Name: DNA損傷の検出のための半人工分子機械とその使用のin vitroでの組立に (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 56 s
Description: 学ぶ半人工分子機械によるDNA損傷検出法。トポイソメラーゼを用いたin vitro組立で、組織切片中の2種類のDNA切断を蛍光標識により可視化します。がん研究やDNA修復機構の解析に応用可能です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

この研究は、国立神経疾患研究所と脳卒中、国立衛生研究所（VVD）からと神経疾患や脳卒中、国立ARRAを通じて衛生研究所（VVD）とR21の国立研究所からR21 NS064403の補助金によって助成金R01NS062842によってサポートされていました生体イメージングとバイオのEB006301国立研究所、健康（VVD）の国立研究所。

それらの調製方法は、分子デバイスの組立よりも時間がかかるため、分子機械ベースの検出のためのセクションは、最初に準備する必要があります。構造はパラホルムアルデヒド固定、パラフィン包埋組織ブロックから切り出した5量6μm厚のセクションでうまく動作します。このようなProbeOnプラスに帯電しprecleanedスライド（フィッシャーサイエンティフィック）または同様の同様のセクションを保持するスライドのブランドを、使用してください。我々はまず、デキサメタゾンで処理したアポトーシスラット胸腺13,14としてDNアーゼI -とDNase II型改の両方を含むDNA損傷のよく知られたパターン、とティッシュを使用してからをお勧めします。 1。セクションの準備<ol><li> 15分間、キシレンでスライドラックや〜からろうを除去するのセクションを配置、さらに5分間新鮮なキシレン槽に移す。 </li><li>段階的エタノール濃度を通過することによって再水和する：96％エタノール2x5min、80％エタノール - 5分、水 - 2X5分。 </li><li> Proteinasとダイジェストセクション電子K.は、セクションごとの50μg/mL溶液の100μLを使用してください。加湿チャンバー内の室温（23℃）でインキュベートする1​​5&#39;。時間は組織の種類に応じて調整が必要な場合があります。硬組織は、もはや消化が必要になる場合があります。 15〜25分の時間が通常使用されています。不十分な消化が弱い信号になることがあります。信号の消失とセクションの混乱の一方の結果でOverdigestion。 </li><li> 2 × 10分間蒸留水ですすいでください。 </li><li> preblocking 2％のBSAのセクションあたり100μLを適用します。室温で15分間（23℃）インキュベートする。この時間の間に分子機械を組み立てる。 </li></ol> 2。分子機械組立すべての試薬は、平均的な大きさの組織切片（10x10mm）で単一の検出のために十分である25μL合計体積に対して拡大または縮小されます。必要に応じてボリュームをスケールアップすることができます。 <ol><li>このためには小さなプラスチック製のチューブで組み合わせる。 </li></ol><table border="1"><tbody> &lt;TR&gt; <td><ol><li>蒸留水; </li><li> 15％のポリエチレングリコール- 8000; </li><li> 、66 mMのトリス塩酸、pH7.5の、5 ​​mMのMgCl 2、0.1mMのジチオエリトリトール、1mMのATP、（すなわち、通常のT4 DNAリガーゼバッファー）の解</li><li>オリゴヌクレオチド1の70ピコモル、 </li><li> 215ピコモル（1.76〜7.1μg）をVACC TOPO </li><li> 10単位のT4 DNAリガーゼ（500 U / mL）を</li></ol></td></tr></tbody></table><ol start="2"><li>ピペッティングにより穏やかに混合。分子は、このソリューションでは、ほぼ瞬時に自己組み立て構築し、室温（23℃）ですぐに使用できます。温度を37増やす° CのブロックラベルのT4 DNAリガーゼベースのコンポーネント。 </li></ol> 3。デュアルラベルの5&#39;OHと5&#39;PO4 DNA切断に組織切片での分子機械を使用する<ol><li> preblockingソリューションを吸引し、オリゴヌクレオチド1の70ピコモル、53を含む完全な反応混合物の25μlのを適用する - 215ピコモル（1.76〜7.1μg）をVACC66 mMのトリス塩酸、pH 7.5、5mMのMgCl 2を 、0.1mMのジチオエリトリトール、1mMのATP、および15％ポリエチレングリコール- 8000のソリューションでTOPOと10ユニットT4 DNAリガーゼ（500 U / mL）を。単一のFITCラベル、オリゴヌクレオチド2を運ぶ同じシーケンスのオリゴヌクレオチドは、DNA切断の単一のタイプの検出のために代わりに使用することができます。