Name: ニューロンの光刺激のために手ごろな価格のLEDアレイを使用する (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 40 s
Description: 学ぶLEDアレイを用いた光遺伝学的ニューロン制御法。脳スライスにおける成人新生ニューロンの活動を精密に操作し、神経回路への統合メカニズムを解明する低コスト手法を習得できます。

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この作品は、生命保険会社&quot;AG2Rラ-モンディアル&quot;、エコールデ神経科学パリ（ENP）、&quot;ERA - NET NEURONのフレームでアジャンス国立デラルシェルシュ&quot;ANR - 09 - neuro -の異形004&quot;によってサポートされていました&quot;欧州委員会、およびパスツール財団によるFP7のプログラムの。セバスチャンワグナーはLetten財団によってサポートされていました。

1。光学的キャリブレーション：測定LEDパワー<ol><li>積極的にファンや接辞によってコリメートレンズにこのLED /ヒートシンクのaparatusを冷却するヒートシンクにLEDアレイを取り付けます。 </li><li> LED /ヒートシンク/ファン/レンズ装置で明視野照明で使用されているランプを交換してください。この装置は慎重にコリメートLEDビームが集光レンズに向かってまっすぐな光路に沿って移動するように配置する必要があります。ヒートシンク/ファンが適切にシステムの共通のグランドに接地されていることを確認します。 </li><li>現在の高速かつ矩形パルスを与えることができる電源とLEDアレイを駆動する。この電源は、パルス発生器から発信された5VのTTLパルスによって制御されることがあります。 </li><li>中心視野絞りとコンデンサーレンズの間に定義された光路に沿って平行ビーム。理想的には、LEDの光がわずかに完全に開かれた視野絞りを入れすぎないでしょう。一般的に、より緊密にコリメートLEDビームが少ないこの口径を記入し、MORが生成されます均一性を犠牲にして、電子パワー。我々のセットアップでは、consenserのダイヤフラムで、その共役面にLEDアレイの若干拡大画像を投影コリメートレンズを選択することで、光の均一性を増加した。 </li><li>視野絞り（光源に最も近い絞り）の画像をスライスチャンバー（ 図1）に焦点を当てているようにコンデンサーを集中しケーラー照明を実現。レンズの紙の薄い組織は、他の深さで視野絞りの焦点像を可視化するために、投影するスクリーンとして機能することができます。 </li><li>不透明な材料で知られている直径のピンホールの一連のドリル。光パワーメータのセンサー上でこれらの小さなピンホールは1を置きます。それが最大の読みを与えるまで、単純にパワーメータを移動することにより、視野絞りの焦点画像の上に試料ステージと中央電力計の電力計を置きます。この位置に貼ってパワーメータ。 </li><li>完全にすべての開口部（アパーチャ絞りを開いて、視野絞り）。体系的に光学的光パスに接続されたスライスチャンバー/パワーメータの相対的に移動し、照射領域内の光パワーの均一性を計算する。お使いのシステムのための均一性のプロットを構築する。顕微鏡を正しく客観的の焦点を中心とするケーラー照明と設定されている場合、最大電力は、直接目的の下でなければ、そしてこの焦点の外側の領域は、現在、均一性のプロットに基づいて電力の既知量を受信する必要があります。 </li><li>ピンホールの各サイズについては、光パワー対ピンホールの表面積の標準曲線を構築する。 LEDアレイへの入力電流を調整することによって、複数のパワーレベルでこの曲線を生成し、それぞれの曲線からmm2当たりの電力を計算する。 LEDアレイは、パッチの光学系に使用する場合、パッチを適用する照明の下で送信されるどのくらいの光を知るためにパッチを適用するために必要な光学素子を（コンデンサ、ピンホールおよびフィルタ）を導入することを確認してください。 </li><li>パワーメータを反転水銀ランプがオンになっているときに客観的に直面し、470nmでの照度を計算する。 </li><li>チャンバーにライブスライスを追加し、散乱の脳組織を透過した光パワーを決定するための標準曲線を再構築する。 </li></ol> 2。スライシング手続きと電気生理学パート：スライス標本<ol><li>麻酔（60 mg / kgのケタミンとキシラジン2mg/kg）とマウスを刎ねる。の混合物でバブリング時〜310mOsm、pH7.4の、124のNaCl、3のKCl、1.3 MgSO 4を用い 、26のNaHCO 3、1.25 NaHPO 4、20グルコース、2のCaCl 2：MMの人工脳脊髄液（ACSF、に脳を解剖する嗅球を損傷しないように注意しながら95％O2、5％CO 2 5,1）、。