Name: 成体マウスの卵形嚢とアデノウイルス媒介助演細胞感染の解剖 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-03-28T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 13 s
Description: 学ぶ成体マウス卵形嚢の解剖とアデノウイルス媒介助演細胞感染法。内耳平衡器官の感覚上皮を保持しながら、毛細胞再生メカニズムの研究に有用なin vitroモデルを構築する手法を解説します。

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この作品は、難聴やその他のコミュニケーション障害の国立研究所の学内研究部門によってサポートされていました。追加のサポートがNIDCD 5R01 DC007613によって提供されました。

1。卵形嚢解剖と文化<ol><li>承認されたプロトコルと首をはねるを用いた成体（4週齢以上）マウスを安楽死させる。 </li><li>頭の両側に外耳道を切り取ると、鼻に向かって前方に肌を引き出します。後ろから前に頭を二分し、骨迷路を明らかにするために両側から脳を削除します。 </li><li>離れて骨の蝸牛から頭蓋骨をトリミングして、解剖顕微鏡（注：アデノウイルス作業はクラスIIの生物学的安全キャビネット内で行うべきである）を装備した組織培養フードに骨迷路を（水疱を含む）を転送します。 </li><li>フードには、滅菌解剖メディアを含む35ミリメートル組織培養皿（M199、GIBCO / Invitrogen社＃12350）（ 図1A）にそれぞれ蝸牛を転送します。 </li><li>聴覚水疱が無傷のままであれば（それが水疱との頂点の間にサムネイルを挿入することで総解剖中に水疱を除去することが可能です。蝸牛）、水疱（ 図1B）を破るために2つの鉗子（1＃3、1＃5）を使用します。 </li><li>頂部、ベース、耳小骨、楕円形や円形の窓、VIIIth神経根、半規管（ 図1 C、D）：骨蝸牛の準備のランドマークを識別します。 </li><li>楕円形と円形の窓と頂点が皿とVIIIth神経根の底にあることなどが上を向いて、上を向く内側に皿に内耳を配置します。半規管（ 図1D）の領域で第3位鉗子を使用して準備を保持します。 </li><li> ＃11ブレードを搭載したメスを用いて、神経根（ 図1D）にだけ心尖部蝸牛の頂点を切り落とした。 </li><li>カットした部分が上を向いているように準備をオンにします。準備（ 図1E）を安定させるためのハンドルとして前半規管を使用しています。 </li><li> ＃5鉗子を用いて、蝸牛軸で蝸牛を削除するベースに。蝸牛のフック領域が下向きになる時点で、球形嚢を明らかにし、骨らせん板（ 図1F）の最後の骨のシェルフを持ち上げて（壊れている＃55鉗子の半分）の微細なプローブを使用しています。ちょうど球形嚢の下に重要なランドマークであるアブミ骨底板です。卵形嚢は、アブミ骨底板（ 図1G）に隣接しており、それが骨に囲まれています。離れて卵形嚢の約1/3明らかにするために十分な骨が欠けするためのプローブを使用しています。慎重に＃55鉗子（ 図1H）を使用して、卵形嚢を削除します。卵形嚢は骨の準備から引き出されたとして、この手順は、通常、色素屋根上皮の除去になります。卵形嚢がそのまま屋根の上皮で削除された場合は、屋根は、第55位鉗子を使用して削除することができます。 </li><li>アデノウイルス感染症のUtricles（またはライブイメージング実験）は清（感染前）の間に除去聴砂を持っている必要があります。このケースでは、解剖メディアを充填し、小口径ニードル（通常は26から28ゲージ）が装備されてルアーロックシリンジを使用しています。 ＃55鉗子（ 図1I）を使用して、端に卵形嚢を保持します。下向きの針のベベルと卵形嚢に近い針の先端をもたらす。聴砂（ 図1J）を吹き飛ばすために、メディアを解剖のストリームを使用しています。また、耳石は、まつげツール（テッド·ペラ社＃113）を使用して、それらをオフにブラッシングにより除去することができる。アデノウイルス感染を受けるつもりはありませんUtriclesはそのまま聴砂（簡単です、ポストフィックス聴砂除去、については下記参照）を24ウェル組織培養プレート中に通常浮遊培養する。 </li><li> 5％FBSを添加したDMEM F12（Gibco社＃11320）および50 U / mlペニシリンG（シグマ）：すべてのutriclesが解剖され、無菌培養培地に解剖メディアを変更します。 </li><li> Utriclesは37℃、5％CO 2で培養されています。文化はmaintaにする場合48時間以上INED、培地の半分は一日おきに変更する必要があります。培養は週間以上維持することができる。 </li></ol> 2。支持細胞のアデノウイルス感染症重要：アデノウイルスで作業するバイオセーフティレベル2（BSL2）の手順と認証を必要とします。 BSL2手順に関するガイダンスや訓練のためにあなたの機関バイオ·オフィサーに確認してください。 <ol><li> （無血清）上記のように解剖メディアのutriclesを分析。上記のように聴砂を削除します。 </li><li>感染する準備ができたら、の各ウェルに1卵形嚢（毛細胞まで）を転送ヌンク15μL の無血清 DMEM F12（血清、ウイルスを不活化することができるので、これは重要である）を含むミニトレー（フィッシャー＃12-565-68） 。この転送は、1.5ミリメートルmicrocurette（＃10082から15ファイン科学ツールから）簡単になります。 </li><li>私たちの広告-GFPは、削除されたウイルスのE1およびE3遺伝子とtransgを駆動するヒトCMVプロモーターと血清型5であるエン（GFP）。このウイルスは、ベクターBioLabs社（ペンシルバニア州フィラデルフィアから得られた<a href="http://www.vectorbiolabs.com/">vectorbiolabs.com</a> ）。ストックウイルスは1.0から4.0×10 10 PFU / mlの力価で提供されています。よく卵形嚢（ 図1L）を含む各株式ウイルスの0.5から2μlを添加します。実際に使用される量は、ウイルスや株式価に応じて異なります。我々は通常1.0から4.0×10 7 PFUで各卵形嚢に感染します。 </li><li> 2時間37℃/ 5％CO 2でウイルス含有培地での培養はutricles。 2時間後、血清培地を含む24ウェル組織培養プレートに戻ってutriclesを転送します。 37℃/ 5％CO 2で一晩培養utricles。 </li><li> Utriclesは、ライブイメージング実験のために翌日使用することができ、またはそれらは有毛細胞の免疫化学（下記参照）に固定することができます。時間をかけて、ウイルス遺伝子の発現が増加するので、導入遺伝子の発現は24時間後に感染症では低すぎる場合は、5月血清含有培地でさらに24時間培養細胞に有益。あなたが髪の細胞毒性が表示されている場合は、使用されるウイルスの量を減らすことができます。 </li></ol> 3。卵形嚢ボール、聴砂除去し、免疫化学<ol><li>培養期間の終了時に、室温で3時間のいずれかに4％パラホルムアルデヒドでutriclesを修正（ロッキングプラットフォームの場合）または4℃で一晩0.1 M（1X）ソレンセンのリン酸緩衝液pH 7.4洗浄utricles（3回、各15分）。これらの手順は、24ウェル組織培養プレートで実行されます。 </li><li>聴砂除去注：聴砂は、（上記のステップ1.11参照）、アデノウイルス感染する前に削除する必要があります。しかし、感染しているではありませんutriclesはまだ無傷聴砂で培養し、修正することができます。このケースでは、固定した後聴砂を削除するには、ここで説明する手順を使用します。残っている色素の屋根上皮utriclesを点検します。慎重に2＃55 fを使用して、任意の残りの屋根の上皮を削除orceps。聴砂を削除するには、750から1000μLカル-EX decalcifier（フィッシャー＃CS510-1D）とソレンセンのリン酸緩衝液を交換してください。 1分40秒（2分を超えない）のためにutriclesのCAL-EXのままにしておきます。 0.1 Mソレンセンのリン酸緩衝液および洗浄（5回、各5分）でカル-EXを交換してください。 </li><li> 10分間水素化ホウ素ナトリウムでutricles（シグマ＃45​​2882、脱イオン水で1％）をインキュベートします。 0.1 Mソレンセンのリン酸緩衝液（5回、各5分）にutriclesを洗浄します。 </li><li>ブロッキング溶液中に置きutricles（PBS + 2％ウシ血清アルブミン+ 0.8％正常ヤギ血清+ 0.4％トリトンX-100）ロッキングプラットフォーム上で室温で3時間。 </li><li>一次抗体を追加し、4℃で一晩インキュベート℃、 1:100の抗ミオシン7aの（プロテウスサイエンスの発達研究ハイブリドーマバンクから＃25から6790または＃MYO7A 138から1までのいずれか）ソリューションのラベルすべての有毛細胞をブロックインチ別にstriolarと非striolar有毛細胞を標識するために、我々はダブルラベルprotocoを使用しているとポリクローナル抗カルビンジン（Chemicon社＃AB1778、テメキュラ、カリフォルニア州、米国; 1:200）、モノクローナル抗カルモジュリン（1:150シグマC＃3545）とlである。