このような場合、標識反応からリガーゼを省略します。また、このような状況で50mMトリス- HCL、pH7.4の、の溶液を15％PEG - 8000を、T4 DNAリガーゼ緩衝液の代わりに使用できます。 </li><li>プラスチック製のカバー付き加湿チャンバー中、室温（23℃）で1時間インキュベートする。光から保護する。 16に温度の低下° Cがリガーゼベースの信号を減​​少させる、37の温度上昇は、° Cは完全にリガーゼベースの信号を除去する。リガーゼの部分的な阻害は、時々、反応ミックスにはトポイソメラーゼの準備で導入された汚染物質が原因の可能性が発生します。そのため、より長いインキュベーション（2-4時間）が必要になることがあります場合は特に秒リガーゼ標識休憩のignificant番号が存在する。リガーゼとTOPOの信号の両方がこの段階で観察することができますが、多くの例でリガーゼ信号はVACC TOPOと二重標識オリゴヌクレオチドを​​含まない反応混合物の再アプリケーションによってさらに強化されるが、ヘアピン状のオリゴヌクレオチド（オリゴヌクレオチド3）を含むことができる（35 mg / mLの）とT4 DNAリガーゼ（250 U / mL）を。向上させるために信号は、ステップ5に進みます強化なしで反応を見るために、ステップ3に進みます。 </li><li>穏やかに室温で水を含むコプリンジャーに垂直にスライドを浸してカバースリップを取り除きます。余分な水分を吸引除去する。 </li><li> VACC TOPOとオリゴヌクレオチド1なしの反応ミックス25μLを適用するが、オリゴヌクレオチド3を含むことによりリガーゼ信号を強化：66 mMのトリス塩酸、pH7.5の、5 ​​mMのMgCl 2、0.1mMのジチオエリトリトール、1mMのATP、および15％ポリエチレングリコール- 8000、5ユニットT4 DNAリガーゼは、35 mg / mLのオリゴヌクレオチド3（平滑末端ヘアピン）。ラベリングソリューションCAの合計量nが大きいセクションに対応するためにスケールアップする。プラスチック製のカバー付き加湿チャンバー中、室温（23℃）で18時間（一晩）インキュベートする。 </li><li>穏やかに室温で水を含むコプリンジャーに垂直にスライドを浸してカバースリップを取り除きます。その後、蒸留水でセクション3 × 10分間洗浄する。 </li><li>炭酸水素ナトリウム緩衝液ですすいでください。アルカリ溶液は、pH感受性であり、有意にpHを7以下に下がっているFITCの蛍光を、高めるすすいでください。 </li><li> antifading溶液（DAPIとVectashield）、カバースリップを持つセクションをカバーし、蛍光顕微鏡を用いて信号を解析する。 5&#39;OHを持つ二重鎖DNA切断は緑、5&#39;PO 4ブレイクを蛍光を発する-赤（図2）は蛍光を発する。 </li></ol> 4。代表的な結果<img alt="図2。" src="/files/ftp_upload/3628/3628fig2.jpg" /> 図1半人工分子機械は、2つのタイプのを検出in situで DNA損傷。 VACC TOPOがダブルヘアピン32 - merのために結合すると蛍光マシンは、自身により組み立てます。認識配列の3&#39;末端にカットトポイソメラーゼ製経由でマシンには2つの検出器ユニットに分割すること自体が動作を開始します。 FITC標識ユニットが連続的に分離し、ローダミン標識ユニットに戻ってreligatesサイクリックプロセスでこの結果。検出可能なDNAのブレークが検出されるまでこれが持続します。このような代替アクセプタ（5&#39;OH平滑末端のDNAのブレークが）組織切片内に存在する場合、FITC部分はそれにライゲートされます。残りのローダミンの部分は、T4 DNAリガーゼの助けを借りて、5&#39;PO 4 DNA平滑末端の改行にアタッチされます。その結果、DNA切断の両方のタイプを同時に検出されます。 <img alt="図1。" src="/files/ftp_upload/3628/3628fig1.jpg" /> 図2。分子機械デュアルラベルDNA切断の2つのタイプデキサメタゾン処理した胸腺の組織セクションに表示されます。 DNアーゼI -とDNase II型の平滑末端DNAの切断は、アポトーシスを起こした胸腺皮質領域で検出されています。緑色の細胞質蛍光（5&#39;OH DNA切断）がアポトーシスを起こした胸腺細胞の核物質を消化皮質マクロファージをマーク。この信号は、VACC TOPOによって生産され、5&#39;OH二本鎖切断11,12を含むDNAとphagolysosomesに局在している。赤色蛍光（5&#39;PO 4休憩）ラベルマクロファージによる貪食しないアポトーシスを起こした胸腺細胞の核を。胸腺細胞の大規模な数字は同時に、5&#39;PO 4二本鎖切断の発生を伴うアポトーシスを起こすリガーゼベースの標識によって可視化した。これらの改行はリング状のパターンを形成し、核の周囲に配置されています。すべての細胞の核はDAPI（青色蛍光）との対比により可視化。

