Name: 臍帯血から細胞傷害性Tリンパ球の拡大をそのターゲットサイトメガロウイルス、エプスタイン - バーウイルス、およびアデノウイルス (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 18 s
Description: 学ぶ臍帯血由来細胞傷害性Tリンパ球のGMP準拠製造法。サイトメガロウイルス、エプスタイン・バーウイルス、アデノウイルスに対する抗原特異的CTLを生成し、免疫療法への応用可能性を示す。

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この作品は、ダン·L·ダンカン共同研究助成金（CMBとEJS）、国立心肺血液研究所（US4HL081007）、白血病とリンパ腫協会臨床研究奨学生賞（CMB）、および国立癌研究所によってサポートされていました（RO1 CA06150816; EJS）。

1。単核細胞分離（0日目） <ol><li>臍帯血ユニットの20％分の出口ポートにメスルアーアダプタのスパイクを挿入し、シリンジを接続して、血液を除去する。 50 mLの遠心分離管中で温めたRPMI 20mLに解凍した血液を転送します。 RPMI 5mLで臍帯血袋を洗浄し、同じ遠心チューブに移す。 </li><li> 400 x gで10分間細胞を遠心分離します。上清を吸引します。 </li><li>暖かいRPMI 20mlに細胞を再懸濁する。 50 mLの遠心分離管でLymphoprep 15mLの上に層細胞。 40分@ 400×gで遠心分離します。 </li><li>単核細胞を含むインターフェイスを収穫し、RPMI 20mlに洗う。 10分@ 450×gで遠心します。 </li><li>上清を吸引し、RPMI 20mlに洗う。 5分@ 400×gでのための細胞とスピンを数える。 </li><li> Cellgenix直流メディア（無血清）/ mlの5×10 6個の単核細胞上清に再懸濁した細胞を吸引します。 EBV-LCLの世代のために1 mLを削除し、15 mLのCEに入れチューブをntrifuge。 </li></ol> 2。樹状細胞の生成（day0から） <ol><li> 6ウェルプレートにウェルあたり細胞（DCメディアの/ mLを5×10 6個の細胞に既にある）のプレートを2mL。 1-2時間インキュベーター内にしておきます。 </li><li> 1-2時間後、PBSで3〜4回洗浄することにより、非接着細胞を洗い流してください。非接着細胞と凍結を収集します。を2mL /ウェルの1000 U / mlのIL-4のと800 U / mLのGM-CSFを含む直流メディアを追加します。 </li><li> DCの開始後3〜4日、1000U/mL IL-4および800 U / mLのGM-CSFの最終濃度を含有する培地を100μL/ウェルを添加することにより、IL-4およびGM-CSFを補給してください。 </li><li>日5-6、収穫ホールピペットでよくを削ってDC上。 5分@ 400×gでの大きな細胞や遠心分離機を数える。 2×10 6細胞/ DCのメディアのmLの吸引メディアを再懸濁し、DC。 24ウェルプレートの0.5mL /ウェルを追加します。 </li><li> 10感染単位のMOIで細胞あたりでAd5f35pp65ベクトルを使用してDCを伝達する。 vectoを追加24ウェルプレートの各ウェルにR。 1.5時間細胞をインキュベートします。 1.5時間後、含むDCメディアの1.5mL /ウェルを追加します：1000 U / mlのIL-4、800 U / mLのGM-CSFを、10 ng / mLで、TNF-α、1μg/ mLのPGE-1、100 ng / mLのIL-6、および10 ng / mlのIL-1β。これらのサイトカインは、樹状細胞を成熟させる。 </li></ol> 3。 EBV-LCLの生成（day0から） <ol><li> 5×10 6個の単核細胞の入ったチューブを遠心します。濃縮されたEBV B95.8清との完全培地1.8 mLの培地（RPMI +10％FBS + 2mM L-グルタミン）を含有するシクロスポリン（1μg/ ml）を200μLを加える。 </li><li> 96ウェルプレートと5のウェルに200μLの10ウェルに細胞のアリコートを100μL添加します。完全培地+細胞の唯一の100μLを含むウェルにシクロスポリンの100μLを加える。滅菌水で残りのウェルを埋める。 </li><li> LCL毎週を養うために、約2週間後、24ウェルプレートに96ウェルプレートから展開します。もう一週間後に、T25フラスコに乗り換え、後に週に転送でT75フラスコ。この段階では、それはあなたがLCLのアリコートを凍結することをお勧めします。それは一般的にLCLの十分な数を生成するために1ヶ月位かかります。 </li></ol> 4。 CTLを開始 - 7日DCの開始後<ol><li> 30 Gyで収穫DCおよび照射。 4×、カウントを洗ってください。ヒト血清を含むT細胞培地に再懸濁し、DC（45％RPMI、45％のCLICK、10％ヒト血清、2mM L-グルタミン）@ 1×10 5個のDC / mLであった。 </li><li>ステップ2.2から非接着細胞を解凍します。細胞を洗浄し、カウント。ヒト血清を含むT細胞培地で2×10 6個の非接着細胞/ mLで再懸濁する。 10 ng / mLのIL-7およびIL-12、および5 ng / mLのIL-15を追加します。 24ウェルプレートのウェルあたりの細胞の1 mLを加える。ウェルあたりのDCの1 mLを加える。滅菌水で24ウェルプレートの空のウェルを埋める。 </li><li> 7日T細胞開始後、飼料および/またはヒト血清を含むT細胞培地で細胞を分割します。 </li><li> LCLは準備が整うまで、9から12日T細胞開始後、T細胞を凍結します。 </li><li> OLCLが拡大し、T75フラスコに継代されるNCE、5分@ 400×gで遠心分離することにより、LCLを伝達する。 MOIのセル当たり100感染単位ので細胞ペレットにベクトルを追加します。 1.5時間インキュベートします。 1.5時間後、5×10 5 LCL / mLの完全培地で再懸濁し、24ウェルプレートにウェル当たり2 mLを加え12 </li><li> 2日後、40 GyでLCLおよび照射を収穫。 4×、カウントを洗ってください。 2.5×10 5細胞/ mLでヒト血清を含むT細胞の培地中でLCLを再懸濁します。 LCLの1 mL当たり24ウェルプレートを追加します。また、Grex40培養装置だけでなく、5 ng / mLのIL-15から5×10 6 LCLを追加します13 </li><li> T細胞を収穫します。 @ 400×gで5分間遠心し、上清を吸引し、1×10 6のT細胞/ mLのヒト血清を含むT細胞培地に再懸濁します。 5 ng / mLのIL-15を追加し、24ウェルプレートに既に登録されているLCLに1ml /ウェルのT細胞（1×10 6 T細胞の合計）を追加します。 Grex40では、持参最大30 mLにメディアの総容量。 </li><li>細胞がコンフルエントにある場合刺激後3-4日で、その後、（プレートの）1:1それらを分割し、50 U / mLのIL-2を含む新鮮な培地を追加します。コンフルエントにない場合は、単に半培地を吸引し、50 U / mLのIL-2を含む培地と交換してください。 Grex40では、ハーフメディアを吸引し、新鮮な培地と交換し、50 U / mLのIL-2を追加します。 </li><li> 7日目に、ステップ4.6のように繰り返したが、IL-15は、刺激の日にIL-2を使用しない。 </li></ol> 5。代表的な結果 GMP準拠のFDAの承認を受けた製造プロトコルの概略図を図1に描かれている。プロセスは約50日かかります。しかし、臍帯血は、ウイルス経験豊富なT細胞を欠いており、したがって、私たちはプライムナイーブT細胞をex vivoで移動する必要があります。ウイルス特異的T細胞が既存のメモリーT細胞を増殖生成する典型的な方法。そうするために、我々は、IL-12、IL-15、樹状細胞ならびにサイトカインIL-7を使用するウイルスの特異性を発生させるために必要。 3刺激した後、収量は100×6セルの上でなければなりません。十分な細胞が利用できない場合は、CTLの希望数が利用可能になるまで、追加の刺激を行うことができます。これらの細胞の大部分は、CD4 +およびCD8 + T細胞の混合物と、CD3 +である必要があります。 15％未満のNK細胞（CD3-/CD56 +）と1％未満のCD19 + B細胞（ 図2）があるはずです。 拡大CTLは、アデノウイルスから、CMV、ヘキソンとペントンから抗原pp65抗原を認識するだけでなく、EBV-LCLに発現している多数のEBV抗原があります。 ELISPOTアッセイで試験した場合、CTLが分泌しなければなら以上のIFN-？これらの抗原に反応して無関係な抗原（ 図3）より。 CTLはまた、ウイルスペプチドパルス目標などPHA芽を溶解する必要があります。 51 Cr放出アッセイでは、CTLはCMVpp65·パルスおよびアデノウイルス、LCLを溶解させる必要がありますヘキソンおよび/ペントンパルスしたターゲットが、無関係のペプチド（ 図4）をパルスしていないターゲットや。 <img src="/files/ftp_upload/3627/3627fig1.jpg" alt="図1。"/> 図1臍帯血から多ウイルス特異的CTLの生成 。臍帯血からCTL製造の全過程を模式的に示す。最初の臍帯血単核球を分画した臍帯血ユニットの20％画分から分離されています。 LCLの世代のために保存されている5×10 6個の細胞を除いて、全ての細胞は、その後、非接着細胞を回収し、凍結された時点で、1〜2時間、樹状細胞の培地に播種されています。 DCはその後、IL-4およびGM-CSFを含む供給のDCメディアです。培養5日後に、DCが熟成されており、免疫CMV抗原pp65抗原を含むアデノウイルスベクターを用いて形質導入。開始時に、これらのDCは、非付着細胞ならびにサイトカインIL-7、IL-12と結合されおよびIL-15。後続の刺激で、同じアデノウイルスベクターは、抗原提示細胞として使用され、EBV-LCLを形質導入するために使用されます。 IL-15は、その後、第2の刺激とIL-2で使用されています。 <img src="/files/ftp_upload/3627/3627fig2.jpg" alt="図2。"/> 図2に得られたT細胞の表現型 。リンパ球ゲートに含まれる生細胞の割合が示されている。 CTLは、CD3 +およびCD4 +またはCD8 +が、大部分はCD3-/CD56-とアールCD19-。 <img src="/files/ftp_upload/3627/3627fig3.jpg" alt="図3。"/> 図3：T細胞の機能を提供します 。 T細胞の特異性は、IFN-γELISPOTにより試験した。 T細胞は、ヘキソン、ペントン、pp65を、そして無関係の抗原のIE-1のタンパク質全体にまたがる重複ペプチドをパルスした。単独でCTLが単独でメディアを示します。自家LCLは照射して1×10 5 /ウェルで添加した。セルCを形成し、平均点が示されている3ウェルのount。 <img src="/files/ftp_upload/3627/3627fig4.jpg" alt="図4。"/> 図4 CTLの細胞傷害活性 。ウイルス抗原を発現している標的を溶解する結果、CTLの能力を51 Crアッセイで試験した51 Cr標識自家PHA芽がLCLの自家Cr標識全体抗原にまたがる重複ペプチドをパルスしたり51したCTLの共培養を行った。 4時間後、ガンマリリースをガンマカウンターで計数した。