二次抗体（Invitrogen社、カールスバッド、カリフォルニア州、アメリカ合衆国通常のAlexa Fluor®標識二次抗体）をブロッキング溶液で1:500に希釈し、ロッキングプラットフォーム上で、暗所、室温で4時間インキュベートする。 </li><li> Fluoromount-Gを（サザンバイオテック、バーミンガム、アラバマ州、米国）を使用して、スライドガラス上にマウントutricles。 </li></ol> 4。代表的な結果この方法を用いて培養Utriclesは、完全な維持有毛細胞と支持細胞（ 図2）の両方を補完するものです。健康文化の有毛細胞は、図7a陽性ミオシンされている薄い細胞質領域で囲まれた丸い核のプロファイルを示す（ 図2、上のパネル）。支持細胞（抗レトロウイルスベクターで標識された）小さく、より密に有毛細胞（ 図 2、下段）よりも満員。アデnovirusは、卵形嚢の支持細胞の25〜50％に感染し、無毛細胞は（ 図2は、Ad-GFPパネル）に感染されていません。それは、ウイルス力価が高すぎる場合は毛の細胞死が可能であるので、それぞれのアデノウイルスの最適な仕事力価は、経験的に決定しなければならないことに留意すべきである。さらに、機械的損傷（解剖時に発生）の領域は、ウイルスを大量に取るでしょう。機械的損傷のこれらの領域は、GFPの発現不足している有毛細胞の非常に高いレベルでの細胞の連続的なラインで簡単に識別できます。これは、無傷の文化の細胞（ 図2）をサポートしているの散乱GFPの発現は対照的である。 <img src="/files/ftp_upload/3734/3734fig1.jpg" alt="図1"/> 図1。郭清を卵形嚢。 ：聴覚水疱（AB）B：。水疱は2つの頑丈な鉗子を用いて切断されたC：骨蝸牛（RW =丸窓、S =アブミ骨動脈、C =蝸牛、ST =あぶみ）D：。外科用メスの刃（SB）はVIIIth脳神経（ 第 8 回 N）に尖蝸牛の頂点を切断するために使用されるASC =前半規管 E：製剤は、最も外側の骨（矢印）の前半規管（ASC）およびその他の挿入1フォークで第3位鉗子を用いてしっかりと保持されます。膜迷路は、鉗子を使用して削除されたF：。除去膜迷路とは、骨らせん板の基底回転フックの領域の近くに表示されます。微細なプローブは、シェルフを持ち上げ、それを（矢印）を削除するには、この骨の棚の下に挿入されているG：。球形嚢を除去した後、卵形嚢（U）は、アブミ骨底板（SF）に隣接してすぐに表示されているH：卵形嚢（Uは、 ）＃55ピンセット（矢印）を使用して削除されたSF =アブミ骨底板は、I：。聴砂と卵形嚢（O）部分的に除去するにはD感覚上皮（SE）、可視下にJ：。聴砂は（O）26ゲージの針を備えたシリンジで配信されるメディアのストリームを使用して卵形嚢から削除されます。針（S）の影は、画像の下部に表示されているK：。アデノウイルス感染症：卵形嚢に耳石が削除され、感覚上皮（SE）が表示さLで各卵形嚢（U）は、ミニだけでなく、個々に配置されますトレイ。支持細胞はよくあった（P =ピペットの先端）にウイルスをピペッティングによりアデノウイルスに感染しています。 <img src="/files/ftp_upload/3734/3734fig2.jpg" alt="図2"/> 図2。支持細胞のアデノウイルス媒介性感染症。Utriclesは、緑色蛍光タンパク質のアデノウイルス駆動式（広告-GFP）を感染させた。有毛細胞の層と、1卵形嚢の同一エリア内の支持細胞層の共焦点画像が表示されます。有毛細胞はミオシン7aの抗体で標識された（マゼンタ）。支持細胞は、レトロウイルスベクター（赤）に対する抗体で標識されています。回路図は、卵形嚢感覚上皮と毛細胞（HC）と支持細胞（SC）の場所の構造を示しています。 （U）上部および下部に示すように、共焦点（光学）のセクションの位置は（L）パネルは、回路図の破線で示されています。上部パネル：有毛細胞核のレベルで撮影した共焦点画像では、Ad-GFPシグナルが有毛細胞の間のスペースに表示され、有毛細胞マーカーミオシン7aのとは重複しません。下パネル：支持細胞核のレベルで焦点のセクションでは、Ad-GFPシグナルは、支持細胞マーカーソックス-2と共局在する。細胞のみをサポートするGFPの発現、およびno有毛細胞のAd-GFP感染の結果が感染している。 <img src="/files/ftp_upload/3734/3734fig3.jpg" alt="図3"/> 図3。アデノウイルス感染は、有毛細胞または支持細胞の死に至ることはありません。ウッriclesは4×10 8 PFU / mlで広告-GFPを感染させた。 Utriclesはミオシン7A（有毛細胞のマーカー）とSox2（細胞マーカーをサポートしている）に対する抗体で標識した。有毛細胞と支持細胞数がコントロールutriclesおよびAd-GFP感染utriclesために等しかった。