<ol><li>Meacham, G. C., Patterson, C., Zhang, W., Younger, J. M., Cyr, D. M. Nature. Cell. Biol. 3, 100-105 (2001).</li>
<li>Schuldt, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+Pol+expeditions%5BTitle%5D)+AND+%22Nature.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Dynamic Pol expeditions.</a> Nature. Cell. Biol. 4, E279-E279 (2002).</li>
<li>Urry, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+machines%3A+how+motion+and+other+functions+of+living+organisms+can+result+from+reversible+chemical+changes%5BTitle%5D)+AND+%22Angew.+Chem.+Int.+Ed.+Engl%22%5BJournal%5D)">Molecular machines: how motion and other functions of living organisms can result from reversible chemical changes.</a> Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 32, 819-841 (1993).</li>
<li>Schneider, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Theory+of+molecular+machines+I.+Channel+capacity+of+molecular+machines%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Theor.+Biol%22%5BJournal%5D)">Theory of molecular machines I. Channel capacity of molecular machines.</a> J. Theor. Biol. 148, 83-123 (1991).</li>
<li>McClare, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+machines%2C+Maxwell%27s+demon+and+living+organisms%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Theor.+Biol%22%5BJournal%5D)">Chemical machines, Maxwell's demon and living organisms.</a> J. Theor. Biol. 30, 1-34 (1971).</li>
<li>Spirin, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ribosome+as+a+molecular+machine%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Lett%22%5BJournal%5D)">Ribosome as a molecular machine.</a> FEBS Lett. 514, 2-10 (2002).</li>
<li>Fabbrizzi, L., Foti, F., Licchelli, M., Maccarini, P. M., Sacchi, D., Zema, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light-emitting+molecular+machines%3A+pH-induced+intramolecular+motions+in+a+fluorescent+nickel%28II%29+scorpionate+complex%5BTitle%5D)+AND+%22Chemistry%22%5BJournal%5D)">Light-emitting molecular machines: pH-induced intramolecular motions in a fluorescent nickel(II) scorpionate complex.</a> Chemistry. 8, 4965-4972 (2002).</li>
<li>Drexler, K. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDrexler%2C+KE+%22Nanosystems%3A+Molecular+Machinery%2C+Manufacturing+and+Computation%22">Nanosystems: Molecular Machinery, Manufacturing and Computation</a>. , Wiley. New York. (1992).</li>
<li>Freitas, R. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFreitas%2C+RA+%22Nanomedicine%3A+basic+capabilities%22">Nanomedicine: basic capabilities</a>. , Landes Bioscience. Austin. (1999).</li>
<li>Didenko, V. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+probes+using+fluorescence+resonance+energy+transfer+%28FRET%29%3A+designs+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22BioTechniques%22%5BJournal%5D)">DNA probes using fluorescence resonance energy transfer (FRET): designs and applications.</a> BioTechniques. 31, 1106-1121 (2001).</li>
<li>Minchew, C. L., Didenko, V. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+probes+detecting+the+phagocytic+phase+of+apoptosis%3A+enzyme-substrate+complexes+of+topoisomerase+and+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Molecules%22%5BJournal%5D)">Fluorescent probes detecting the phagocytic phase of apoptosis: enzyme-substrate complexes of topoisomerase and DNA.</a> Molecules. 16, 4599-4614 (2011).</li>
<li>Didenko, V. V., Minchew, C. L., Shuman, S., Baskin, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Semi-artificial+fluorescent+molecular+machine+for+DNA+damage+detection%5BTitle%5D)+AND+%22Nano.+Letters%22%5BJournal%5D)">Semi-artificial fluorescent molecular machine for DNA damage detection.</a> Nano. Letters. 4, 2461-2466 (2004).</li>
<li>Didenko, V. V., Hornsby, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Presence+of+double-strand+breaks+with+single-base+3%27+overhangs+in+cells+undergoing+apoptosis+but+not+necrosis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Presence of double-strand breaks with single-base 3' overhangs in cells undergoing apoptosis but not necrosis.</a> J. Cell Biol. 135, 1369-1376 (1996).</li>
<li>Didenko, V. V., Tunstead, J. R., Hornsby, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biotin-labeled+hairpin+oligonucleotides.+Probes+to+detect+double-strand+breaks+in+DNA+in+apoptotic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Biotin-labeled hairpin oligonucleotides. Probes to detect double-strand breaks in DNA in apoptotic cells.</a> Am. J. Pathol. 152, 897-902 (1998).</li>
<li>Jones, R. A. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aJones%2C+RAL+%22Soft+Machines%3A+Nanotechnology+and+life%22">Soft Machines: Nanotechnology and life</a>. , Oxford University Press. USA. (2007).</li>
<li>Samejima, K., Earnshaw, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trashing+the+genome%3A+Role+of+nucleases+during+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Trashing the genome: Role of nucleases during apoptosis.</a> Nat. Rev. Mol. Cell. Biol. 6, 677-688 (2005).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