一方のエッジ（水平方向のセクションの）でさえ腹側表面に寒天上の2つの半球と場所を区切ります。 </li><li>接着剤vibrに寒天と各半球皮質の背側表面atomeチャック、そしてゆっくりと氷冷ACSFでお風呂を埋める。 300μm以下のセクションでは腹側表面からスライス、彼らが30〜45分で回復できるように、温めておいた（34-36 ° C）と酸素ACSFに各セクションを転送する。 </li></ol>パートB：スパイクのしきい値のルースパッチの測定<ol start="3"><li> 30分間室温にスライスをもたらすの後、静かに酸素ACSFの一定灌流下で顕微鏡のチャンバーの記録室内のスライスを配置します。 過度にChR2感染した神経細胞を刺激するの危険にさらされ、EYFP - ChR2の存在は、落射蛍光（図2A）で確認することができます</li><li>ピペットプラー（サッターP - 97）上にガラス電極を引き抜きます。 ACSFでこの電極を埋める。 ACSF槽内に配置するときにチップ抵抗は7-10 Mohmを間でなければなりません。 </li><li>蛍光灯照明下では、スライスで成熟した形態を持つ健康なChR2 - EYFPニューロンを探します。また、パッチの光学系では、このニューロンの細胞体を探します。 </li><li>電極の先端を通過した光の正圧と、特定された蛍​​光ニューロンに向かってパッチ電極を下げる。膜の接触が行われると、すぐに正圧を解放し、チップを通して吸引の小さいと簡単に金額を適用します。ギガオームシールは、原形質膜とパッチ電極の壁の間になされるべきである。 </li><li>場合であっても電極が活動をスパイク蛍光ニューロンに十分に近い場合ギガシールは、測定可能な局所電場電位を生成するか、形成されていません。光の異なる投与量を点滅させることで、このニューロンのChR2をアクティブにします。光用量は、電源LEDと持続時間の両方の関数であるため、多くの光が複数の力と持続時間（図2B）で活動電位を喚起する必要があるか計算する。スパイクは、水銀灯の照明下で発生したどの程度も観察。 </li></ol> 3。代表的な結果： 私たちの顕微鏡（オリンパスBX51WI）で、私たちのLEDは私です2開口と集光レンズとn個のライン、このように工場出荷時にインストールアークランプのオリジナルの光パスを維持する。視野絞りとアパーチャ横隔膜の両方を閉じることで、我々は、パッチクランプ記録（ 図1B）のための十分な明コントラストを実現することができます。すべてのダイヤフラムで完全に我々はchannelrhodopsin活性化（ 図1A）の最大光パワーにスライスを公開開きます。私たちの顕微鏡では、このパッチの設定は（4.1μW/ mm 2の対6.88 MW / mm 2）の最大のフルフィールドの密度より大きさの約3桁小さい光密度を生成します。 独身の成人生まれChR2 - EYFPは顆粒細胞を表現することを示して私たちは、吻側渡り鳥ストリーム（ 図2A）から疎パッチ録音で神経芽細胞の移行のレンチウイルス感染後の成人生まれの嗅球の顆粒と糸球体ニューロンの数週間の堅牢な標識を参照してください。格言で5ミリ秒の刺激UM電力（6.88 mWの/ MM 2）スパイク（ 図2B）を呼び起こすのに十分です。発現レベルが細胞の間で変化するので、スパイクにしきい値を通過する光の量は変わるし、関心の各セルのタイプのために統計的に記述する必要があります。 <img src="/files/ftp_upload/3379/3379fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="図1"> フルフィールド光刺激とパッチクランプ法スライスの電気生理学1。LEDアレイのセットアップ図 。 channelrhodopsinを有効にするには（ChR2）我々は、オープンバックの開口部とコンデンサー光学系（）を介して平行ビームを投影する。この設定は、完全に視野絞りと視野絞りの変調幅（b）を閉じることにより、高コントラストのパッチの光学系に変更することができます。略語：A.ファン、B.ヒートシンク、C. LEDの配列、D.コリメータレンズ、E.ミラー、F.の視野絞り、G.開口絞り、H.コンデンサーレンズ、I. SAmpleステージ、J.目標。 <img src="/files/ftp_upload/3379/3379fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="図2"> 図2パッチクランプと全体のフィールド光刺激のための嗅球の300μmの水平スライス（）のイメージ。 ChR2 - EYFPの発現Lentivirally感染した成人生まれの顆粒細胞は、嗅球の中心から放射状に見ることができます。スパイクを呼び起こすために必要な光用量は、LEDフラッシュ（B）の持続時間を増加させることによって見つけることができます。この顆粒細胞のしきい値は、完全なLEDの輝度（2.43mW/mm 2）で5msのだ。 （B）= 50msので=500μm、スケール（）でスケール。