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利害の衝突が宣言されません。

感覚毛細胞が老化、騒音外傷、およびアミノグリコシド系抗生物質と抗がん剤のシスプラチンを含む耳毒性薬物への暴露を含むさまざまなストレスによって引き起こされる死への影響を受けています。永久的な聴力損失および/ ​​またはバランスの乱れの哺乳類の有毛細胞死の結果に表示されます。in vitroのモデル系では、細胞および分子メカニズムの根底にある有毛細胞の死と同様に、有毛細胞死を予防または逆転を狙ったものを決定することを目的と研究のための重要なツールです。 。大人の哺乳動物由来の蝸牛有毛細胞とは異なり、卵形嚢の有毛細胞は、培養にも生き残る。卵形嚢の有毛細胞は、蝸牛の有毛細胞に有毒である同一の治療薬への曝露から死に敏感であり、耳毒性有毛細胞死と生存の基礎となる細胞のメカニズムは、卵形嚢と蝸牛有毛細胞の12から18の両方に似ています。また、とき卵形嚢モデル系で得られたデータはTEです。in vivoでSTED、卵形嚢の準備が成熟した蝸牛12、18から21の有毛細胞の生存と死の信頼できる予測因子であることが証明されています。マウスの卵形嚢の製剤はまた、私...

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Erratum: Dissection of Adult Mouse Utricle and Adenovirus-mediated Supporting-cell Infection