<ol><li>Kennedy-Nasser, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparable+outcome+of+alternative+donor+and+matched+sibling+donor+hematopoietic+stem+cell+transplant+for+children+with+acute+lymphoblastic+leukemia+in+first+or+second+remission+using+alemtuzumab+in+a+myeloablative+conditioning+regimen%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Blood+Marrow+Transplant%22%5BJournal%5D)">Comparable outcome of alternative donor and matched sibling donor hematopoietic stem cell transplant for children with acute lymphoblastic leukemia in first or second remission using alemtuzumab in a myeloablative conditioning regimen.</a> Biol. Blood Marrow Transplant. 14, 1245-1245 (2008).</li>
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<li>Hanley, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expansion+of+T+cells+targeting+multiple+antigens+of+cytomegalovirus%2C+Epstein-Barr+virus+and+adenovirus+to+provide+broad+antiviral+specificity+after+stem+cell+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Cytotherapy%22%5BJournal%5D)">Expansion of T cells targeting multiple antigens of cytomegalovirus, Epstein-Barr virus and adenovirus to provide broad antiviral specificity after stem cell transplantation.</a> Cytotherapy. , (2011).</li>
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<li>Shpall, E. J., Bollard, C. M., Brunstein, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+cord+blood+transplant+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Blood+Marrow+Transplant%22%5BJournal%5D)">Novel cord blood transplant therapies.</a> Biol. Blood Marrow Transplant. 17, Suppl 1. S39-S45 (2011).</li>
<li>Vera, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerated+production+of+antigen-specific+T+cells+for+preclinical+and+clinical+applications+using+gas-permeable+rapid+expansion+cultureware+%28G-Rex%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunother%22%5BJournal%5D)">Accelerated production of antigen-specific T cells for preclinical and clinical applications using gas-permeable rapid expansion cultureware (G-Rex.</a> J. Immunother. 33, 305(2010).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もない。