このビデオでは、我々は、デュアルラベリングDNA損傷のセンサーを組み立て、使用する方法を示します。センサーは、生体分子のエンジン、人工的なコンポーネントにリンクされているウイルスでエンコードされたタンパク質VACCのTOPOによって駆動分子機械です。提示の開発は、非毒性の分子スケールデバイス12,15の設計に生物学的構造、アーキテクチャとセルの実際の部品とコンポーネントを適応提唱バイオ対応のアプローチを例示している。 1：このアプローチは、in vivoでのナノセンサーの分野に特有の二つの問題を解決します。従来のナノ材料を使用してナノ構造真に均一かつ再現することの難しさと、2。潜在的な毒性、およびナノプローブ、粒子と他の高度に分散ナノ材料の高い生物学的反応性。センサーは、DNA損傷のラベリングの新しい機能に、それを再度指示する人工的な成分で、天然に存在する分子機械を統合しています。このような統合の製品はSEです。マイル - 人工分子機械は、新しいタスクを対象。トポイソメラーゼ、ポリメラーゼ及び他の酵素のマシンが頻繁に生化学的研究で使用されていますが、それらは個々の分子アセンブリに...

<ol><li>キシレン</li><li> 80および96％エタノール。 </li><li>蒸留水でウシ血清アルブミン（BSA）の2％溶液。 </li><li>オリゴヌクレオチド1：ダブルヘアピン、デュアルフルオレセイン、テトラメチルローダミンで標識した。 </li></ol> 5&#39; - AAG GGA CCT GC F GCA GGT CCC TTA ACG CAT GCG TT - 3&#39;AT R、F - FITC - DT; R -テトラメチルローダミン- dTが。このようなBODIPY TR、ローダミンまたはTAMRAなど、他の赤色シフト蛍光体はRとしてテトラメチルローダミンの代わりに使用することができます。 あるいは、オリゴヌクレオチド2を使用することができます - フルオレセインで標識された二重ヘアピンのシングルを（DNA切断のシングルタイプ（DNase処理II型のみ）を検出するための単一フルオロフォアを運ぶプローブはかなり安価で、いつでもシングル便利です。 DNA区切りの種類が分類されることになります：5&#39; - AAG GGA CCT GC F GCA GGT CCC TTA ACG CAT ATG CGT T - 3&#39;; F - FITC - dTを</p&gt; <ol start="5"><li>オリゴヌクレオチド3。 T4 DNAリガーゼを用いたin situライゲーションの信号での強化のための平滑末端ローダミン標識ヘアピン：5&#39; - GCG CTA GAC C R G GTC TAG CGC - 3&#39;; R -テトラメチルローダミン- dTを</li><li>ワクシニアDNAトポイソメラーゼL（VACC TOPO） - 3000 U /μL（ビビッドテクノロジーズ）。初期の実験では、反応混合物の各25μLあたりVACC TOPO 215ピコモル（7.1μg）を使用。しかし、トポイソメラーゼの濃度が大幅に感度を失うことなく減少させることができます。我々は、後で同じような結果とセクションごとにVACC TOPO（セクションごとに反応ミックス25μLの1.76μg）の4倍より少ない量を使用していました。 880 ngの（反応ミックス25μLで）への酵素の量を減らす弱い信号をもたらしたとVACC TOPOの8.8 ngのは、検出可能なシグナルを産生しなかった。 </li><li> T4 DNAリガーゼ5 U /μL（ロシュ）。この高濃度のリガーゼの準備は、我々の実験条件における最適な信号を提供します。 </l私&gt; <li> T4 DNAリガーゼ用10 ×反応バッファー：660 mMのトリス- HCl、50 mMのMgCl 2、10mMのジチオエリトリトール、10mMのATP、pHが7.5（20℃）（ロシュ）。反応緩衝液中のATPは、容易に凍結を融解の反復的なサイクルで破棄されます。アリコートで小さい15から20μLの部分とストア内のバッファ - 20℃で一度だけ使用してください。 </li><li> 30％（w / v）の蒸留水でのPEG - 8000の溶液（シグマ）。 