<table border="1"&gt;<tbody&gt;<tr&gt;<td<strong&gt;試薬</strong</td&gt;<td<strong&gt;会社概要</strong</td&gt;<td<strong&gt;カタログ番号</strong</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;培地199</td&gt;<td&gt; GIBCO / Invitrogen社</td&gt;<td&gt; 12350</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; DMEM/F12</td&gt;<td&gt; GIBCO / Invitrogen社</td&gt;<td&gt; 11320</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;ファイン鉗子（＃55）</td&gt;<td&gt;ファイン科学ツール</td&gt;<td&gt; 11255から20</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;ファイン鉗子（＃5）</td&gt;<td&gt;ファイン科学ツール</td&gt;<td&gt; 11252から30</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;ピンセット（＃3）</td&gt;<td&gt;ファイン科学ツール</td&gt;<td&gt; 11231から30</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;ペニシリンG</td&gt;<td&gt;シグマ</td&gt;<td&gt; P3032</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;ウシ胎児血清</td&gt;<td&gt;インビトロジェン</td&gt;<td&gt; 10082-1​​39</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;ヌンクミニトレイ</td&gt;<td&gt;フィッシャー</td&gt;<td&gt; 12-565-68</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;アデノウイルス-GFP</td&gt;<td&gt;ベクトル·バイオラブズ</td&gt;<td&gt; 1060 *</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;カル-EX decalcifier</td&gt;<td&gt;フィッシャー</td&gt;<td&gt; CS510-1D</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;水素化ホウ素ナトリウム</td&gt;<td&gt;シグマ</td&gt;<td&gt; 452882</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;アンチミオシン7aの（ポリクローナル）</td&gt;<td&gt;プロテウスサイエンス</td&gt;<td&gt; 25から6790</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;アンチミオシン7A（モノクローナル）</td&gt;<td&gt;発達研究ハイブリドーマバンク</td&gt;<td&gt; MYO7A 138から1</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;アンチカルモジュリン</td&gt;<td&gt;シグマ</td&gt;<td&gt; C 3545</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt;アンチカルビンジン</td&gt;<td&gt;ケミコン</td&gt;<td&gt; AB1778</td&gt;</tr&gt;<tr&gt;<td&gt; Fluoromount G</td&gt;<td&gt;サザンバイオテクノロジーアソシエイツ</td&gt;<td&gt; 0100から01</td&gt;</tr&gt;</tbody&gt;</table&gt;<p class="jove_content"<strong&gt;表1</strong&gt;。卵形嚢の文化やアデノウイルス感染症に使用される試薬およびツールを提供します。</p&gt;<p class="jove_content"&gt; *注：AD-GFPは、通常1×10の株式力価でベクトルBiolabs社によって提供されます<sup&gt; 10</sup&gt; PFU / mlであった。我々は、1.2×10の力価に在庫のウイルスを提供するために、カスタムの増幅を要求され​​た<sup&gt; 11</sup&gt; PFU / mlであった。</p&gt;

成体マウスの卵形嚢とアデノウイルス媒介助演細胞感染の解剖

Dissection of Adult Mouse Utricle and Adenovirus-mediated Supporting-cell Infection

聴力損失とのバランス障害は、しばしば内耳の受容細胞である機械刺激有毛細胞の死によって引き起こされます。満足哺乳類の有毛細胞を表すには細胞株が存在しないため、有毛細胞の研究は主要な器官培養に依存しています。成体マウス（ 図1）1-6からutriclesの器官培養を利用して成熟した哺乳類の有毛細胞の in vitroモデル系では最高を特徴とする。卵形嚢、前庭器官であり、卵形嚢の有毛細胞は、聴覚器官、コルチ器官の有毛細胞の構造と機能の両方に似ています。成体マウスの卵形嚢の準備は、生存、恒常性、およびこれらの細胞死を制御する分子シグナルの研究のための成熟した感覚上皮を表しています。 哺乳類の蝸牛有毛細胞は、分化され、それらが失われた場合、再生成されていません。非哺乳類の哺乳類、脊椎動物、聴覚または前庭有毛細胞の死は、聴覚やバランス機能7、8を復元する堅牢な再生が続いている。有毛細胞の再生は、感覚上皮9、10に有毛細胞の基底面を連絡グリア細胞のような支持細胞によって媒介される。支持細胞はまた、有毛細胞の生存および死亡11の重要なメディエーターである。我々は最近、アデノウイルスを用いて培養utricles内のセルをサポートしている感染の技術を開発した。 CMVプロモーターの制御下にGFPを含むトランスジーンを提供するためにアデノウイルス5型（dE1/E3）を使用して、我々は特にそのアデノウイルスを見つけ、効率的に支持細胞に感染します。支持細胞の感染効率は約25から50パーセントであり、有毛細胞は（ 図2）感染していない。重要なのは、我々は、Ad-GFP infファイル内のセル数としてサポートしている細胞のアデノウイルス感染は、有毛細胞または支持細胞への毒性にはなりません見つけるected utriclesは、非感染utricles（ 図3）と同等です。したがって、培養utriclesの支持細胞のアデノウイルス媒介遺伝子発現は、有毛細胞の生存、死亡、そして再生のメディエーターとして支持細胞の役割を研究する強力なツールを提供しています。

機械刺激有毛細胞は、内耳の受容細胞である。最高の特徴<em&gt; in vitroで</em成熟した哺乳類の有毛細胞の&gt;モデルシステムでは、成体マウスからutriclesの器官培養を利用しています。我々は、成体マウスの卵形嚢の解剖を提示し、我々は培養utriclesで支持細胞のアデノウイルス媒介性感染症を示しています。

聴覚喪失や平衡感覚の障害は、内耳の受容細胞である機械感覚毛細胞の死によって引き起こされることが多い。 поскольку...

