Name: リモートハイスループット表現型解析のためのマウスの目の摘出 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 30 s
Description: 学ぶマウスの眼球摘出術によるリモートハイスループット表現型解析の手法。眼窩内の解剖学的ランドマークを特定し、組織固定のための正確な手技を示す。この方法は神経科学研究における正確な表現型スクリーニングに不可欠である。

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失明を防ぐための研究、サンガー研究所、ウェルカムトラストゲノムキャンパスでとラミロ·ラミレス·ソリス、ジャッキーホワイト、ジャンヌEstabel; Bartly J·モンディーノMDは、ジュール·スタイン眼研究所、カリフォルニア大学ロサンゼルス校（UCLA）のディレクター。この研究は、眼科とビジュアルリサーチにおける動物の使用に関するARVOステートメントに準拠しています。

1。鈍的切開：未固定標本でマウス眼球摘出<ol><li>後部地球儀（眼球）表面への曝露とのアクセスを改善するためにまぶたを引き離す。 </li><li>軌道上の（下）地球儀（眼窩）の背後にある湾曲したドレッシング鉗子を置きます。マハジャンSharptipドレッシング鉗子は、（材料および試薬の表を参照）、この手順を容易にするために、先の尖った先端を持つカスタムインストゥルメントです。 </li><li>鉗子を閉じて、地球儀を圧迫しないように注意しながら、地球の背後にある軌道結合組織や視神経を把握する。 </li><li>ゆっくり上向きに鉗子を引くと軌道から眼球を摘み取る。白い糸状の組織が視神経です。 </li><li> PBSに目を置きます。 30ゲージの針を使用して、単一の穿刺は、眼球に針1〜2ミリメートルを挿入することにより、角膜輪部のすぐ後方に巻きつけてください。これは、眼組織に浸透することができませんそうでなければ、グルタルアルデヒドなどの固定剤は、、、エン直接することができますTER目。固定剤、例えばパラホルムアルデヒドやアルコールなど、関心の眼組織内に拡散することが可能である場合は、この刺し傷の作成は必要でないかもしれません。 </li><li>直ちに浸固定用固定液に全体の目を置きます。 </li></ol> 2。シャープ解剖：灌流固定後に、マウスの眼球摘出<ol><li>離れて地球からまぶたを保持するために湾曲したコリブリ鉗子を使用しています。 </li><li>地球に平行オリエント湾曲したウェストコット郭清をはさみ、軌道の背面方向を目指しながら。 </li><li>劣った、内側、優れており、側面から地球を囲む固定結合組織を切り取ります。 </li><li>地球の後ろに湾曲した鉗子を置き、世界中で押さずに結合組織をつかみ、目を摘出するために前方に引き出します。軌道の結合組織は、灌流固定から硬いですので、軌道組織のさらなる切断は完全にglobを解放する必要があるかもしれません電子。 </li></ol> 3。固定およびパッケージング固定組織の送料は、適切なラベルや包装も含めて制度や郵便サービス要件に従わなければなりません。次のプロトコルは、周囲温度で非感染性の生物学的サンプルを出荷した例です。これは、3包装の層が、ないクラスA / Bの生物学的物質または液体窒素ラベ​​ルを必要とします。 <ol><li>固定が短い場合、少なくとも3 mLの固定、またはポスト固定緩衝液で5 mLのガラス製シンチレーションバイアルに目を置きます。瓶の蓋の上に追跡番号を書いて、パラフィルムでそれを封印。 </li><li>生体試料中に置き、シンチレーションバイアルは、輸送用コンテナを承認した。サンプルが置かれている密封容器、吸収中間層、および保護外層：当研究所では、例えば、認定された容器は、3つの層を必要とします。 </li><li>バブルラップのパッケージにしてからアプリに容器を置きます適切なマニュ​​アルと一緒に実験室の輸送用コンテナをroved。 </li></ol> 4。代表的な結果目の組織学的検査をヘマトキシリン​​およびエオシン染色、酵素発現の検出、透過型電子顕微鏡、免疫組織化学を含む様​​々な方法により行うことができる。 4％パラホルムアルデヒド中で浸漬固定後、組織をミクロトームでパラフィン切片に埋め込まれていました。ハイスループット表現型では、瞳孔視神経節を分析し、その目の中のサンプルのすべての種類の組織（図1）。組織の切片もlacZ発現（図2）、細胞小器官の透過型電子顕微鏡（図3）、および抗体（図4）を持つ特定の分子の発現を調べた。 