<ol><li>Nissant, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+neurogenesis+promotes+synaptic+plasticity+in+the+olfactory+bulb%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Adult neurogenesis promotes synaptic plasticity in the olfactory bulb.</a> Nature Neuroscience. 12, 728-730 (2009).</li>
<li>Apicella, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pyramidal+Cells+in+Piriform+Cortex+Receive+Convergent+Input+from+Distinct+Olfactory+Bulb+Glomeruli%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Pyramidal Cells in Piriform Cortex Receive Convergent Input from Distinct Olfactory Bulb Glomeruli.</a> Journal of Neuroscience. 30, 14255-14260 (2010).</li>
<li>Boyden, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((genetically+targeted+optical+control+of+neural+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">genetically targeted optical control of neural activity.</a> Nature. 8, 1263-1263 (2005).</li>
<li>Bardy, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((where+new+inhibitory+neurons+release+neurotransmitters+in+the+adult+olfactory+bulb%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">where new inhibitory neurons release neurotransmitters in the adult olfactory bulb.</a> The Journal of Neuroscience. 30, 17023-17034 (2010).</li>
<li>Grubb, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+maturation+of+the+first+synapse+in+olfaction%3A+development+and+adult+neurogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience%22%5BJournal%5D)">Functional maturation of the first synapse in olfaction: development and adult neurogenesis.</a> The Journal of neuroscience. 28, 2919-2932 (2008).</li>
<li>Zhang, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circuit-breakers%3A+optical+technologies+for+probing+neural+signals+and+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Circuit-breakers: optical technologies for probing neural signals and systems.</a> Nature reviews. Neuroscience. 8, 577-581 (2007).</li>
<li>Grossman, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multi-site+optical+excitation+using+ChR2+and+micro-LED+array%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+neural+engineering%22%5BJournal%5D)">Multi-site optical excitation using ChR2 and micro-LED array.</a> Journal of neural engineering. 7, 16004-16004 (2010).</li>
<li>Dhawale, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-redundant+odor+coding+by+sister+mitral+cells+revealed+by+light+addressable+glomeruli+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+neuroscience%22%5BJournal%5D)">Non-redundant odor coding by sister mitral cells revealed by light addressable glomeruli in the mouse.</a> Nature neuroscience. 13, 1404-1412 (2010).</li>
<li>Weick, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+control+of+transplantable+human+ESC-derived+neurons+via+optogenetic+targeting%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cells%22%5BJournal%5D)">Functional control of transplantable human ESC-derived neurons via optogenetic targeting.</a> Stem cells. 28, 2008-2016 (2010).</li>
<li>Toni, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurons+born+in+the+adult+dentate+gyrus+form+functional+synapses+with+target+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Neurons born in the adult dentate gyrus form functional synapses with target cells.</a> Nature Neuroscience. 11, 901-907 (2008).</li>
<li>Grubb, M. S., Burrone, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Channelrhodopsin-2+Localised+to+the+Axon+Initial+Segment%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Channelrhodopsin-2 Localised to the Axon Initial Segment.</a> PLoS ONE. 5, e13761-e13761 Forthcoming.</li>
<li>Tye, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amygdala+circuitry+mediating+reversible+and+bidirectional+control+of+anxiety%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Amygdala circuitry mediating reversible and bidirectional control of anxiety.</a> Nature. 471, 358-362 (2011).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