本プレゼンテーションでは、成マウスの耳胞を用いた全器官培養の手順を実演します。また、培養した耳胞の支持細胞にアデノウイルスを感染させる方法についても実演します。まず、内耳から耳胞を慎重に摘出することでこれを達成します。第2ステップは、屋根上皮を除去することです。次に、感覚上皮を温存したまま、耳石を除去します。最終ステップでは、アデノウイルスを用いて卵形嚢の支持細胞に感染させます。これらの手法は、成熟した哺乳類の有毛細胞および支持細胞を調べるために設計された、多種多様な実験に利用できます。in vitroにおいて、内耳の感覚受容細胞は有毛細胞と呼ばれ、これらの細胞が音エネルギーや頭部の動きを脳への神経入力に変換する役割を担っています。難聴は多くの場合、これらの感覚毛細胞の死滅によって引き起こされます。感覚毛細胞死の基礎となるメカニズムを研究するためには、in vitroモデルシステムを用いることが非常に有用です。本手法では、成マウスの耳胞の全器官培養を利用する方法について解説します。耳胞は内耳にある前庭器官であり、耳胞の有毛細胞は、コルチ器と呼ばれる聴覚器官にある有毛細胞と類似しています。耳胞標本は、成熟した哺乳類の有毛細胞および支持細胞を研究するための、最も詳細に特性解析されたモデルシステムです。さらに、当研究室が最近開発した、アデノウイルスを用いて耳胞の支持細胞に感染させる手法について説明します。アデノウイルス法を用いることで、有毛細胞の生存、死滅、および再生の媒介因子としての支持細胞の役割を検討することが可能になります。当研究室ではこれらの手法を用いて、2つの主要な疑問に取り組んでいます。第一に、ストレス下にある有毛細胞が、最終的に生存するか死滅するかを決定付ける細胞および分子シグナルは何であるかということです。そして第二に、聴力損失を予防または回復させるための臨床治療法を開発するために、これらの情報をどのように活用できるでしょうか。私の研究室の生物学者であるLindsey Mayeが、これらの手法を実演します。耳胞の解剖は、組織が小さく脆弱であり、特に耳石と屋根上皮を除去するステップにおいて機械的損傷を受けやすいため、視覚的な実演が重要となります。施設で承認された動物実験プロトコルに従って成マウスを安楽死させ、断頭した後、頭蓋骨を後頭部から吻側に向かって二等分し、骨迷路を露出させるために両半分から脳を取り出します。次に、骨製蝸牛から頭蓋骨を切り離し、骨迷路を滅菌培地（1 99）を含む35 millimeterの組織培養皿に移します。鼓室がまだ残っている場合は、2本の丈夫なピンセットを使用して鼓室を破壊してください。これらの画像（書面によるプロトコルにも再現されています）で示されているように、蝸牛頂部、基底部、前庭窓、卵円窓、正円窓、第8脳神経根、および半規管を含む骨格標本の指標を確認します。耳小骨がディッシュの底にあり、第8脳神経根が上を向くように標本を配置してください。ピンセットで半規管付近の標本を保持し、11番メスを用いて、神経根のすぐ頂側で蝸牛頂部を切り離します。前半規管をハンドルとして標本を固定し、切断した部分が上を向くように標本を回転させます。次に、5番ピンセットを用いて、モディウスから基底部にかけて蝸牛を除去します。その後、55番ピンセットを半分に加工して作成した細いプローブを使用し、骨性らせん板の最後の骨棚を持ち上げます。これにより、その下にstapes（アブミ骨）の底板が現れます。この画像はsfとラベル付けされた鐙骨足板を示しています。これは、鐙骨足板のすぐ隣に位置するUとラベル付けされた卵形嚢の位置を特定するための重要な指標となります。微細プローブを使用して、卵形嚢の約3分の1が見えるまで十分に骨を削り取ります。次に、55番ピンセットを用いて、卵形嚢の端のごく近くか神経根の部分を慎重に把持して除去します。色素化した屋根上皮が依然として卵形嚢に付着している場合は、微細ピンセットを用いてこれを除去します。アデノウイルス感染に卵形嚢を使用する場合は、そのために耳石を除去する必要があります。シリンジに解剖用培地を満たし、26または28ゲージの針を装着します。55番ピンセットで耳囊の端を固定し、培地の流れを用いて耳石を除去します。あるいは、まつげ用ツールを使用して耳石を取り除くことも可能です。