私たちの表現型スクリーニング方法では、（内側眼角）鼻と時間的（lateraに関して目の向きを維持することが重要ではありませんでしたリットル眼角）の側面。眼の向きが必要な場合は、少なくとも2つのオプションがあります。摘出した後、我々はハンドヘルド焼灼装置と3時の位置に一時的な角膜に光焼灼を適用している。病変は組織学的に明らかであり、組織学的にインクのような処理中に迷子になることはありません。欠点は、焼灼損害賠償審査のための重要な組織かもしれない角膜です。他のオプションは、外眼筋の挿入を識別することができる熟練した解剖学者を必要とします。どちら向きの方法で3劣ると上斜筋の挿入の識別が劣ると優れた、地球の側面にマークを付けます。実体顕微鏡下では、右または左眼等の標本を追跡することが重要です。一緒に、これは切断前に正確な地球のオリエンテーションを許容するでしょう。 <img src="/files/ftp_upload/3184/3184fig1.jpg" alt="目の解剖学的顕微鏡写真;組織学セクション;水晶体、網膜、角膜;細胞層の詳細。" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="図1"> 図1。マウス眼組織学的画像はafte Rリモート買収。マウスの目が4％パラホルムアルデヒドで灌流固定後に鋭い切開により摘出した。ヘマトキシリンとエオシンで染色Aの瞳孔視神経節では、すべての組織の下部構造の保全を示しています。視神経は、ON。 、IPL、内網状層、INLは、内顆粒層、OPL、外網状層、ONL、アウターRGC、網膜神経節細胞：正常な網膜の（緑のスケールバー= 500ミクロン）B.高倍率のビューには、層状構造を示しています核層（光受容細胞）（矢印）は、OS、感光体外側セグメント;、RPE、網膜色素上皮、C、脈絡膜、感光体の内側セグメント（矢頭）です。 （緑のスケールバー= 50ミクロン） では、通常の網膜に比べて、この試料は光受容体の変性にシンナーが原因です。 ONL、IS、およびOS（矢印）は完全に欠けている。 （緑のスケールバー= 50ミクロン） の "alt ="図2 "/&gt; トランスジェニックマウスにおける図2 lacZ発現。目は（5mMのK3Fe（CN）6、5mMのK4Fe（CN）6、2 mMのMgCl2、0.02％NP40鈍的切開により摘出し、1 mg / mlのX-gal溶液に浸漬した、0.1％デオキシコール酸ナトリウム）を37℃で一晩目は30分、ミクロトームで切片は2％formaldehyde/0.2％グルタルアルデヒドで固定した。 X-galを積（青）ラベル：A.繊毛上皮、角膜上皮B.とC.網膜の網膜神経節細胞（RGC）層。 INLは、内顆粒層、ONL、外核層。 <img src="/files/ftp_upload/3184/3184fig3.jpg" alt="網膜構造;桿状外側セグメント、RPE細胞、Bruch膜を示す電子顕微鏡写真。" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="図3"> 図3。網膜色素上皮（RPE）の透過型電子顕微鏡。刺し傷の鈍的切開および作成した後、目が浸いたが0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液中の2.5％ホルムアルデヒド/ 2.5％グルタルアルデヒドで固定した。目はseconのあったdarily徐々に脱水し、1％オスミウムtextroxideで固定し、スパーの樹脂に包埋した。組織は90 nmであった切片とFormvarで覆われた銅スロットグリッド上に配置し、透過型電子顕微鏡を用いて撮像。顕微鏡写真は、感光体外側の神経感覚網膜のセグメントは、網膜色素上皮内メラノソーム（M）とブルッフ膜を示しています。 <img src="/files/ftp_upload/3184/3184fig4.jpg" alt="細菌バイオフィルム構造の蛍光顕微鏡画像。20ミクロンスケールでの倍率。" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="図4"> 図4。マウスの硝子体中のスーパーオキシドジスムターゼ-3の免疫組織化学的標識（緑）。目は鈍的切開により摘出し、4％パラホルムアルデヒド中で浸漬固定を施行した。彼らは、ミクロトームを用いてパラフィン切片中に包埋した。組織切片を1:50に希釈したウサギポリクローナルSOD3抗血清とともにインキュベートした。 SOD3式はヤギ抗ウサギIgG（H + L）のAlexa Fluor 488標識二次抗体を用いて検出した。 SOD3の標識は、GREに示されている専用。