15％は反応ミックス中のPEG - 8000を強くボリュームの排除によって、その成分の有効濃度を増加させる、検出を刺激する。 </li><li>プロテイナーゼK（Roche社）を蒸留水に20 mg / mlのストック溶液。で保管して - 20℃の反応では株式から調製した、PBSで50mg/mLのソリューションを使用してください。再使用しないでください。 </li><li> DAPIとVectashield（ベクターラボラトリーズ）。 </li><li>炭酸水素ナトリウム緩衝液：50メートルM NaHCO 3を 、15メートルのNaCl、pHは8.2。 </li><li> 22x22mmまたは22x40mmガラスまたはプラスチック製のカバースリップ。プラスチック製カバースリップは、彼らのように、反応中に好ましいセクションから削除するには、簡単に再。 </li></ol>

dna損傷の検出のための半人工分子機械とその使用のin vitroでの組立に

In vitro Assembly of Semi-artificial Molecular Machine and its Use for Detection of DNA Damage

天然由来のバイオ分子のマシンはすべての生きている細胞では機能とデザインを1-6の様々な表示。まだ方向運動、すなわち分子モーターの対応デバイス上で、そしてそのスケールダウンした機械部品（ホイール、アクスル、ペンダント等）7-9人工分子機械の中心の開発。これは、慣性と運動量の保存など、これらのデバイスに不可欠な物理特性は、ナノワールドの環境で10に使用できないにもかかわらず、マクロマシンを模したもの。機械的なmacromachinesスキームに従い、生体分子の進化に開発した機構を使用しない代替デザインは、、ナノワールドの特定の条件を活用することができます。に加えて、ナノ設計の目的のために実際の生体分子を適応させるナノテクノロジー製品がもたらす可能性のある潜在的な危険を減らすことができます。ここでは、そのようなバイオ対応構造のアセンブリとアプリケーションを示すように人工的な成分で、天然に存在する分子機械を組み合わせたEMI -人工分子デバイス。ビューの酵素学の観点から、私たちの構造は、デザイナーの蛍光酵素基質複合体の特定の有用な機能を実行するために一緒に入れています。それは1つの12が含まれているとして、このアセンブリは、定義により分子機械です。まだ、エンジニアリング部との統合-蛍光二重ヘアピン- DNA損傷12を標識する新しいタスクにそれを再指示する。 私たちの構造は32量体DNAと酵素ワクトポイソメラーゼI（VACC TOPO）から組み立てます。マシンは、2つの蛍光標識検出器ユニット（図1）を製造するために、独自の材料を使用しています。ユニットの一つ（緑色蛍光）が運ぶ共有結合その3&#39;末端と別のユニット（赤色蛍光）に接続されているVACC TOPOは、ターミナル3&#39;OH無料ヘアピンです。ユニットは短命で、すぐにその後recleavesオリジナルの構造に戻し、組み立て直す。DNAの非存在下で周期的に継続的に独立したとreligateこれら二つのユニットを壊します。 DNA損傷による組織切片では、トポイソメラーゼを運ぶ検出器ユニットは、選択的に蛍光ラベルを付けます、5&#39;OHと平滑末端DNAの切断（DNase処理II型改）11,12に接続します。オリゴヌクレオチド開裂の後に形成された第二、酵素のないヘアピンT4 DNAリガーゼは、ソリューション13,14内に存在する場合、5&#39;PO 4平滑末端ブレーク（DNアーゼI -型改）11,12、にライゲートされます。 T4 DNAリガーゼは、組織切片または5&#39;PO 4平滑末端切断したDNAを含む溶液に添加されると、リガーゼは、準安定酵素- DNA複合体を形成し、5&#39;PO 4 DNAの末端と反応する。平滑末端ヘアピンは、このように5&#39;PO 4平滑末端DNAの切断をラベリング、DNAにリガーゼと共有結合リンクのヘアピンをリリースするこれらの複合体と相互に作用します。 この開発は、番目に新しい実用的なアプローチを例示している電子の分子機械の設計とは、固定された細胞や組織におけるアポトーシスとDNA損傷の検出に有用なセンサーを提供します。

