January 31st, 2012
E12.5マウス胚中脳から器官型スライスを生成する方法が記載されている。器官切片培養は、ドーパミン作動性ニューロンや他の腹側中脳の神経細胞の挙動を観察するために使用することができます。
この手順の全体的な目標は、発達中のドーパミン作動性ニューロンの分析のために、E 12.5ニューロン胚性中脳から器官型スライスを生成することです。これは、最初に胚の脳を解剖することによって達成されます。その後、脳は低融点のエアロに埋め込まれます。
3番目のステップは、バイブレーターを使用して脳スライスを切片化することです。最後のステップは、培養およびタイムラプスイメージングに適した脳スライスを選択することです。最終的には、タイムラプスイメージングと免疫蛍光顕微鏡を使用して、ドーパミン作動性ニューロンの初期段階、移動行動、および分化を示します。
この方法は、ニューロンの追跡や発達腹側脳の移動行動など、神経発達分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。解剖の1日前に、解剖の約2時間前に、添付の原稿に従って1つのX Krebsバッファーと培地を準備します。クレブス緩衝液に100ミリリットルの4%低融点アロスを調製し、アロスが完全に溶解するまで溶液を電子レンジで加熱します。
次に、arosを摂氏45度の水浴に入れます。次に、Vibramバッファートレイに氷のように冷たいクレブスバッファーを入れます。冷却エレメントをオンにし、摂氏4度に保ちます。
その後、カミソリの刃をブレードキャリアに固定します。メス、細い絵筆、バイブレーターエリアのスライスを拾って後で切片化するためのミニ穴あきスプーンを準備します。次に、滅菌したペトリ皿にクレブスバッファーを加え、氷の上に保ちます。
解剖エリアでは、解剖用の大きな滅菌ペトリ皿3枚と、小さなハサミ、細い鉗子2組、ミニ穴あきスプーン、丸い閉じた先端で磨かれたガラス製の牧草地ピペットファイヤー、氷上に1リットルのクレブス緩衝液を埋め込むための小さな滅菌ペトリ皿2枚を用意します。すべての解剖ツールを70%エタノールで拭きます。次に、6ウェルプレートのウェルに培地を加え、摂氏37度で2時間インキュベートします。
次に、無菌条件下で、ペニシリンストレプトマイシンを含む1.5ミリリットルのクレブス緩衝液を、別の6ウェルプレートの各ウェルに加えます。ミリセルメンブレンインサートをウェルに入れます。6ウェルプレートをビブラートの隣に置き、脳のスライスをフィルターメンブレンに移すことができます。
切片化の直後に、ステージE 12.5の胚を持つ妊娠中の雌マウスを犠牲にし、一対の鉗子で子宮を持ち上げて子宮を摘出します。次に、別の鉗子を使用して子宮筋層を引き裂きます。その後、顕微鏡下で子宮を氷冷したクレブス緩衝液に入れます。
一対の細い鉗子を使用して、子宮の筋肉壁、ライカー膜、および内臓の卵黄嚢を胚から分離します。次に、子宮から胚を取り出し、胚を滅菌クレブス緩衝液を含む別のペトリ皿に移します。次に、各胚の頭を切り取ります。
細い鉗子で目の高さで頭を突き刺して固定します。別の鉗子を使用して、皮膚と頭蓋骨を慎重に取り除きます。次に、脳を慎重に持ち上げ、滅菌クレブス緩衝液を入れたペトリ皿に移します。
その後、4%で脳を洗います低融点アロ。一度に2〜3個の脳を4%の新鮮で低融点のarosに埋め込みます。ファイヤーポリッシュされた丸い先端のパスツールピペットを使用。
次に、埋め込み皿をできるだけ氷の上に置きます。次に、アロスの底が固まるまで脳を持ち上げて、脳が均等に落ち着き、アロスブロックの底と平行になるようにします。アロが完全に固まったら、脳を囲むアロをトリミングします。
その接着剤の後、アロスはバイブレーターの試料ステージにブロックします。ブロックを接着するときは、脳の腹側がプラットフォームと平行であることを確認してください。セクション300ミクロンの厚さの水平スライス、50ヘルツのブレード振幅1.1ミリメートル、毎秒25ミリメートルの速度。
細い絵筆を使用してスライスを小さな穴あきスプーンに押し込み、脳のスライスを収集します。次に、顕微鏡下で滅菌した氷冷クレブスバッファーを入れた皿に移します。腹側中脳組織を含むスライスを選択します。
このステップでは、ミニ穴あきスプーンと細い絵筆を使用して、脳スライスを、以前に調製したクレブスバッファーを含む6ウェルプレートのミリ細胞膜インサートに移します。次に、スライスを含むメンブレンを別の6つに移します。培養液をウェルプレートに盛り付け、メンブレンの上部を乾燥させ、脳スライスが下から培地を受け取り、上から空気を受け取るようにします。
スライスを5%の二酸化炭素で摂氏37度のインキュベーターに入れます。解剖の最初のステップから2時間以内にスライスをインキュベーターに入れることが非常に重要です。これらのスライスは、in vitroで3〜4日間維持できます。
回復から4〜5時間後。スライスは、イメージングの直前にタイムラプスイメージングに使用できます。1.5マイクロリットル、200ミリモルのアスコルビン酸を皿に追加して、スライスを光毒性から保護します。
タイムラプスイメージング中に、スライスを摂氏37度の環境チャンバーで5%の二酸化炭素とインキュベートします。これは、前脳への投射がまだ発達していない腹側中脳のドーパミン作動性ニューロンの正常な位置を示す鋭いスライスです。培養で1日後、黄色の矢印で示されているように、前脳への突起が形成され始めます。
白い矢印は、インセットで高倍率で示されているセル本体の位置を示しています。これがYFP標識ニューロンの移動根です。鋭角水平スライスでは、セルの初期位置は赤い矢印でマークされています。
このビデオを見た後、E 12.5海洋胚中脳から遺伝子型スライスを調製して、生存可能で無傷のスライスを得る方法についてよく理解できるはずです。胚脳の解剖を慎重に行い、ビブラート切片後に培養とTimeLapseイメージングに適した脳スライスを選択することが重要です。
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この記事では、E12.5マウス胚の中脳からオルガノタイプスライスを生成する方法について説明しています。これらの培養は、ドーパミン作動性ニューロンやその他の腹側中脳ニューロンの挙動を観察するのに役立ちます。
Organotypic slice cultures of embryonic ventral midbrain enable direct observation of dopaminergic neuronal development, supporting mechanistic de-risking and target validation in neurodevelopmental research. This system provides predictive confidence for early-stage discovery by allowing manipulation and real-time imaging of neuronal subpopulations relevant to disease. The approach bridges a critical gap between genetic models and functional phenotyping, informing portfolio decisions in CNS drug discovery.
This organotypic slice culture method integrates into the discovery continuum from early target validation through preclinical phenotyping, particularly for CNS and neurodevelopmental programs.