<html> CBTの後にウイルス感染を制御することを目的と現在の戦略が効果的ですが、彼らはかなりの毒性に関連付けられている、高価なもので、その後の感染症に対する長期の保護を与えない。実際には、いくつかの抗ウイルス薬の使用は、他の方法で保護されるであろうウイルス特異的T細胞の増殖を制限することがあります。14もう一つのオプションは、ドナー由来のウイルス特異的T細胞の注入である。私たちと他の人がそのようなT細胞は、安全で効果的、かつ費用対効果の高いことが示されている。15-17ここでは、このアプローチはまた、臍帯血に拡張することができることを示している。 これは、無菌培養ヒト初代培養細胞に使用することが不可欠です。なぜなら、T細胞のナイーブな性質のために、ヒト血清を血清が必要なすべてのメディアで使用されていることも重要である。我々の経験では、FBS含有製品は、FBS由来のタンパク質を標的とするT細胞の大規模な展開になります。 ve_content &quot;&gt;多くが核と赤血球溶解バッファーで溶解されていないため、フィコール勾...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td></tr><tr><td> RPMI 1640 </td><td>インビトロジェン</td><td> 21870-076 </td></tr><tr><td> DCのメディア</td><td> CellGenix </td><td> 20801-0500 </td></tr><tr><td> EHAA（クリックのミディアム） </td><td>アーバイン·サイエンティフィック</td><td> 9195 </td></tr><tr><td>ヒト血清</td><td>ジェミニバイオ製品</td><td> 100から110 </td></tr><tr><td>ガス透過性Cultureware 18 </td><td>ウィルソン - ウルフ</td><td> 80040S </td></tr><tr><td> IL-2の</td><td>カイロン（TCH薬局） </td><td></td></tr><tr><td> IL-12の</td><td> NCI / CTEP </td><td></td></tr><tr><td> IL-15の</td><td> CellGenix </td><td> 1013-050 </td></tr><tr><td> IL-7の</td><td>研究開発</td><td> AFL207 </td></tr><tr><td> IL-1βの</td><td>研究開発</td><td> AFL201 </td></tr><tr><td> IL-6の</td><td>セルGenix </td><td> 1004-050 </td></tr><tr><td> GM-CSF </td><td> TCH薬局</td><td></td></tr><tr><td> IL-4 </td><td>研究開発</td><td> <a href="http://www.rndsystems.com/pdf/AFL204.pdf" target="_blank">AFL204</a> </td></tr><tr><td> TNF-α </td><td>研究開発</td><td> AFL210 </td></tr><tr><td> Ad5f35pp65 </td><td> BCM CAGTベクトル製造施設</td><td></td></tr><tr><td>プラズマ転送が雌型ルアーアダプターを使用して設定</td><td>チャーターメディカル</td><td> 89から550-66j </td></tr><tr><td> Lymphoprep </td><td>ナイコメッド</td><td> 1114550 </td></tr></tbody></table>

臍帯血から細胞傷害性tリンパ球の拡大をそのターゲットサイトメガロウイルス、エプスタイン - バーウイルス、およびアデノウイルス

Expanding Cytotoxic T Lymphocytes from Umbilical Cord Blood that Target Cytomegalovirus, Epstein-Barr Virus, and Adenovirus

幹細胞移植後のウイルス感染は、特にCBは感染から受信者を保護することができ、ウイルス経験豊富なT細胞のかなりの数字を含まない臍帯血（CB）移植（CBT）の後に、死の最も一般的な原因の一つである1 -我々や他のウイルス特異的CTL抗体陽性ドナーから生成され、受信者に注入が安全かつ保護的であることが示されている。5-8しかし、最近まで、ウイルス特異的T細胞が臍帯血から生成することができませんでした、おそらくのために4ウイルス特異的メモリーT細胞が存在しない。 良いナイーブT細胞の in vivoでのプライミング条件で模倣するための努力で、我々は、したがってT細胞特異性を駆動する、CB由来樹状細胞（DC）は免疫CMV抗原pp65抗原を含むアデノウイルスベクター（Ad5f35pp65）で形質導入に使用する方法を確立し開始時9。CMV、およびアデノウイルスに向かって、我々はこれらのmaを使うtured樹と同様に、CB由来T細胞サイトカインの存在下で、IL-7、IL-12およびIL-15 10我々は両方を発現するEBV形質転換B細胞、またはEBV-LCLを、使用される第二の刺激で潜伏と溶解EBV抗原。 Ad5f35pp65形質のEBV-LCLは第2の刺激でのIL-15の存在下でT細胞を刺激するために使用されます。後続の刺激は、EBV-LCLおよびIL-2 Ad5f35pp65形質を使用しています。 50x10 6、CB単核細胞から、我々は抗原刺激に応答して、抗原をパルス目標とリリースサイトカインを溶解さ150×10 6のウイルス特異的T細胞の上方に生成することができます。11これらの細胞は、使用して、GMPに準拠した方法で製造されただけ画し臍帯血ユニットの20％画分および臨床使用のために翻訳されています。

