Name: ゾレドロネートを使用してヒト末梢血γδT細胞の拡大 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-09T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 8 s
Description: 学ぶゾレドロネートとIL-2を用いたヒト末梢血γδT細胞の大量培養法。密度勾配遠心でPBMCを単離し、14日間の培養で免疫療法に適した細胞を増殖させる臨床応用可能な手法です。

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1。 PBMCの分離<ol><li>ヘパリンナトリウムでBDバキュテイナCPTの細胞調製チューブへの血液（7.5〜8.0ミリリットル）を描く。チューブはヘパリンナトリウム抗凝固剤とフィコール- Hypaque密度流体、および2つの液体を分離するポリエステルゲル障壁を、含まれています。 1800 × gで20分間水平ローター（スイングアウトの頭）で、室温（18℃〜25℃）でチューブ/血液サンプルを遠心分離します。ブレーキをオフ遠心切り替えます。 </li><li>遠心後、レイヤーの順序は、（上から下まで見て）次のように行われます。）プラズマ - b）の末梢血単核細胞（PBMC）および血小板 - c）の密度のソリューション - D）ポリエステルゲル - E）、顆粒球 - F）赤血球（ 図1）。 </li><li>細胞層を乱すことなく、相間上記プラズマの5〜10 mmを残して、プラズマ層の​​割合を収集する。プラズマは、文化（セクション2.5）に使用することができます。 </li><li>ピペットと15 mlのコニカルチューブに移すとの相間で濃縮分画（PBMC）を回収する。 </li><li> 5回チューブを反転させ、生理食塩水（PBS）リン酸緩衝し、400 × gで5分間遠心操作して、10mlでPBMCを洗ってください。 </li><li>二回の洗浄ステップを繰り返し、次にPBS 5 mlに細胞ペレットを再懸濁します。細胞数を決定します。通常1.3 × 10 6細胞を全血1 mlのから回収されています。 </li><li>フローサイトメトリー（セクション3）（ 図2）でPBMCにおけるγδT細胞の頻度と表現型を決定します。 </li></ol> 2。 γδT細胞の拡大<ol><li>室温で400 × gで5分間、15 mlコニカルチューブに細胞懸濁液を遠心し、上清を捨てる。 </li><li>それぞれ、1000 IU / mlおよび5μMの最終濃度にヒトIL - 2（IL - 2）とゾレドロネート（ゾメタ）を追加することにより、培養液（CM）を準備する。 ALyS203（細胞科学技術研究所）またはOpTmizer（Invitrogen社）のメディアは、γδT細胞（参照6〜9の詳しい情報）の良好な拡張をサポートしています。ゾメタは、液体形態（4 mg/5-mlバイアル）で提供されています。 5μM溶液を調製し、培養液30mlにゾメタの50μlを加える。 </li><li>再懸 ​​濁し、培養液中の細胞ペレットと1 × 10 6細胞/ mlに調整します。 </li><li> 24ウェルプレートの各ウェルに1 × 10 6細胞を含むCMのピペットで1ミリリットル。大規模な文化のために、細胞はプレートのウェル、皿、またはフラスコの表面領域に応じて2 0.5 × 10 6細胞/ cmで播種することができます。 </li><li>それは文化のボリューム（24ウェルプレートの各ウェルに100μL）の約10％になるように自己血漿（セクション1.3）、プールしたヒトAB血清、またはFCSを追加。加湿37℃、5％CO 2 24〜48時間のためのインキュベーターでプレートを置きます。 </li><li> 0.5〜2 × 10 6細胞/ mlの細胞密度で培養を維持する。ヒトIL - 2のみ（1000 IU / ml）を（ゾメタなし）ごとに2〜3日を含む新鮮な培地を追加し、必要に応じて新しい井戸やフラスコに培養細胞を譲渡する、細胞増殖の程度（ 図3）によると。供給血漿または血清中濃度が1％以上を維持できるように、培地に血清。 </li><li>収穫の日12月14日で細胞や頻度、表現型、およびフローサイトメトリーにより、γδT細胞の機能を決定します（下記参照）。 </li></ol> 3。フローサイトメトリーによる表現型解析<ol><li>蛍光活性化細胞選別（FACS）のチューブに2 × 10 5細胞を含む200μlのサンプルを移す。 </li><li>冷PBS 2 mlを加え、400 x gで5分間遠心します。その後、50μlのFACS緩衝液（PBS + 1％FCS + 0.1％アジ化ナトリウム）でペレットを懸濁します。サンプル（モノクローナル抗体は、表1にリストされている）に、各抗体の5μlを添加する。 </li><li> 20分間暗所で氷上でインキュベートする。 </li><li>各サンプルに2 mlのFACS緩衝液を追加してから、渦。 4℃で400 × gで5分℃でサンプルを遠心上清を注意深くデカントする。 </li><li> 300μlのFACS緩衝液と渦で、細胞を再懸濁します。フローサイトメーター（ 図2）上のサンプルを分析する。 </li></ol> 4。 IFN -γ産生アッセイ10 <ol><li>アッセイの前日、RPMI 1640培地+10％FCS（RPMI - 10）ゾメタ（5μM）（以下、Z - Daudiを指定）と一晩の培養を3から5 × 10 5 Daudi細胞/ mlで刺激細胞を準備する。 </li><li> 2 × 10 6細胞/ mlでRPMI - 10 Z -ダウディ再懸濁しますを収集する。丸底96ウェルプレートの各ウェルにZ -ダウディ（2 × 10 5）100μlを追加します。 </li><li>で20μg/ mlでブレフェルジンを含むRPMI - 10に2 × 10 6細胞/ mlでγδT細胞を準備します。各ウェルを含むZ - Daudi細胞にγδT細胞懸濁液（2 × 10 5）100μlを転送したり、井戸（のみRPMI - 10、またはホルボール12 -ミリステート13 -アセテートの20 ng / mlのとRPMI - 10の100μlを制御する[PMA]イオノマイシンのプラス2μg/ mlの）。 </li><li>数回上下にピペッティングして混ぜる。 37℃、5％CO 2インキュベーターで4時間インキュベートする。 </li><li> 4℃で400 × gで5分間プレートを遠心し、冷PBS 200μlでペレットを懸濁します。 </li><li> FACSチューブへサンプルを移す。冷PBS 4 mlを加え、4℃で400 × gで5分間チューブを遠心℃に</li><li> FITC結合抗TCRVγ9（5μl）をとPE/Cy5-conjugated抗CD3 mAb（2.5μl）を持つFACS緩衝液50μlにペレットを再懸濁します。室温で15分間遮光してインキュベートする。 </li><li> IntraPrepの試薬1の100μlを加え、室温で15分間インキュベートする。室温で400 × gで5分間、各チューブと遠心分離機にPBS 4 mlを加え。 </li><li>吸引により上清を除き、IntraPrep試薬2の100μlを加える。振とうせずに室温で5分間インキュベートする。 </li><li>試験管に、PE結合抗- IFN -γモノクローナル抗体の5μlを添加する。室温で15分間遮光してインキュベートする。 </li><li>室温で400 × gで5分間、各チューブと遠心分離機にPBS 4 mlを加え。吸引により上清を除去し、FACS緩衝液0.5 mlに細胞ペレットを再懸濁します。 </li><li>フローサイトメーターで細胞を分析する。 CD3 +TCRVγ9+細胞のゲートとIFN -γ（ 図4）の発現を調べる。 </li></ol> 5。代表的な結果： 培養開始時にPBMCにおけるγδT細胞の割合を決定することが重要です。 図に示す。 2、PBMC中のCD3の割合+TCRVγ9+γδT細胞は、0日目1.6％であった。中央メモリー表現型-支配的な集団は、CD27 + CD45RA +ナイーブまたはCD27 + CD45RAでした。 γδT細胞が効率的に刺激されたとき、彼らは日3-5（ 図3、B）上にクラスターを形成。クラスターの形成が遅延したときは、次のような他の細胞型、の成長CD4 +またはCD8 +αβT細胞やNK細胞がγδT細胞（ 図3 CとD）の成長を支配することができます。文化の14日後、γδT細胞の頻度は、成功したγδT細胞の培養における培養細胞以上の93.8パーセント（ 図2 E）に増加した。培養γδT細胞アップレギュレートNKG2DとCD69の発現（ 図2 G及びH）。彼らは、CD27を表示- CD45RA -エフェクターメモリー表現型（ 図2 F）。 γδT細胞の機能は、サイトカイン産生および細胞毒性に関して評価した。細胞内IFN -γ染色γδT細胞は、PMA /イオノマイシンの治療またはZ - Daudi細胞に反応してIFN -γを産生することが明らかにそのゾレドロネートの治療後に蓄積されたIPP（ 図4）。これらの結果は、ゾレドロネートが効率的に機能するγδT細胞を刺激し、展開することができますを示している。 <table border="1"><tbody><tr><td> チューブ </td><td> FITC </td><td> PE </td><td> ECD </td><td> PE/Cy5 </td></tr><tr><td> 1 </td><td> CD3 </td><td> CD19 </td><td> CD45 </td><td> CD14 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> CD3 </td><td> TCRαβ </td><td> CD4 </td><td> CD8 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> CD3 </td><td></td><td></td><td> CD56 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> TCRVγ9 </td><td> TCRαβ </td><td> CD45 </td><td> CD3 </td></tr><tr><td> 5 </td><td> TCRVγ9 </td><td> NKG2D </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 6 </td><td> TCRVγ9 </td><td> CD69 </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 7 </td><td> TCRVγ9 </td><td>マウスIgG1 </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 8 </td><td> TCRVγ9 </td><td></td><td> CD45RA </td><td> CD27 </td></tr><tr><td> 9 </td><td> TCRVγ9 </td><td></td><td>マウスIgG1 </td><td>マウスIgG1 </td></tr></tbody></table> 表1。γδT細胞のマルチカラー染色に使用されるモノクローナル抗体。当研究室で行わγδT細胞の表現型解析の例を図に示します。 2。 <img src="/files/ftp_upload/3182/3182fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。PBMCの分離。血液（7.5〜8.0ミリリットル）をヘパリンナトリウムでBDバキュテイナCPTの細胞調製チューブに引き込まれて、直接1800 × gで20分間遠心分離する。遠心分離後、得られた層は、boの上から見たttom：）プラズマ - b）のPBMCおよび血小板 - c）の密度のソリューション - D）ポリエステルゲル - E）顆粒球 - f）の赤血球。 <img src="/files/ftp_upload/3182/3182fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。γδT細胞の典型的な表面表現型。 PBMCを14日間ゾレドロネートとIL - 2で刺激した。細胞はで染色したFITC標識抗TCRVγ9とγδT細胞（およびE）の拡大を監視するために抗CD3 PE/Cy5-labeled。 γδT細胞はTCRVγ9の発現により同定した、とCD27とCD45RA（BとF）、NKG2D（CとG）、またはCD69（DおよびH）のそれらの発現を調べた。 <img src="/files/ftp_upload/3182/3182fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。代表γδT細胞の培養。 PBMCをIL - 2（1000 IU / ml）とゾレドロネート（5μM）で刺激した。代表的なフィールドは、（IX71倒立顕微鏡[オリンパス] × 200）表示されます。 γδT細胞のクラスターと集計は、γδT細胞が正常に展開された3日目（A）と5日目（B）、で観察することができます。 γδT細胞増殖は、（CとD）十分でない場合には対照的に、クラスターまたは凝集物が観察されなかった。 <img src="/files/ftp_upload/3182/3182fig4.jpg" alt="図4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図4"> 図4。IFN -γ産生。 γδT細胞は、RPMI - 10（A）またはPMA /イオノマイシン（B）または4時間Z -ダウディ（C）とともにインキュベートした。最初に、TCRVγ9の表面発現は、染色した後、IFN -γ産生は、細胞内IFN -γ染色により検討した。 <img src="/files/ftp_upload/3182/3182fig5.jpg" alt="図5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図5"> 図5。γδT細胞培養の速度論。培養細胞の（A）の絶対数、（B）γδT細胞、および指定された時点で、γδT細胞の（C）絶対数の割合。