近年は神経科学研究6 optogeneticツールの人気が爆発的に見てきました。その結果、これらの新しいツールを使用し始めることを希望するラボのエントリの障壁を低くすることがますます重要です。ここではそれがchannelrhodopsin発現ニューロンのフルフィールド光刺激を行うことができるように、従来のパッチクランプリグのシンプルで低コストの改修とキャリブレーションを実施する方法について説明します。特に、我々は特に光と新たに生まれた神経細胞を制御するために、嗅球の成体の神経新生の研究にこの手法を適用する。 我々は、LED光源は、ChR2活性化のための十分な電力を生成するかどうかを判断する方法を示しています、そしてLEDの速度のオン/オフ本質的に急速に容易に神経細胞に与えられる光の量を調節することができる方法を示しています。私たちの研究室では正常にこのテクニックを使用している一方で、光の各wの制御された投与量にニューロンを公開するための代替方法があります。i番目の独自の利点と欠点。 より多くの光パワーが必...

<table><tbody><tr><td>ケタミン</td><td>Imalg&amp;#232;ne 1000</td><td></td><td>100 mg/ml</td></tr><tr><td>キシラジン</td><td>Rompun</td><td></td><td>2%</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5886</td><td>&amp;amp;nbps;</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5405</td><td></td></tr><tr><td>MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M1880</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>NaHPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5011</td><td></td></tr><tr><td>グルコース</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7021</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C7902</td><td></td></tr><tr><td>アガロース</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9539</td><td></td></tr><tr><td>ピペットプラー</td><td>Sutter Instrument Co.</td><td></td><td>P-97</td></tr><tr><td>ガラスキャピラリー</td><td>Harvard Apparatus</td><td>GC150T-10</td><td>外径 1.5 mm / 内径 1.17 mm</td></tr><tr><td>LEDアレイ</td><td>Bridgelux</td><td>BXRA-C2000</td><td></td></tr><tr><td>コリメートレンズ</td><td>Thorlabs Inc.</td><td>LEDC1</td><td>ビーム径 40 mm</td></tr><tr><td>電源装置</td><td>A1W Electronik</td><td>HKO2800</td><td>2.8 amp</td></tr><tr><td>光学パワーメーター</td><td>Thorlabs Inc.</td><td>PM 100</td><td></td></tr><tr><td>ヒートシンク</td><td>Thermaltake</td><td>A1838</td><td>Silent Boost K8</td></tr><tr><td>ファン</td><td>Thermaltake</td><td>A1838</td><td>Silent Boost K8</td></tr><tr><td>ビブラトーム</td><td>Leica Microsystems</td><td>VT1200S</td><td></td></tr></tbody></table>