ここでは、最初の良い製造基準（GMP）に準拠した臍帯血、主にナイーブT細胞のソースからウイルス特異的細胞傷害性Tリンパ球（CTL）を製造する方法を説明します。

臍帯血から細胞傷害性Tリンパ球の拡大をそのターゲットサイトメガロウイルス、エプスタイン - バーウイルス、およびアデノウイルス

幹細胞移植後のウイルス感染症は、最も一般的な死因の一つであり、特に臍帯血（CB）移植（CBT）後において顕著である。そこでは...

この手順の全体的な目的は、複数のウイルスの抗原を認識する臍帯血由来の細胞傷害性Tリンパ球（CTL）を作製することです。これは、まず臍帯血ユニットの20%分画から臍帯血単核細胞を分離することで達成されます。次のステップでは、これらの単核細胞を用いて、樹状細胞、Epstein-Barr virus リンフォブラスト細胞株（E-B-V-L-C-L）、およびウイルス特異的CTLを作製します。T細胞を含む単核細胞を、A five F 35 PP 65ベクターを導入した細胞で刺激します。最終ステップでは、マルチウイルス特異的CTLの特異性を確認し、CTLを凍結保存します。最終的に、少なくとも1つのウイルス抗原に対するCTLの増殖の特異性を、ELISPOT解析および細胞傷害性試験を通じて評価できます。一般的に、この手法を初めて行う方は、20%画分で得られるコア血液の量が非常に少なく、操作に利用できる細胞数が極めて限られているため、困難に直面することがあります。また、本手順は非常に複雑であり、これらの限られた細胞数から少なくとも3種類の異なる細胞タイプを生成させる必要があります。私たちは、骨髄移植後の患者に向けて多種ウイルス特異的T細胞を作製した臨床試験のデータを解析した際に、初めてこの手法を考案しました。その研究において、T細胞がこれらの患者に対して安全であるだけでなく、有効であり、ウイルス感染の予防および治療につながることが確認されました。しかし、このような治療を最も必要としている患者群は臍帯血移植のレシピエントであり、これらの患者の場合、ドナーに遡ってT細胞作製のための血液を採取することができません。そのため、移植処置に使用されない20%の臍帯血画分から、多種類のウイルス特異的T細胞を生成するための新しい戦略を開発する必要がありました。まず、50 mL遠心チューブに入れた20 mLのRPMIを温め、20%画分の臍帯血を融解させます。次に、メスルアーアダプターのスパイクを20%画分の流出ポートに挿入し、シリンジを取り付けます。続いて、血液を吸引し、準備しておいた遠心チューブに移します。臍帯血バッグを5 mLのRPMIで洗浄し、洗浄液を同じチューブに移します。次に、室温で400 Gsにて10分間遠心分離し、上清を吸引した後、細胞を20 mLの温めたRPMIで再懸濁させます。リンパ球分離液15 mLを50 mL遠心分離管に移します。その上に再懸濁した細胞を重層し、400 Gsで40分間遠心分離して細胞を分離させます。界面層を回収します。次に、単核細胞を20 mLのRPMIで450 ×gにて10分間洗浄し、上清を吸引除去した後、ペレットを20 mLのRPMIに再懸濁して細胞数をカウントします。その後、細胞を400 ×gで5分間再度遠心してペレット化し、もう一度上清を吸引除去し

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JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

の世代のための迅速、簡単かつコスト効率の良いプロトコルドナー由来のCMV、前売またはEBV感染症を発症する危険性がある同種造血幹細胞移植（HSCT）の受信者に注入するためmultivirus特異的CTL（rctlを）。この製造プロセスはGMPに準拠しており、専門センターを超えてT細胞免疫療法の広範な実施を確保すべきである。...