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</ol>

利害の衝突は宣言されません。

ここで紹介する方法は、PBMCからのγδT細胞の効率的な展開を可能にします。ゾレドロネートで活性化と拡大γδT細胞とIL - 2は、サイトカイン産生と細胞毒性によって反射された完全なエフェクター機能を、開発する。それが合成phosphoantigensのブロモヒドリンピロリン酸（BrHPP）と2 - メチル-3 - ブテニル-1 - ピロリン酸（2M3B1PP）ことが報告されてもγδT細胞を展開していますが、それらは市販されていない。対照的に、ゾレドロネートは既にゾメタなどの臨床応用のためにライセンスされています。したがって、信頼性の高い試薬が容易に入手可能です。 培地と血清の選択は重要です。成功したγδT細胞の拡大のためにそのようなALyS203（細胞科学技術研究所）またはOpTmizer（Invitrogen社）などの適切な培地を使用する。11その自己血漿を確認し、プールしたヒトAB血清またはFCSは、γδT細胞培養をサポートすることができます。また、いくつかのドナーからのPBMCは関係なく、他の培養試薬のゾレドロネートの刺激に反応しないことに注意してくだ...

<table border="1"><tbody><tr><th>試薬名</th><th>会社</th><th>カタログ番号</th><th>コメント（省略可能） </th></tr><tr><td>ゾメタ</td><td>ノバルティスファーマK. K </td><td></td><td>ゾレドロネート</td></tr><tr><td> PROLEUKIN </td><td>ノバルティスファーマ</td><td></td><td>ヒト組換えIL - 2 </td></tr><tr><td> BDバキュテイナCPTナトリウムヘパリンによる細胞調製チューブ</td><td> BD </td><td> 362753 </td><td></td></tr><tr><td> RPMI1640 </td><td>インビトロジェン</td><td> 21870-076 </td><td></td></tr><tr><td> ALyS203 -培地</td><td>細胞科学技術研究所</td><td> 0301から7 </td><td></td></tr><tr><td> OpTmizer </td><td>インビトロジェン</td><td> 0080022SA </td><td></td></tr><tr><td>ブレフェルジン</td><td>シグマ</td><td> B5936 - 200UL </td><td></td></tr><tr><td>ホルボール12 - ミリステート13 - アセテート（PMA） </td><td>シグマ</td><td> P1585 - 1mgの</td><td></td></tr><tr><td>イオノマイシン</td><td>シグマ</td><td> 13909 - 1mLの</td><td></td></tr><tr><td> IntraPrep </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> A07803 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトCD3 - FITCまたはPE/Cy5 </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> A07746 FITC A07749 PE/Cy5 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトCD4 - ECD </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> 6604727 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトCD8-PE/Cy5 </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> 6607011 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトCD14-PE/Cy5 </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> A07765 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトCD19 - PE </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> A07769 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトCD45 - ECD </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> A07784 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトCD56-PE/Cy5 </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> A07789 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトTCRαβ- PE </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> A39499 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトTCRVγ9- FITC </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> IM1463 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトCD27-PE/Cy5 </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> 6607107 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトCD45RA - ECD </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> IM2711 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトCD69 - PE </td><td> BD </td><td> 555531 </td><td></td></tr><tr><td>抗ヒトNKG2D - PE </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> A08934 </td><td></td></tr><tr><td>抗humalIFNγ- PE </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> IM2717U </td><td></td></tr><tr><td>マウスIgG1アイソタイプコントロール- PE </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> A07796 </td><td></td></tr><tr><td>マウスIgG1アイソタイプコントロール、ECDまたはPE/Cy5 </td><td> BECKMAN COULTER </td><td> A07797 A07798 </td><td></td></tr></tbody></table>