我々は、トポイソメラーゼのタンパク質を搭載した分子スケールデバイスのアセンブリとアプリケーションを示しています。構造は、その両端に二つの異なる蛍光色素を付加することにより組織切片におけるDNA切断の2つの主要なタイプを標識する生体分子センサーです。

DNA損傷の検出のための半人工分子機械とその使用のin vitroでの組立に

天然に存在する生体分子マシンは、あらゆる生細胞内で機能しており、多種多様な設計を示しています 1-6。しかし、人工的な分子...

この手順の全体的な目的は、組織切片において2つの主要なタイプのDNA断裂を標識する、デュアルラベルDNA損傷センサーの組み立て方と使用方法を実証することです。このセンサーは、ZIとルミンでデュアルラベルされた30 ntの腫瘍DNAオリゴヌクレオチドと、自己 assembleする酵素であるワクシニアトポイソメラーゼI（vac topo）で構成されています。VAC topoが30 ntの腫瘍に結合すると、topoが認識配列の3'末端でオリゴヌクレオチドを切断することで作動し、その結果、vac topo活性化fitzy標識ユニットとアミン標識遊離ヘアピンが生成されます。末端に3'ヒドロキシ基を持つため、これらのユニットは短命であり、速やかに元の構造へと再 assembly され、その後再び切断されます。追加の分子内DNA断裂がない場合、これら2つのユニットは周期的に分離と結合を繰り返します。分子センサーをDNA損傷のある組織切片に適用すると、Fitz標識検出ユニットが、5'ヒドロキシ基を持つ平滑末端のDNA断裂部位に選択的に結合します。Rドメイン標識検出ユニットは、5'末端リン酸基を持つ平末端切断部位にライゲーションされます。T4 DNAリガーゼが存在する場合、蛍光顕微鏡に基づいて、細胞内におけるDNAの1本鎖切断および2本鎖切断の存在と分布を示す結果が得られます。TUNEL法などの既存のDSB検出法に対するこの手法の主な利点は、より特異性が高く、アポトーシスの自己完結的な相と食細胞による相の両方を標識することで、さらなる情報を提供できる点にあります。ナノテクノロジーの視点から見ると、このセンサーは、実際の生物学的構造やアーキテクチャを非毒性の分子スケールデバイスの構築に適応させた、バイオ基盤アプローチを例示しています。一般的に、この手法に不慣れな者は、その成功が高活性のToro SOM調製物の使用および、proteinase Kによる過剰消化を避けるための切片の適切な処理に依存するため、困難に直面する可能性があります。本手順に用いる組織切片は、分子デバイスを組み立てる前に準備しておく必要があります。パラアルデヒド固定組織から、厚さ5〜6 µmの切片を作成します。固定パラフィン包埋組織ブロックの使用が推奨されます。組織切片を載せたスライドをスライドラックに入れ、キシレン中で15分間脱パラフィンします。15分後、新しいキシレン浴に移し、さらに5分間処理します。スライドを以下の段階的なエタノール濃度に浸し、切片を親水化します。96% ethanolに2回、各5分間。次に80% ethanolに5分間浸し、最後に水に通します。5分間を2回繰り返します。再水和後、切片をproteinase Kで消化します。切片1枚あたり50 µg/mL溶液を100 µL使用し、加湿チャンバー内で室温で15分間インキュベートします。組織の種類によって消化時間を調整する必要がある場合がありますが、過剰消化になるとシグナルの消失や切片の崩壊を招くため、注意してください。スライドを蒸留水で2回、各10分間すすぎます。2%BSAを塗布してプレブロッキングを行い、加湿チャンバー内で室温にて15分間インキュベートします。この間に、このビデオで次に示すように分子マシンを組み立てます。分子マシンの構築に使用するすべての試薬は、平均的なサイズの組織切片1枚の検出に十分な合計容量25 µLに合わせて調整されています。必要に応じて、小さなプラスチックチューブを用いて容量を増やすことができます。