ニューロンの光刺激のために手ごろな価格のledアレイを使用する

Using Affordable LED Arrays for Photo-Stimulation of Neurons

標準スライスの電気生理学は、研究者は電気的または薬理学的操作の1,2に対応して単一細胞の電気的応答を記録することによって、神経回路の個々のコンポーネントをプローブすることができました。光学的に遺伝的に標的ニ​​ューロンを（optogenetics）を制御する方法の発明で、研究者は今、標準のスライス標本におけるニューロンの特定のグループを制御するための前例のないレベルを持っている。特に、感光channelrhodopsin - 2（ChR2）研究者が光3,4でニューロンを活性化することができます。標準スライスの電気生理学とChR2のLEDベースの光刺激を慎重にキャリブレーションを組み合わせることで、我々はより詳細で嗅球、嗅覚系の最初の中心的なリレーの成人生まれの介在の役割を調べることができます。成人生まれのニューロンで特異的にChR2 - YFPのウイルスの式を使用して、我々は選択的に古いの環境では若い成人生まれのニューロンを制御することができますD成熟ニューロン。私たちの光制御が簡単で安価なLEDシステムを使用して、そして我々は、このシステムは、光が単一のニューロンのスパイク活動を喚起するために必要とされるどの程度理解するためにキャリブレーションする方法を示しています。したがって、青色光の短い点滅は、リモートChR2形質導入新生児の細胞の発火パターンを制御することができます。