すべての耳囊の解剖が完了したら、解剖用培地を滅菌済み培養培地に変更し、プレートを37 °C、5% carbon dioxide のインキュベーターに入れます。すべてのアデノウイルス操作は、バイオセーフティーレベル2の予防措置に従って実施します。感染準備が整ったら、マイクロキュレットを使用して、1つの卵形嚢有毛細胞を、15 µLの無血清D-M-E-M-F 12を含むミニトレイの1ウェルに移します。卵形嚢培養を含むウェルに、1～4 × 10⁷ PFUのアデノウイルスを添加します。U-tricklesをウイルス含有培地に入れ、加湿チャンバー内にて37 °C、5% CO2条件下で2時間インキュベートします。2時間後、U-tricklesを血清含有培地が入った24ウェル組織培養プレートに移します。移し替えた後、U-tricklesを再び37 °C、5% CO2条件下で一晩培養します。摘出した耳胞は、翌日にライブイメージング実験に使用するか、あるいは免疫化学染色のために固定します。耳胞は、ロッキングプラットフォーム上で、室温で3時間または4 °Cで一晩、4%パラホルムアルデヒドを用いて固定します。次に、0.1 M Sorensenリン酸緩衝液で、15分間ずつ3回耳胞を洗浄します。アデノウイルス感染のために耳石を除去していない場合は、この時点で耳嚢をcalx decalcifyに1〜2分間浸して耳石を除去し、その後0.1 M Sorensenリン酸緩衝液で洗浄します。続いて、耳嚢をブロッキング溶液に浸し、室温で3時間ブロッキングを行います。ブロッキング後、一次抗体をブロッキング溶液で希釈します。耳嚢が入ったプレートにこれを加え、4 °Cで一晩インキュベートします。翌日、耳胞と球形嚢をリン酸緩衝液で洗浄します。次に、ブロッキング溶液で希釈した二次抗体を加え、遮光した室温条件下でロッキングプラットフォームを用いて4時間インキュベートします。最後に、FluoroMount-Gを使用して、耳胞をガラススライドに封入します。これらの共焦点画像は、緑色蛍光タンパク質の発現を誘導するアデノウイルスに感染させた1つの耳胞の同一領域における、有毛細胞層と支持細胞層を示しています。有毛細胞はmyosin seven Aに対する抗体で標識されており、マゼンタ色に示されています。支持細胞はsox2に対する抗体で標識されており、ここでは赤色に示されています。アデノウイルスGFPが有毛細胞ではなく、支持細胞に局在していることがわかります。このグラフは、4×10⁸ plaque forming units/mLのアデノウイルスGFPによるアデノウイルス感染では、有毛細胞または支持細胞の死滅は起こらないことを示しています。解剖の手技に習熟すれば、1匹の動物から得られた両方の耳蝸管を10〜15分で培養に供することができます。ただし、この手順を開発する際は、操作後の組織の取り扱いに十分な時間をかけ、慎重に行うことが重要です。支持細胞および有毛細胞の死滅、生存、および再生に関する疑問を解決するために、生細胞共焦点イメージング、免疫組織化学染色、RT-PCR、ウェスタンブロッティングなどの他の手法を実施することができます。このビデオを視聴することで、耳胞の解剖方法およびアデノウイルスを用いた支持細胞への感染方法について十分に理解できたはずです。ウイルスを取り扱う際は危険が伴うため、バイオセーフティに十分注意してください。これらの手順を実施する際は、常にバイオセーフティーレベル2の予防措置を講じてください。

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脈管筋は内蝸牛電位の生成に不可欠です。ここでは、単核シーケンシングまたは免疫染色のための成体マウス脈条血管の解剖を紹介します。...

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学ぶ成体マウス卵形嚢の解剖とアデノウイルス媒介助演細胞感染法。内耳平衡器官の感覚上皮を保持しながら、毛細胞再生メカニズムの研究に有用なin vitroモデルを構築する手法を解説します。

成体マウスの卵形嚢とアデノウイルス媒介助演細胞感染の解剖

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