ゾレドロネートを使用してヒト末梢血γδt細胞の拡大

Expansion of Human Peripheral Blood  &gamma;&delta; T Cells using Zoledronate

人間のγδT細胞が認識し、ストレス誘発抗原のさまざまに反応する、それによって生来の広範な抗腫瘍および抗感染活動を展開することができます。末梢血中のγδT細胞の1大多数がVγ9Vδ2T細胞受容体を持っている。これらの細胞は主要組織適合性複合体に依存しない方法で抗原を認識し、強力な細胞傷害性とTh1細胞のようなエフェクター機能を開発する。1したがって、γδT細胞は、癌免疫療法のための魅力的な候補エフェクター細胞である。 Vγ9Vδ2T細胞は、次のようなphosphoantigensに対応する（E）-4 -ヒドロキシ-3 -メチル-ブト-2 -エニルピロリン酸（HMBPP）、イソプレノイド生合成を介して細菌で合成され、生成される2、イソペンテニルピロリン酸（IPP）、メバロン ​​酸経路を介して真核細胞で。生理的な状態で3、非形質転換細胞におけるIPPの世代は、γδT細胞の活性化のために十分ではありません。腫瘍細胞でのメバロン ​​酸経路の調節不全は、IPPの蓄積とγδT細胞の活性化につながる。3 aminobisphosphonatesが（そのようなパミドロネートまたはゾレドロネートなど）ファルネシルピロリン酸合成酵素（FPPS）、メバロン ​​酸経路でIPPの下流で作用する酵素の細胞内レベルを抑制するので、 IPPとγδT細胞の認識にsensitibityは、治療上aminobisphosphonates増加させることができる。 IPPの蓄積は私たちにaminobisphosphonatesとγδT細胞を活性化することによって、癌の免疫療法を可能にすること、aminobisphosphonatesの薬理学的に関連する濃度で腫瘍細胞よりもnontransfomred細胞に効率的ではありません。おもしろい4 PBMCがaminobisphosphonatesで処理されるとき、IPPのために効率的で、単球に蓄積これらの細胞による薬物取り込み。IPPとなる抗原提示細胞を蓄積し、末梢血でVγ9Vδ2T細胞を刺激する5単球6これらのメカニズムに基づいて、我々は、ゾレドロネートおよびインターロイキンを使用して、γδT細胞培養物の大規模展開のための技術を開発-2（IL - 2）。γδT細胞の拡大のための7他の方法は、合成phosphoantigensのブロモヒドリンピロリン酸（BrHPP）8または2 -メチル-3 -ブテニル-1 -ピロリン酸（2M3B1PP）を利用する。これらのメソッドの9すべてがexを許可養子免疫療法における使用のためのγδT細胞の多数の結果in vivoでの展開、。ただし、ゾレドロネートがFDA承認された市販の試薬です。ゾレドロネート-拡張されたγδT細胞はCD27を表示- CD45RA -エフェクターメモリー表現型とそれらの機能は、IFN -γ産生アッセイによって評価することができる7。

末梢血単核細胞（PBMC）からのγδT細胞を拡大する方法が記載されている。 PBMC由来のγδT細胞を刺激し、ゾレドロネートとインターロイキン-2（IL - 2）を使用して展開されます。 γδT細胞の大規模の拡大は、癌の自家細胞免疫療法に適用することができます。

ゾレドロネートを使用してヒト末梢血γδT細胞の拡大

ヒトγδ T細胞は、ストレス誘発性の広範な抗原を認識して応答することができ、それによって先天的な広範な抗腫瘍作用および...