<ol><li>Song, B. J., Tsang, S. H., Lin, C. -S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+models+of+retinal+degeneration+and+targets+for+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Genetic models of retinal degeneration and targets for gene therapy.</a> Gene Ther. Mol. Biol. 11, 229-262 (2007).</li>
<li>Mahajan, V. B., Mondino, B. J., Tsang, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-throughput+Mouse+Eye+Phenomics+System%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Laboratories%2C+Mouse+Genetics+Meeting%22%5BJournal%5D)">A high-throughput Mouse Eye Phenomics System.</a> Cold Spring Harbor Laboratories, Mouse Genetics Meeting. , (2010).</li>
<li>Smith, R. S., John, S. W. M., Nishina, P. M., Sundberg, J. P. In Research Methods For Mutant Mice. , CRC Press. Boca Raton, FL. (2002).</li>
<li>Chang, B., Hawes, N. L., Hurd, R. E., Davisson, M. T., Nusinowitz, S., Heckenlively, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+degeneration+mutants+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Vision+Res%22%5BJournal%5D)">Retinal degeneration mutants in the mouse.</a> Vision Res. 42, 517-525 (2002).</li>
<li>Anderson, M. G., Smith, R. S., Hawes, N. L., Zabaleta, A., Chang, B., Wiggs, J. L., John, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+genes+encoding+melanosomal+proteins+cause+pigmentary+glaucoma+in+DBA%2F2J+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">Mutations in genes encoding melanosomal proteins cause pigmentary glaucoma in DBA/2J mice.</a> Nat. Genet. 30, 81-85 (2002).</li>
<li>Hawes, N. L., Smith, R. S., Chang, B., Davisson, M., Heckenlively, J. R., John, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+fundus+photography+and+angiography%3A+a+catalogue+of+normal+and+mutant+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Vis%22%5BJournal%5D)">Mouse fundus photography and angiography: a catalogue of normal and mutant phenotypes.</a> Mol. Vis. 5, 22-22 (1999).</li>
<li>Won, J., Shi, L. Y., Hicks, W., Wang, J., Hurd, R., Naggert, J. K., Chang, B., Nishina, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+model+resources+for+vision+research%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Mouse model resources for vision research.</a> J. Ophthalmol. 2011, 391384-391384 (2011).</li>
<li>Pinto, L. H., Vitaterna, M. H., Siepka, S. M., Shimomura, K., Lumayag, S., Baker, M., Fenner, D., Mullins, R. F., Sheffield, V. C., Stone, E. M., Heffron, E., Takahashi, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Results+from+screening+over+9000+mutation-bearing+mice+for+defects+in+the+electroretinogram+and+appearance+of+the+fundus%5BTitle%5D)+AND+%22Vision.+Res%22%5BJournal%5D)">Results from screening over 9000 mutation-bearing mice for defects in the electroretinogram and appearance of the fundus.</a> Vision. Res. 44, 3335-3345 (2004).</li>
<li>Heckenlively, J. R., Winston, J. V., Roderick, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Screening+for+mouse+retinal+degenerations.+I.+Correlation+of+indirect+ophthalmoscopy%2C+electroretinograms%2C+and+histology%5BTitle%5D)+AND+%22Doc.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Screening for mouse retinal degenerations. I. Correlation of indirect ophthalmoscopy, electroretinograms, and histology.</a> Doc. Ophthalmol. 71, 229-239 (1989).</li>
<li>Tsang, S. H., Gouras, P., Yamashita, C. K., Kjeldbye, H., Fisher, J., Farber, D. B., Goff, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+degeneration+in+mice+lacking+the+gamma+subunit+of+the+rod+cGMP+phosphodiesterase%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Retinal degeneration in mice lacking the gamma subunit of the rod cGMP phosphodiesterase.</a> Science. 272, 1026-1029 (1996).</li>
<li>Tsang, S. H., Woodruff, M. L., Jun, L., Mahajan, V., Yamashita, C. K., Pedersen, R., Lin, C. S., Goff, S. P., Rosenberg, T., Larsen, M., Farber, D. B., Nusinowitz, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+mice+carrying+the+H258N+mutation+in+the+gene+encoding+the+beta-subunit+of+phosphodiesterase-6+%28PDE6B%29+provide+a+model+for+human+congenital+stationary+night+blindness%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Mutat%22%5BJournal%5D)">Transgenic mice carrying the H258N mutation in the gene encoding the beta-subunit of phosphodiesterase-6 (PDE6B) provide a model for human congenital stationary night blindness.</a> Hum. Mutat. 28, 243-254 (2007).</li>
</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

