ5分間3回洗浄し、次にPBSで5分間洗浄します。DAPIを含まないハードセットの封入剤を使用してセクションを覆います。ガラスカバーをかぶせ、室温で30分間乾燥させます。次に、適切な蛍光波長からのシグナルを検出する設定を備えた共焦点顕微鏡を使用して、脳スライスを画像化します。
本プロトコルでは、マウス脳切片における青斑核を局在化するための詳細な免疫組織化学的手法について記述します。緑色蛍光色素標識抗体を用いてドパミンβ-ヒドロキシラーゼを標的とすることで、ノルアドレナリン産生ニューロンを可視化し、蛍光顕微鏡を用いて青斑核領域を正確に同定することが可能になります。
青斑核を正確に同定することで、ノルエピネフリンシグナル伝達経路を研究するための疾患に関連した系が提供され、神経科学のターゲットバリデーションにおけるメカニズム上のリスク低減が可能になります。この免疫組織化学プロトコルは、神経精神疾患の前臨床モデルにおけるバイオマーカー探索および表現型スクリーニングのためのアッセイ開発を支援します。ノルエピネフリン産生ニューロンを確実に可視化することで、ターゲットエンゲージメント研究における予測信頼性が向上し、トランスレーショナルなバイオマーカーの整合が促進されます。
この手法は、ノルアドレナリン作動性ニューロンの完全性を信頼性の高いリードアウトで提供することにより、ターゲットの検証からリード化合物の同定、さらには前臨床での有効性試験に至るまでの創薬プロセスに統合されます。
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最終更新:22 8月 2026