このビデオでは、ゾレドロン酸を用いたヒト末梢血γδ T細胞の大規模増殖法について解説します。まず、全血を密度勾配遠心分離にかけ、末梢血単核細胞（PBMC）を分離します。次いで、PBMCにゾレドロン酸を添加して単球を抗原提示細胞へ誘導し、さらにIL-2を添加してγδ T細胞を刺激します。γδ T細胞を増殖させるため、細胞を最大14日間培養します。フローサイトメトリーによる培養解析では、回収された細胞の大部分がCD3陽性Vγ9陽性の表現型を示すことが確認されます。既存の手法に対する本手法の主な利点は、Zometaにおいて既に臨床応用が承認されている点です。したがって、臨床グレードのγδ T細胞調製のための信頼性の高い試薬が容易に入手可能であり、この手順が細胞培養において実用的であることが示されます。当研究室の技術者は、ナトリウムヘパリン抗凝固剤と密度勾配液、および2つの液体を分離するポリエステルゲルバリアを含むBD Vacutainer CPT細胞調製チューブに採取した全血から、末梢血単核細胞を分離することからこの手順を開始します。サンプルを室温にて、水平スイングバケットローターを用い、1800 ×gで20分間遠心分離します。遠心分離後ブレーキを解除すると、チューブの内容物は5つの層に分離されます。最上層の黄色い層は血漿で構成されています。その下の白色の層には末梢血単核細胞と血小板が含まれており、これらはより淡い黄色の密度勾配溶液の上に位置しています。白色のポリエステルゲル層がこれらを顆粒球層から分離しており、顆粒球層は灰色の層を形成してチューブ底部の赤血球の上に位置しています。2 mL ピペットを使用し、界面の上に 5〜10 mm の血漿を残すように注意しながら、血漿層の一部を回収して 15 mL コニカルチューブに移します。このチューブを 4 °C で保存し、培養に使用します。次に、2 mL ピペットを用いて界面にある PBMC 濃縮画分を回収し、15 mL コニカルチューブに移します。PBMCを洗浄するために、10 millilitersのPBSを加え、チューブを5回反転させます。次に、400 times Gで5分間遠心分離します。この洗浄工程を2回繰り返します。その後、細胞ペレットを5 millilitersのPBSで再懸濁し、ヘモサイトメーターを用いて細胞数を測定します。通常、全血1 mLから1.3 × 10⁶個の細胞が回収されます。1 × 10⁶個の細胞を含むPBMC分画を分離し、フローサイトメトリー解析用に氷上に保持します。PBMCサンプルのγδ T細胞を増殖させるため、15 mLコニカルチューブに入れた細胞懸濁液を、室温で400 ×gで5分間遠心分離します。遠心後、上清を捨て、1000 IU/mLのIL-2および5 µMのゾレドロン酸を添加した細胞培養培地を用いて、1 × 10⁶ cells/mLの密度で細胞を再懸濁します。ゾレドロン酸は単球中のファルネシルピロリン酸合成酵素を阻害し、イソペンテニルピロリン酸の蓄積を誘導することで、単球を抗原提示細胞へとシフトさせます。次にピペットを使用します。1×10⁶個の細胞を含む1 mLの培地を、24ウェルプレートの各ウェルに分注します。細胞密度は0.5×10⁶ cm⁻²にする必要があります。したがって、より大規模な培養を行う場合は、24ウェルプレートの各ウェルに合わせて適切にスケールアップしてください。あらかじめ採取しておいた100 µLの自己血漿、プールヒトAB型血清、またはFBSのいずれかを加えます。プレートを、加湿された37 °C、5% CO2インキュベーター内に設置し、2〜3日ごとに培地を交換します。培地は、1000 IU/mLのヒトIL-2を添加した新鮮な血清含有培地と交換してください。細胞密度が0.5～2×10⁶ cells/mLに達したら、新しいウェルまたはフラスコに1:2で継代します。数日間にわたって細胞を観察してください。ここでは0日目の細胞を示しています。小さい方の細胞はリンパ球です。大きい方の細胞は単球です。約24時間後、単球はウェルの底に接着します。2日後、一部のリンパ球が単球に接着し、3日目までにはγδ T細胞がクラスターを形成し始めます。5日目になると、細胞の大きなクラスターが観察されます。対照的に、γδ T細胞の増殖が不十分な場合には、クラスターや凝集塊は観察されません。クラスター形成が遅延した場合は、ここで示されているように、CD4陽性またはCD8陽性のαβ T細胞、あるいはNK細胞などの他の細胞種の増殖が、γδ T細胞の増殖を上回ります。12日目から14日目に、10 mLピペットで細胞を十分にピペッティングし、50 mLコニカルチューブに回収します。これで、フローサイトメトリーによって、γδ T細胞の頻度、表現型、および機能を解析することが可能になります。PBMCまたは増殖させたγδ T細胞の表現型解析を行うには、まず2×10⁵個の細胞を含む200 µLのサンプルを、9本のフローサイトメトリー用チューブにそれぞれ分注します。2 mLの冷PBSを加え、400 ×gで5分間遠心分離した後、ペレットを50 µLのFACSバッファーで再懸濁します。その後、必要な抗体をそれぞれ5 µLずつサンプルに添加します。サンプルを氷上の暗所で20分間インキュベートします。インキュベーション後、各サンプルに2 mLのfax bufferを加え、4°C、400 ×gで5分間ボルテックス遠心分離します。遠心後、上清を注意深くデカンテーションし、細胞を300 µLのfax bufferに再懸濁してボルテックスします。次に、フローサイトメーターでサンプルを解析し、γδ T細胞の機能を評価します。