ほとんどのトランスジェニックマウスは、目を検査しません研究室に存在します。私たちのビデオ技術は目で少し経験を持つ研究室から組織の取り込みを最適化するために、遠隔手術技能移転のためのシンプルな、標準化された方法を示しています。この映像技術は、意味のある比較の表現型および分子生物学的研究を防止する非標準化組織採取と固定方法に起因専門サイトの限られた数の使用であるハイスループット表現型、の主要な落とし穴を克服するのに役立ちます。任意の新しいリモートラボと担当者と一緒に品質管理を確立し、維持するためには、開始時及び定期的に試験期間を通じて、野生型の目を含めることが重要です。また、複数の遺伝子から複数の目はそのようなそれぞれの目に一意の識別番号を割り当てるには、Webベースのシステムのように、転送されたときに追跡システムが重要であることがわかった。より高品質の固定およびその後の組織切片を用いて得られていますが灌流固定した動物は、我々は固定されていない動物から摘出標本はほとんどの形態学的および分子生物学的研究のために十分であることがわかる。また、固定されていない動物から目の買収は、異なるソースからのハイスループット研究で処理するために大幅に容易にな...

<table border="1"><tbody><tr><th>名前</th><th>会社</th><th>カタログ番号</th><th>注釈</th></tr><tr><td>湾曲したドレッシング鉗子</td><td>シュトルツ眼科</td><td> E1408 </td><td></td></tr><tr><td>マハジャンSharptipドレッシング鉗子</td><td>シュトルツ眼科</td><td> E1406（REF SP7-64520） </td><td></td></tr><tr><td>湾曲したウェストコットはさみ</td><td>シュトルツ眼科</td><td> E3321 WH </td><td></td></tr><tr><td> 15°、BDビーバー顕微ブレイド</td><td>ベクトン·ディッキンソン</td><td> 374881 </td><td></td></tr><tr><td> 0.22ファインCastroviejo縫合鉗子</td><td>シュトルツ眼科</td><td> E1805 </td><td></td></tr><tr><td> 0.12コリブリ鉗子</td><td>シュトルツ眼科</td><td> 132分の2 </td><td></td></tr><tr><td> 30ゲージの針</td><td>ベクトン·ディッキンソン</td><td> 305128 </td><td></td></tr><tr><td>バイオハザードメーラー</td><td>フィッシャー</td><td> 03-523-4 </td><td></td></tr><tr><td>パラフィルム</td><td>フィッシャー</td><td> 13-374-10 </td><td></td></tr><tr><td>ガラスシンチレーションバイアル</td><td>ホイートン</td><td> 4500413033 </td><td></td></tr><tr><td> PBS（pH7.4）で</td><td>インビトロジェン</td><td> 70011-044 </td><td></td></tr><tr><td> 