以下の試薬を、この順序で蒸留水に加えて混合してください。15% polyethylene glycol 8,000、T4 DNA Ligase バッファー、二重標識オリゴヌクレオチド、vaccinia topoisomerase I、および T4 DNA Ligase をピペッティングで穏やかに混ぜ合わせます。この溶液中で分子構築物はほぼ瞬時に自己組織化し、室温でそのまま使用可能です。DNA切断部位の標識手順を開始するには、スライドから事前ブロッキング溶液を吸引してください。各セクションに反応混合液を25 µLずつ滴下します。セクションの上にプラスチックカバーガラスを載せ、スライドを加湿チャンバーに入れます。チャンバーをアルミホイルで包んで遮光し、室温で1時間インキュベートします。1時間のインキュベーション後にリガーゼとtopoの両方のシグナルが観察されますが、多くの場合、リガーゼのシグナルをさらに増強させることができます。シグナルを増強させるには、vac topoおよびオリゴヌクレオチド1を除き、オリゴヌクレオチド3とT4 DNA Ligaseを含む反応混合液を再適用し、切片上にプラスチック製カバーガラスを載せて、加湿チャンバー内で18時間インキュベートします。翌日、室温でスライドを室温の水が入ったコプランジャーに垂直にそっと浸し、カバーガラスを取り除きます。次に、切片を蒸留水で10分間ずつ3回洗浄します。その後、切片を炭酸水素ナトリウム緩衝液でリンスします。このアルカリ性溶液によるリンスは、pHに敏感でpH 7以下では著しく低下するfitzy蛍光を増強させます。最後に、核染色用のDPIを含む抗退色溶液で切片を覆い、カバーガラスを被せます。これで切片は蛍光顕微鏡観察の準備が整いました。この図は、デキサメタゾン処理した胸腺の組織切片を示しており、分子マシンが、アポトーシスが進行している胸腺皮質領域において、DNA-1型およびDNA-2型の鈍端DNA断裂を検出したものです。緑色の細胞質蛍光はDNA-2型の断裂を示しており、アポトーシスを起こした胸腺細胞の核物質を消化している皮質マクロファージがマークされています。このシグナルはvac topoによって生成され、5'水酸基を含むDNAを持つFGAリソソームに局在します。二本鎖切断は赤色蛍光で示され、DNAの1種類の切断標識として機能し、マクロファージに貪食されていないアポトーシス thymocytes の核を標識します。膨大な数の thymocytes が同時にアポトーシスを起こします。リガーゼを用いた標識により可視化された、5つのプライムリン酸二本鎖切断の生成を伴っています。これらの切断部位は核周辺に位置し、リング状のパターンを形成しています。すべての細胞核は、DPIによる対比染色により青色に可視化されています。この手順を行う際は、異なる溶液を添加する間に切片を乾燥させないことが重要です。また、すべての酵素調製液は切片に加えるまで氷上で保持し、蛍光プローブは標識反応および現像後の光から保護してください。この手法により、ヘテロ細胞解離のすべての段階を可視化することが可能となりました。このセンサー自体は、ナノスケールの粒子、プローブ、およびマシンの設計におけるグリーンナノテクノロジーアプローチの一例です。このアプローチでは、人工的なコンポーネントと天然に存在する分子マシン部品を組み合わせています。その目的は、これら高度に分散したナノ材料の毒性と、有害な生物学的反応性を排除することにあります。

in-vitro-assembly-semi-artificial-molecular-machine-its-use-for

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

我々は、バクテリオファージの複製システムのタンパク質によって媒介個々のDNA分子のリアルタイムレプリケーションを観察するための方法を説明します。...