ChR2を表現成人生まれのニューロンは嗅覚神経回路の機能に向けての貢献を検討するために、スライスの電気生理学的な準備に操作することができます。

ニューロンの光刺激のために手ごろな価格のLEDアレイを使用する

標準的なスライス電生理学により、単一の……の電気的応答を記録することで、神経回路の個々の構成要素を探索することが可能になりました。

この手順の目的は、脳切片における神経活動を制御するために、LEDアレイを準備し遠隔操作することです。これは、channel REDSIN twoを発現するニューロンを持つ動物から得られたin vitro切片を用い、顕微鏡とLEDアレイを併用してそれらのニューロンを活性化させることで達成されます。このビデオでは、切片チャンバーに既知強度の光を照射するために、LEDと顕微鏡を校正する方法について解説します。このセットアップを用いることで、チャンネル2発現ニューロンの広視野刺激による光刺激に対する活性化閾値を正確に測定できます。この手法により、大規模なニューロン集団を時間的に精密に光制御することが可能です。レーザーやシャッターを用いた既存の光遺伝学的手法と比較した本手法の主な利点は、非常に安価であり、既存のパッチクランプ顕微鏡に容易に組み込めることです。この手法は、活動がどのようにして新生ニューロンの成体脳への統合を形作るかなど、成体神経発生の分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。この技術の意義は、既存の神経回路に統合される成体新生ニューロンの活動を正確に時間制御できるため、成体神経幹細胞に基づく治療法や診断法へと広がります。この手法は成体神経発生の機能的な結果に関する知見を提供できるだけでなく、あらゆるin vitro調製物に対しても適用可能です。チャネル導入発現ニューロンを含む。まず、目的の波長でピークパワーを発生させるLEDアレイを選択する。加えて、最大定格電流を持つアレイを選択する。LEDアレイを顕微鏡に組み込む。まず、ヒートシンクと呼ばれるファンに、サーマルペーストを用いてLEDアレイを取り付け、ヒートシンクの効率を高めます。次に、レンズアセンブリから低電力の標準LEDを取り外し、高出力LEDをレンズに固定します。ここで、明視野照明ランプを組み立てたLED装置に交換し、ファンがシステムの共通接地に確実に接地されていることを確認してください。LEDアレイを慎重に配置し、光源が対物レンズの光路と一致していることを確認する必要があります。目的は、コンデンサーを調整してフィールドダイアフラムの像をスライスチャンバー上に結像させ、対物レンズの光路の中心に配置することで、ケーラー照明を実現することです。他の深さでバックアパーチャの像をフォーカスさせる際は、薄いレンズペーパーを用いると有効です。次に、パワーメーターのアパーチャとして機能する不透明な材料に、既知の直径のピンホールを開けます。これらの小さなピンホールの1つを光学パワーメーターのセンサーの上に配置します。その後、パワーメーターを顕微鏡に固定し、コンデンサーをピンホールに焦点合わせします。最大値を示すまで、パワーメーターを手動で移動させます。その位置でパワーメーターを固定してください。パワーメーターの最大値がスライスの平面より上にある場合は、その平面でコーラー照明を再設定してください。次に、すべての開口部を完全に開きます。ステージマニピュレーターを使用して、光学光路に対してパワーメーターを系統的に移動させます。完了後、最大パワーが得られる領域（対物レンズの焦点下に位置するはずです）の周囲でグリッド状に系統的にパワー測定を行い、照射領域内の光学パワーの均一性を測定します。冷却照明が対物レンズの焦点に中心を持って適切にセットアップされていれば、アレイの最大パワーはこの焦点に位置することになります。焦点外の領域は、均一性プロットに従って既知の量のパワーを受けることになります。次に、各サイズのピンホールの最大電力を測定します。各ピンホールの作成に使用したドリルビットの直径に基づき、ピンホールの面積の関数として光電力をプロットしてください。ドリルで開けたピンホールは完全ではないため、これらの値を平均化することで、光電力密度の良好な推定値が得られます。LEDアレイは光学系のパッチ処理に使用されます。パワープロットおよび均一性プロットを作成する際は、パッチクランプに必要なすべての光学素事を考慮してください。例えば、多くの顕微鏡には、均一性を高めるためにパワーを犠牲にして使用できる、反転可能なディフューザースクリーンが備わっています。標準的な方法で脳組織切片を調製し、切片を温めたA CSF中で30分から45分間回復させている間に、パッチピペットを作成してください。組織の回復後、酸素飽和A CSFを定常的に灌流しながら、切片を顕微鏡の記録チャンバーに静かに配置します。エピ蛍光照明下で、2つのチャネルにEYFPチャネルredsinが存在することを確認します。切片内から、成熟した形態を持つ健全なチャネル2 EYFPニューロンを探します。次に、パッチクランプ用光学顕微鏡下でこのニューロンの細胞体（soma）を特定し、細胞膜とパッチ電極の壁との間にギガオームシールを形成します。電極がスパイクを発生させるニューロンに十分に接近していれば、ギガオームシールがなくても、自発的活動によって測定可能な局所場電位（LFP）が生じるはずです。ここで、異なる光量を照射して、このニューロン内のチャネル作動性タンパク質2（channel adopts two）を活性化させます。光量はLEDの出力と照射時間の両方の関数であるため、複数の出力と照射時間において活動電位を誘発するために必要な光量を算出してください。Olympus BX 51 wi顕微鏡に、2つの絞りとコンデンサーレンズに直列に配置したLEDを構成しました。視野絞りと開口絞りの両方を閉じることで、パッチクランプ記録に十分な明視野コントラストを得ました。点線の円で示された対物レンズの視野周辺領域において、LED光強度の均一性プロットを作成しました。すべての絞りを全開にし、チャネルの活性化のためにスライサーを最大光強度にさらしました。この構成では、パッチクランプの可視化に使用した構成よりも3桁強力な光が得られます。吻側移動流の移動中ニューロブラストにレンチウイルスを感染させてから4週間後、成体で新生した嗅球の顆粒細胞および糸球体周囲ニューロンに広範なラベル化が観察されました。EYFPを発現する単一のBorn channel Adoptin顆粒細胞からのルーズパッチ記録により、このニューロンにおいては、最大出力での5 millisecondの刺激でスパイクを誘発するのに十分であることが示されました。習得すれば、この手法は午後の短い時間で実施可能です。この手順の後には、機器および設定に時間の経過に伴うドリフトが生じていないか常に監視することが重要です。こうした光遺伝学的手法の開発以来、神経科学分野の研究者は、線虫、ショウジョウバエ、マウス、さらには霊長類などの多くのモデル生物において、シナプス伝達と統合を探索する道が開かれました。

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嗅球のアダルト生まれのニューロンはoptogenetically...