16％パラホルムアルデヒド</td><td>電子顕微鏡学</td><td> 15700 </td><td></td></tr><tr><td> 0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液中の2.5％ホルムアルデヒド/ 2.5％グルタルアルデヒド</td><td>電子顕微鏡学</td><td> 15700＆16300 </td><td>実験室で混合</td></tr><tr><td> 50％のグルタルアルデヒド</td><td>電子顕微鏡学</td><td> 16300 </td><td></td></tr><tr><td> 0.25％Formvar </td><td>電子顕微鏡学</td><td> 15810 </td><td></td></tr><tr><td>警官スロットグリッド当たり</td><td>電子顕微鏡学</td><td> M2010-CR </td><td></td></tr><tr><td> 4％四酸化オスミウム</td><td>電子顕微鏡学</td><td> 19140 </td><td></td></tr><tr><td>抗SOD3抗体</td><td>アブカム</td><td> Ab21974 </td><td></td></tr><tr><td>ヤギ抗ウサギのAlexa Fluor 488 </td><td>インビトロジェン</td><td> A11070 </td><td></td></tr><tr><td>スパーの埋め込み樹脂</td><td>電子顕微鏡学</td><td> 14300 </td><td></td></tr></tbody></table>

リモートハイスループット表現型解析のためのマウスの目の摘出

Mouse Eye Enucleation for Remote High-throughput Phenotyping

マウスの眼は人間の眼疾患のトランスレーショナル研究のための重要な遺伝的モデルです。このような黄斑変性、光受容体の変性、白内障、緑内障、網膜芽細胞腫、および糖尿病性網膜症などのヒトでのまばゆいばかりの病気、トランスジェニックマウスで再現されています1月5日ほとんどのトランスジェニックマウスおよびノックアウトマウスは非眼疾患を研究する研究室で生成されましたが、器官系の間の遺伝的保全が同じ遺伝子の多くはまた、眼の発達と疾患における役割を果たしている可能性を示唆している。したがって、これらのマウスは、眼の中に新たな遺伝子型と表現型の相関を発見するための重要なリソースを表します。これらのマウスは世界中に散らばっているので、それは、獲得、維持、効率的で費用対効果の高い方法で表現型、それらをすることは困難である。従って、最も高スループットの眼科表現型画面は生きたマウスで目を調べるために、眼科の専門知識を現場で必要とするいくつかの場所に制限されています6-9は、当研究室が開発した代替アプローチは、トランスジェニックマウスの目の大規模または小規模な調査で使用することができるリモート組織獲得するための方法である。ビデオベースの手術技能移転、組織の固定、出荷のために標準化された手順は、どの研究室では変異動物から全体の目を収集し、分子と形態学的表現型解析のためにそれらを送信することができます。このビデオの記事では、我々は、リモート表現型解析に固定されていないと血流の両方の固定マウスの目を摘出すると、転送する手法を提案する。