インターフェロンγの産生能は、インターフェロンγの細胞内染色によって解析します。γδ T細胞を、20 µg/mLのfelden Aを含むRPMI 1640を用いて、2 × 10⁶ cells/mLの濃度で再懸濁します。Felden Aはインターフェロンγの分泌を抑制し、その結果、細胞内にインターフェロンγが蓄積します。次に、100 µLのみのRPMI 10、または20 ng/mLのfour. Ball 12 ate 13 acetateと2 µg/mLのion mycinを含むRPMI 10を分注した96ウェルプレートの各ウェルに、γδ T細胞懸濁液を100 µLずつ移します。またはZ duddy細胞を用います。ピペッティングを数回繰り返し、混合します。37 °C、5% carbon dioxide インキュベーター内で4時間インキュベートします。その後、プレートを4 °Cで400 ×gにて5分間遠心分離し、ペレットを200 µLの冷PBSに懸濁させます。サンプルをFACsチューブに移します。次に、冷えたPBSを4 mL加え、4°Cで400 ×gで5分間遠心分離します。遠心後、5 µLのFACsバッファーを含む50 µLのFACsバッファーでペレットを再懸濁します。FITC標識抗TCRVγ9抗体および2.5 µLのPE-Cy5標識抗CD3モノクローナル抗体を加え、室温で15分間、遮光してインキュベートします。インキュベーション後、100 µLのIntraPrep試薬1を加え、室温で15分間インキュベートします。各チューブに4 mLのPBSを加え、室温で400 ×gで5分間遠心分離します。遠心分離後、ペレットを100 µLのIntraPrep試薬2に再懸濁し、5分間インキュベートします。室温で、PE標識抗インターフェロンガンマモノクローナル抗体5 µLを試験管に加えます。遮光した状態で15分間インキュベートします。室温で、各チューブにPBS 4 mLを加え、400 ×gで5分間遠心分離します。室温で、上清を吸引して取り除き、細胞ペレットを再懸濁します。0.5 mLのfaxバッファー中で行います。フローサイトメーターを用いて細胞を解析し、CD3陽性かつTCR vγ9陽性の細胞をゲートし、インターフェロンγの発現を調べます。γδ T細胞の典型的な表面表現型をここに示します。γδ T細胞は、0日目にCD3およびTCRVγ9の発現によって同定されました。PBMCにおけるCD3陽性TCRVγ9陽性γδ T細胞の割合は1.6%でした。γδ T細胞の主要な集団は、CD27陽性CD45RA陽性のナイーブ型、またはCD27陽性CD45RA陰性のセントラルメモリー型の表現型でした。ナイーブ型かメモリー型の表現型かを判定するために、CD27およびCD45RAの発現が用いられています。CD 27陽性。CD 45 RA陽性はナイーブである。CD 27陽性かつCD 45 RA陰性はセントラルメモリーであり、CD 27陰性かつCD 45 RA陽性はエフェクターメモリーです。RA陰性はエフェクターメモリーです。CD 27陰性。CD 45。RA陽性は終末分化した表現型です。細胞の活性化状態を、ここで示すようにNK G 2DまたはCD 69によって解析しました。γδ T細胞はNK G 2Dを発現しますが、CD 69は発現しません。14日間の培養後、γδ T細胞の頻度は培養細胞の93.8%以上に増加しました。正常に培養されたγδ T細胞は、CD27陰性かつCD45RA陰性のエフェクターメモリー表現型を示しました。また、培養されたγδ T細胞では、nkg2DおよびCD69の発現が上昇しました。細胞内インターフェロンガンマ染色の結果、γδ T細胞はpma CIN処理、またはIPPを蓄積したZ dwy細胞に反応してインターフェロンガンマを産生することが示されました。ゾレドロン酸処理後、PMA CINおよびZ ddy細胞による刺激に対して、それぞれ97%および19.6%のγδ T細胞がインターフェロンガンマを産生しました。これらの結果は、ゾレドロン酸が機能的なγδ T細胞を効率的に刺激および増殖させることができることを示しています。ゾレドロン酸およびIL-2によって拡大培養されたγδ T細胞のキネティクスでは、培養細胞の絶対数は12〜14日まで指数関数的に増加しました。γδ T細胞の濃縮は比較的早期に達成され、7日目までに培養細胞の約80%がγδ T細胞となりました。示されたタイムポイントにおけるγδ T細胞の絶対数は、1.6 × 10⁴個のγδ T細胞を含む1 × 10⁶個のPPMCから、増殖後に約2.2 × 10⁸個のγδ T細胞が得られることを示しています。この手法は、がん免疫療法の分野の研究者が、多種多様な種類のがんにおける臨床応用を模索するための道を切り開くものです。この培養法は、がん患者におけるドナー由来の増殖γδ T細胞移入療法の安全性および実現可能性を評価する、第1相臨床試験に使用されています。

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Research

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学ぶゾレドロネートとIL-2を用いたヒト末梢血γδT細胞の大量培養法。密度勾配遠心でPBMCを単離し、14日間の培養で免疫療法に適した細胞を増殖させる臨床応用可能な手法です。

ゾレドロネートを使用してヒト末梢血γδT細胞の拡大

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