同種造血幹細胞移植後のウイルス感染を予防/治療するMultivirus -特異的T細胞の生成

抗原特異的T細胞の誘導と拡大のための新しいDCの独立した方法が記載されている。 HLA A2 - Igはベースの人工的な抗原提示細胞（aAPC）が効率的に多様な抗原特異性のCTLを拡大するHLA -...

HLA - Igは効率のためのベースの人工抗原提示細胞生体外で</emヒトCTLの>拡大

このビデオは、ヒト人工多能性幹細胞(iPSC)由来のCD8+...

ウイルス抗原特異的T細胞を用いたB型肝炎ウイルスの複製抑制

CD4+制御性T細胞は強力な免疫調節因子であり、免疫恒常性において重要な機能を果たします。末梢血中のこれらの細胞が不足しているため、特にHIV-1感染の状況では、機能研究が困難になっています。ここでは、HIV-1感染者の末梢血から機能的なCD4+...

HIV-1に感染した個体からの制御性T細胞を増殖するための新しいツール

単一細胞レベルでのサイトカイン産生を検出し、T細胞応答の両方の定量的および定性的特徴づけを提供するようなγインターフェロン（IFN-γ）のELISpotのような機能アッセイの新規世代水痘帯状疱疹に対して向けられた細胞性免疫応答を評価するために使用することができるウイルス（VZV）。...

臍帯血移植後の水痘帯状疱疹ウイルス特異的細胞性免疫を評価するために、IFN-γELISPOTアッセイの開発

このプロトコルの目標は、閉鎖性サイトカイン捕捉システムを組み込み、専任のスタッフやGMP施設の使用を必要としないベンチトップの自動化された第2世代細胞濃縮デバイスを使用して、病原体特異的な臨床グレードのT細胞を製造することです。作製したサイトメガロウイルスpp65特異的T細胞は、患者に直接投与することができます。...

サイトカインキャプチャシステムを用いた臨床応用のためのサイトメガロウイルス特異的T細胞の自動化された細胞濃縮

ここでは、ヒトの抗凝固血液の密度勾配遠心分離後に、末梢血単核細胞からの磁気ビーズ分離によって単球がどのように単球を単離されるかを示します。5日間のインキュベーション後、ヒト単球は未成熟樹状細胞に分化し、非臨床環境での実験手順の準備が整います。...

全血からのヒト単球由来樹状細胞の生成

標準的な免疫学的技術のアプリケーションをご紹介 (CFSE 染色 OT-私増殖) 急速に補助を介した細胞傷害性 T リンパ球 (CTL) の生成をモニターするつもり体内。CTL...

急速なIn Vivo評価補助の細胞傷害性 T リンパ球生成機能のワクチン開発のため

ここに提示されるのは、幹細胞由来ウイルス抗原(Ag)特異的Tリンパ球の養子細胞転写(ACT)を利用してマウスにおけるB型肝炎ウイルス(HBV)複製の効果的な抑制のためのプロトコルである。この手順は、HBV感染の潜在的なACTベースの免疫療法に適合してもよい。...

幹細胞由来ウイルスAg特異的Tリンパ球はマウスにおけるHBV複製を抑制する

我々は、細胞有効性の注入研究のために十分な数の目的の遺伝子の優れた共発現を有する細胞を得るアカゲザル末梢血単核細胞の導入及び拡張のための9日間のプロトコルを概説する。...

中央記憶表現型の維持による9日間の主要T細胞の導入と拡張

提示は、ガンマデルタ(γδ)T細胞薬剤産物の拡張のためのプロトコルである。リンパ球は溶出により単離され、γδ濃縮はゾレドロン酸とインターロイキン-2で濃縮される。α-βT細胞は、臨床グレードの磁気分離装置を使用して枯渇する。γδ細胞をK562由来、人工抗原提示細胞と共培養し、拡大する。...

アペレットヒト産物からのガンマデルタ(γδ)T細胞の増殖と濃縮

学ぶ臍帯血由来細胞傷害性Tリンパ球のGMP準拠製造法。サイトメガロウイルス、エプスタイン・バーウイルス、アデノウイルスに対する抗原特異的CTLを生成し、免疫療法への応用可能性を示す。

臍帯血から細胞傷害性Tリンパ球の拡大をそのターゲットサイトメガロウイルス、エプスタイン - バーウイルス、およびアデノウイルス

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