解剖手法は、ハイスループットスクリーニングで表現型解析を実行するための組織固定のマウス眼球摘出を示しています。

マウスの眼は、ヒトの眼疾患のトランスレーショナル研究における重要な遺伝学的モデルである。黄斑変性などのヒトにおける失明疾患は……

このビデオでは、マウスの眼球および、眼窩からの眼球の摘出（nucleation）について説明します。眼球は下眼瞼縁によって境界づけられています。こちらが内眼角（鼻側眼角）です。後方は側眼角（外眥）です。上方は上眼瞼縁です。こちらは手術検体です。針先が透明な角膜を指しています。虹彩の向こう側に水晶体がわずかに突き出ているのが見えます。茶色い部分が虹彩であり、水晶体を覆っています。最も重要な外科的指標は、この白い線、すなわち角膜輪線であり、その直後に穿刺創を作成します。眼球の後方は角膜輪線の後ろにあり、ここでは筋肉の付着部を指しています。ここで眼球に接している筋肉と、眼窩を満たし涙腺を含む結合組織を確認できます。最後に、鈍的剥離によって得られた白く長い視神経のストリップです。先端を鋭利に加工した曲がったドレッシング鉗子を用いて、まずまぶたを広げます。これにより、眼球が押し出され、離れた状態になります。ピンセットを慎重に眼窩内に挿入し、眼球の後方に向けます。眼球を圧迫しないように注意しながら後方で緩やかに挟み、前方へ引き出します。このとき、眼球ではなく結合組織を把持できているはずです。眼球を横に回転させると、眼窩組織と共に白い視神経を確認することができます。これは2回目の解剖であり、再度手順を示すためのものです。眼窩隅角から進入し、ピンセットを眼球の背後に押し込み、結合組織を掴んで、眼球自体を圧迫せずに前方へ引き出します。ここでも、白い視神経の長い帯状の部分に結合組織が見て取れます。穿刺創を作るには、筋肉の停止部を持って眼球を固定し、眼球を安定させている位置のすぐ隣にある角膜縁の背後に針を刺入します。これにより、固定液が眼球内に浸透します。眼球を保持している位置から離れた場所を穿刺すると、眼球が非常に不安定になり、眼球を圧迫したり過度な圧力をかけたりすることなく、十分な長さの切開創を作ることが困難になります。また、眼球自体の直後にある結合組織をすべて把持することも可能です。固定液によっては、穿刺創を必要としないものもあります。一般的に、眼球が完全に浸るように、少なくとも 3 cc の固定液を入れた 5 cc のシンチレーションバイアルに眼球を入れます。灌流固定した動物の場合は、鋭利な解剖操作が必要です。湾曲カリブリ鉗子と湾曲ウェスコット剪刀を使用します。カリブリ鉗子で下眼瞼を把持します。眼窩骨に沿って剪刀を挿入し、結合組織の切断を開始します。眼球から離れた曲線を用い、サイズ調整時の干渉を避けます。内眼角から外眼角まで、下眼瞼縁に沿ったどの部位でも使用可能です。ある程度まで結締組織が除去されると、眼球の背後にハサミを滑り込ませて、眼球を引き離すことができます。もう一つの例を示します。眼窩に鋏を挿入しますが、眼球ではなく眼窩骨に沿わせ、結合組織を切り離します。これにより、バスケットの中のバスケットボールのような状態で固定されている眼球が解放され始めます。ピンセットで眼瞼を牽引し、眼球の周囲を短く慎重に切開してください。ここでCollibraを用いて結合組織または筋肉の付着部を把握し、眼球を眼窩結合組織から切り離して取り出します。眼球を適切に固定した後、輸送が必要な場合は、保存瓶の周囲にパラフィルムを巻きます。梱包は、所属大学および政府の規制に従って行う必要があります。通常、液体を吸収させるために綿を入れた容器に封入し、この容器をしっかりと密閉します。その後、この輸送用容器を気泡緩衝材（バブルラップ）の袋に入れます。これを液体輸送用ラボパックに入れ、必要書類と一緒に梱包します。

mouse-eye-enucleation-for-remote-high-throughput-phenotyping

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Medicine

医学

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の活動の定量化シス</em植片エレクトロポレーションによってマウス網膜で>調節エレメント

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げっ歯類の目の微小解剖

網膜は、その層状構造全体で複雑な空間構成を示します。最新の空間トランスクリプトミクスおよびシーケンシング技術では、厚さ20μm&lt;組織切片が必要であり、網膜研究の適用性は限られています。この新鮮凍結凍結切片法は、平面的な空間的関係を維持しながら、マウス網膜の薄い 顔...

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病変マウス網膜におけるミクログリアの動態およびシナプスとの相互作用のライブイメージングおよび特徴付け

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リモートハイスループット表現型解析のためのマウスの目の摘出

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