慢性のためのアダルト生まれの嗅覚ニューロンの選択的なウイルス形質導入 in vivoで Optogenetic刺激

このビデオは、マウスの急性扁桃体脳スライスを使用して、内側前頭前皮質(mPFC)と扁桃体ニューロンとの間のシナプス接続を解析する手順を示しています。これらのマウスのmPFCニューロンは、蛍光タンパク質に融合したチャネルロドプシンを発現します。チャネルロドプシンは、光の活性化により、mPFCニューロンにおけるイオン流入と活動電位の生成を促進します。その結果、mPFCニューロンは、シナプス後扁桃体ニューロンに結合する神経伝達物質を放出し、シナプス後電流をトリガーして、mPFCと扁桃体の接続性を視覚化するために記録されます。...

扁桃体脳スライスにおけるニューロン経路の可視化とマッピング

遺伝学と光学系を組み合わせた神経科学のツールの最近の開発は、空間的および時間解像度の前例のないレベルの神経回路の活動を制御することができ、「光遺伝学」と呼ばれる。ここでは、前頭前皮質及びsubicular錐体ニューロンの遺伝的に定義されたサブセットのoptogenetic操作で、生体内の記録に統合するためのプロトコルを提供する。...

個々の錐体細胞のハイフィデリティOptogenetic制御法<em&gt;インビボ</em

ここでは、麻酔をかけたマウス皮質の特定された抑制性介在ニューロンから安定した、十分に分離された単一ユニットの記録を得るための私たちの戦略について説明します。ChR2を発現するニューロンは、青色光に対する応答によって識別されます。この方法は、標準的な細胞外記録装置を使用し、カルシウムイメージングや視覚ガイドによるパッチ適用に代わる安価な方法として機能します。...

へのガイドインビボシングル単位記録

人工多能性幹細胞(iPSC)に由来するニューロン、初代皮質ニューロン、およびアストロサイトからなる共培養システムを生成するためのプロトコルが説明されています。この共培養システムにより、新しいiPS細胞由来ニューロンとチャネルロドプシン-2を発現する既存の皮質ニューロンとの間のシナプス接触および回路の形成を検出することができます。...

共培養系における神経結合の形成を評価するための光遺伝学的アプローチ

有機半導体ポリマーの使用に基づく、可視光によるin-vitro細胞培養の電気的活動の刺激方法が説明されています。...

生細胞共役ポリマーにより電気的活動の光制御

ここでは、光反応性の非天然アミノ酸を遺伝子的にコード化することにより、短い光パルスでニューロンタンパク質を選択的に活性化する手順を、培養中または生体内でニューロンで発現するニューロンに提示します。...

ニューロンに遺伝的にコードされた非天然アミノ酸を用いた神経タンパク質の光制御

心臓では、分子事象は器官の電気的および収縮機能を調整します。ここで紹介する地元の視野蛍光顕微鏡技術のセットは、無傷の心の中の細胞の変数の記録を可能にします。心機能を定義するメカニズムを識別することは心が病的な状況下でどのように機能するかを理解する上で重要です。...

ローカルフィールド蛍光顕微鏡：無傷の心の中に携帯電話の信号のイメージング

このプロトコルは、PhyBおよびPIF3を使用して赤色および遠赤色光で遺伝子発現を制御するための光遺伝学的実験を実行する方法について説明しています。コンピュータで遺伝子発現やその他の光遺伝学の制御を可能にするシンプルで柔軟な照明システムを構築するためのステップバイステップの説明が含まれています。...

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ここでは、光伝達用光ファイバと神経記録用電極アレイを用いたオプトロードシステムの製造方法について紹介する。チャネルロドプシン-2を発現するトランスジェニックマウスを用いた インビボ 実験は、同時光遺伝学的刺激および電気生理学的記録のためのシステムの実現可能性を示す。...

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