アッセイをストレッチ単一分子のDNAを用いて酵素の複製DNAの直接観察

電子分光イメージングは、ナノメートルの分解能で核酸とタンパク質を画像化し、区別することができます。miniSOGシステムと組み合わせることで、透過型電子顕微鏡サンプル中のタグ付きタンパク質を特異的に標識することができます。これらの技術の使用を例として、二本鎖断線修復病巣を使用して説明します。...

電子分光イメージングと組み合わせたminiSOGタグ付きのDNA修復タンパク質の可視化（ESI）

ここでは、 in situ Proximity Ligation Assay（PLA）を使用して、遺伝毒性ストレスに曝された懸濁細胞培養におけるATMとp53との間の直接タンパク質 - タンパク質相互作用の検出および可視化を実証する。...

近接ライゲーションアッセイを用いた懸濁細胞培養におけるDNA損傷誘発タンパク質複合体の検出と可視化

蛍光顕微鏡を用いた過渡的長期的な二本鎖 DNA 切断の DNA 修復プロセスの特性

非標識、ラジオ-同位体 DNA ポリメラーゼの校正と DNA 修復アッセイ法は高分解能 MALDI-TOF 質量分析法および単一のヌクレオチドの拡張戦略を使用して開発されました。アッセイは、非常に特定、簡単、迅速かつ簡単に校正を実行し、修復するパッチ...

校正と単一のヌクレオチドの拡張子と MALDI-TOF 質量分析を用いた DNA 修復アッセイ

この記事では免疫染色とクロマチン免疫沈降の重要なステップを紹介します。これらのプロトコルは、DNA損傷関連の細胞プロセスを研究し、DNA修復に関与するタンパク質の採用を視覚化し、定量化するために一般的に使用されます。...

エンドヌクレアーゼベースの部位特異的DNA損傷の可視化と定量化

この方法論は、ナノ粒子の存在下でのDNA複製ダイナミクスの変動の分析に役立ちます。目的の材料の細胞毒性レベルに基づいて、さまざまな方法論を採用できます。さらに、DNAファイバー解析に役立つように画像解析の説明が提供される。...

ナノ粒子によって誘発されるDNA損傷および修復ダイナミクスを調べるためのDNAファイバーアッセイのデモンストレーション

次のプロトコルはRPA2 immunofluorescent stainingに先行している細胞周期の同期を利用して細胞周期のG1段階のsingle-stranded...

細胞周期のG1期における一本鎖DNA病巣の可視化

DNAzymeベースのナノマシンは、核酸の高選択性と高感度な検出に使用できます。この記事では、フリーソフトウェアを使用した10-23コアのDNAzymeベースのナノマシンの設計に関する詳細なプロトコルと、例としてEpstein-Barrウイルスフラグメントの検出におけるそれらのアプリケーションについて説明します。...

DNAzyme 10-23 - 核酸認識用ナノマシン

蛍光標識され、完全に再構成されたCdc45/Mcm2-7/GINS(CMG)ヘリカーゼの動きを光学トラップに保持された直鎖状DNA分子上で直接画像化および定量化するためのハイブリッドアンサンブルおよび単一分子アッセイを報告します。...

完全に再構成されたCMGの動きを画像化するためのハイブリッドアンサンブルおよび単一分子アッセイ

学ぶ半人工分子機械によるDNA損傷検出法。トポイソメラーゼを用いたin vitro組立で、組織切片中の2種類のDNA切断を蛍光標識により可視化します。がん研究やDNA修復機構の解析に応用可能です。

DNA損傷の検出のための半人工分子機械とその使用のin vitroでの組立に

さらに動画を探す