Name: 正常なヒト脳内の可溶性および不溶性のPrPオリゴマーの分離 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-03T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 29 s
Description: 学ぶ正常ヒト脳からの可溶性・不溶性PrPオリゴマー分離法。超速遠心分離、サイズ排除クロマトグラフィー、G5Pキャプチャを用いて、神経変性疾患におけるプリオンタンパク質の研究に貢献します。

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ザ 著者らは、正常な脳のサンプルを提供するための人間の脳と脊髄液リソースセンター（ロサンゼルス、カリフォルニア州）に感謝しています。この研究は、マクレガー財団の支援や、大統領の裁量基金（ケース·ウェスタン·リザーブ大学）と米国立衛生研究所（NIH）R01NS062787、CJD財団、アライアンスBioSecure、ならびに大学の老化センターと健康によってサポートされていました。

1。脳ホモジネートおよび（S2）界面活性剤可溶性と不溶性（P2）の画分の調製<ol><li> 100mgの凍結ヒト脳組織を取り、100μlの溶解緩衝液（10mMトリス、150mMのNaCl、0.5％ノニデットP-40（NP-40）、0.5％のEDTA、pH7.4）を追加します。 </li><li>コー​​ドレスモータにより駆動乳棒を用いて氷上でホモジナイズし、これはどちらか20で5分間ドライアイスでそれを凍結し、モータによって最初にして、手によって駆動乳棒を用いて再度ホモジナイズし、300μlまたは800μlの溶解バッファー（追加％または10％の全脳ホモジネート、それぞれ）。 </li><li> 4℃で10分間、1,000×gで20パーセントまたは10パーセント合計脳ホモジネートを遠心℃の卓上遠心機を用いて上清（S1）を収集する。 </li><li> 4℃で1時間、SW55ローターで35,000回転（100,000×g）で（ベックマン·コールター、フラートン、カリフォルニア州）で10％s1を超遠心きれいなチューブに界面活性剤可溶性画分を含む上清（S2）を転送します。洗剤不溶性含むペレットを再懸濁しまたは5倍濃縮製剤 - 100μlまたは10を作るために、200μlの溶解緩衝液中の画分（P2）。 </li><li> PK - 消化のために、S2とP2分画の両方で1時間37℃で50μg/ mlでPKの同じ金額でサンプルをインキュベートする。 PK消化を終了するために5 mMおよびSDSサンプルバッファー（3％SDS、2mMのEDTA、4％β-メルカプトエタノール、10％グリセロール、50mMトリス、pH6.8）を等量の最終濃度でフッ化フェニルメチルスルホニルを追加します。 10分間サンプルを沸騰させ、5分間室温でそれらを冷却。彼らは、ウェスタンブロッティングのために準備が整いました。 </li></ol> 2。ショ糖段階勾配で速度沈降<ol><li>氷上で30分間H 2 O中の2％サルコシルの等量で450μlの20％S1をインキュベートする。 </li><li> 0.5ミリリットルの60％それぞれ、30％、25％、20％、15％、および最大5ミリリットルの容量を持つベックマンチューブに10％ショ糖を追加します。 </li><li> 10〜60％ショ糖段階勾配の一番上にS1の0.4ミリリットルをロードします。 </li><li> 4℃で遠心する4℃で1時間、8,000 rpmで（200,000×gで、SW55ローター）、℃ </li><li>管の上部から各283μlを分画を収集し、合計で12画分を得る。 </li><li> 、新しいエッペンドルフチュー​​ブに各画分20μlを取る20μlのサンプルバッファーを加え、10分間煮る。 </li><li>フードで4分間クールのサンプルは、1分間、ボルテックスして、1,000×gで遠心分離します。プレキャストゲルにサンプルをロードします。 </li></ol> 3。サイズ排除クロマトグラフィー<ol><li>プリオン分子のオリゴマー状態を決定するために、1×30cmカラムでのSuperdex 200 HRビーズ（ファルマシア、ウプサラ、スウェーデン）を使用します。 </li><li>デキストランブルー（2,000 kDa）は、サイログロブリン（669 kDa）は、アポフェリチン（443 kDa）は、（200 kDa）は、β-アミラーゼ、アルコール脱水素酵素（150 kDa）は、アルブミン（含む7分子量マーカー（シグマ、セントルイス、ミシガン州） 66 kDa）は、および炭酸脱水酵素（29 kDa）を200μlのサンプル量でシグマが推奨する濃度で独立してロードされます。 </li><li>青DEXTの溶出容積RANは、製品の指示により提供さ空隙容積（V 0 = 8.45ミリリットル）、総容積（V T = 24ミリリットル）を決定するために使用されます。ピーク溶出体積（V e）はクロマトグラムと小数保持率から計算されます。 - /（V T - V 0）K AV =（V 0 V E）：K AV、分配係数は、（サンプルの動作を定義します）の式を用いて計算されます。検量線は基準8のログMWに対してタンパク質スタンダードのK AVをプロットすることにより決定されます。 </li><li>異なるFPLC画分に回収各種のPrP種の分子量（MW）は様々な規格のゲルろ過で生成された検量線に基づいて評価されます。 </li><li>各ランの列に1％サルコシルを含む溶解緩衝液中の200μlのS1を注入します。 </li><li>クロマトグラフィーは、0.25ミリリットル/分であり、画分の流速でFPLCシステム（GEヘルスケア）で行われるsは0.25ミリリットルの各々は、フラクションコレクターを（アマシャムバイオサイエンス、RediFrac）を使用して収集されます。 </li><li> 2時間-20℃で0.5ミリリットル予冷メタノールで0.125ミリリットル、各画分をインキュベートする。 </li><li> 4℃で30分間、C卓上遠心機で13,000 xgでサンプルを遠心分離します。上清を捨て、前述したように、20μlのSDSサンプルバッファーでペレットを再懸濁し、室温まで冷却し、10分間、煮沸、プレキャストゲルにロードします。 </li></ol> 4。 g5pによるPrPのキャプチャ<ol><li> g5p分子（100μgの（）は親切にポーツマス、イギリスの大学から博士ジェフ·ニールとジョンMcGeehanによって提供される）7にコンジュゲートしている×10 8トシル1ml中に100μgのg5pと350μlのg5pビーズをインキュベートすることにより、磁気ビーズを活性化20時間37℃のリン酸緩衝食塩水（PBS）。外部の磁力によりエッペンドルフチュー​​ブの側壁にg5pビーズを誘致して、すべてのソリューションを削除します。 PBSを含む1mlのビーズを洗浄3回アルブミン（BSA）を0.1％ウシ血清。 </li><li>非特異的結合をブロックするために5時間0.2Mのトリス-HCl、37℃、0.1％BSAを含有するpHが7.4℃で1mlにg5p結合ビーズをインキュベートしてから、1mlのPBSは、0.1％BSAを含有するビーズを洗浄三回は、上述したように。溶液を除去し、ビーズに1mlのPBSを加える。準備g5pビーズは4℃で少なくとも3ヶ月間安定している</li><li> g5pによるPrPのキャプチャを結合緩衝液1ml中の60μlのg5p結合ビーズ（10μgのタンパク質/ 6×10 7個のビーズ）（3％のTween-20、3％のNP-で100μlS1、分数またはP2をインキュベートすることによって行われますPBS、pH7.5）中で40。 </li><li>室温で3時間一定の回転とのインキュベーション後、PrPの含有g5pビーズは、溶液中のすべての非結合分子を簡単に削除できるように、外部の磁力によってエッペンドルフチュー​​ブの側壁に魅了されています。 </li><li>洗浄緩衝液で3回洗浄（2％Tween-20およびPBS中2％のNP-40、pHを7に続いて0.5）、g5pビーズは95で収集され、加熱され、SDSサンプル緩衝液中で5分間（3％SDS、2mMのEDTA、10％グリセロール、50mMのトリス-HCl、pH 6.8）℃で。 </li><li>室温で5分間、サンプルを冷却した後、試料を室温で5分間、1,000×gで遠心分離する。上清は、ウェスタンブロッティングの準備ができている。 </li></ol> 5。ウエスタンブロット法<ol><li>負荷サンプルは約80分間、150Vで15％のTris-HCl基準プレキャストゲル（Bio-Rad）を上にSDSサンプル緩衝液中で煮沸した。 </li><li>ゲル上のタンパク質は70Vで2時間PVDFに転送されます。 </li><li>で5％ミルクで膜をブロッキングした後、トリス緩衝生理食塩水0.01％のTween-20（TBS-T）は、膜は1E4（1、一次モノクローナル抗体またはポリクローナル抗体3F4（1:40,000）で室温で2時間インキュベートする：1,000）、抗N 8（1:6,000）、または抗CのPrP分子をプロービングのための8（1:6,000）。 </li><li> HRP結合ヒツジ抗マウスIgGでとのインキュベーション後1:3000、またはロバ抗ウサギIgGは1:3,000でのPrPバンドは、製造業者のプロトコルに従って、ECL Plusを使用して、コダックフィルム上に可視化される。 </li></ol> 6。代表的な結果のPrP Cの大部分はS2画分（ 図1）で回収されたものの、散発性CJDサンプルと比較して、IPRP C少量の正常脳におけるP2画分に検出された。フルレングスとN末端 ​​切断種を含む合計PrPの約5から25パーセントのために以前に8、IPRPアカウント示されているように。 スクロースステップ勾配沈降を用いた解析では、非CJDの脳からのPrP Cのほとんどは1月3日トップ画分に回収されたが、PrPの少量のも通常は大きな凝集8（ 図を含むボトム留分9月11日に検出されたことを明らかにした2）。 PrP Scの種の多様性が鳴ったモノマーからINGは、より大きな凝集体への小さなオリゴマーは、クロイツフェルト·ヤコブ病（ 図3A）と、脳内のゲルろ過によって単離した。しかし、分子量より大きい2000 kDaの大きな凝集体の少量はまた、正常の脳の不溶性画分（ 図3C）で検出された。さらには、PrP Cの二量体および四量体のみ不溶画分にも可溶性画分（ 図3Bおよび3C）で検出されなかった。 PKおよびPNGアーゼ処理後、g5pによってキャプチャPRPはPrP97-105 8に対して1E4抗体を用いて検出した。 PrPの* 20と呼ばれる三PK耐性コアフラグメントは、PrP * 19、とPrP * 7〜20 kDaで、〜19 kDaおよび〜7 kDaであった（ 図4、左パネル）に移行する場合、検出された。 1E4抗体は、配列identを持つ合成ペプチドとプレインキュベートしたときただし、プリオンは検出されなかった1E4によって検出されたバンドがPrP断片であることを示す1E4エピトープへのiCal（ 図4、中央のパネル）、。さらに、抗C抗体は約18 kDaの移行二つの異なるPrPの断片が明らかになった（PRP * 18）とPrPに加え〜12から13 kDaの（PrP-CTF12/13）、* 20（ 図4、右パネル）。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/3788/3788fig1.jpg" /> 図1 IPRP CとIPRP Scの検出。 1時間37℃で総反応容量の1/10でPNGアーゼFで処理した後、タンパク質、全長またはN-末端（S2とP2）の可溶性および不溶性画分にPrPの種を切り捨て孤立から糖鎖を除去する正常コントロール（CTL）および散発性CJD（SCJD）から脳試料における超遠心分離によりPrP23-40（中央のパネル）に対してPrP106-112（左パネル）、抗Nに対して3F4で検出され、されたのPrPに対する抗C220から231（右パネル）。大量がS2に存在しているのに対し、CTLのサンプルでは、​​PrPの少量は、P2で検出された。これとは対照的に、多くのPRPはSCJDサンプルのS2よりもP2で検出された。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/3788/3788fig2.jpg" /> 図2：蔗糖段階勾配におけるPrPの沈降。非CJDの脳試料S1の1〜11個々の画分におけるPrPはウェスタン3F4とブロッティングにより検出した。のPrP Cのほとんどは1月3日トップ画分に検出されたが、PrPの少量は、ボトム留分9月11日に観察された。また、上部と下部からPrPのバンドパターンが異なっている：底画分で回収したPrPが支配下のバンドを持っていながら、一番上の画分に回収PRPが支配的な上部のバンドを持っています。 PK処理の PrP Sc をブロットの右側のコントロールとして読み込まれました。 <iミリグラムのalt = &quot;図3は&quot; src = &quot;/ files/ftp_upload/3788/3788fig3.jpg&quot; /&gt; 図3可溶性および不溶性のPrP Cのオリゴマーの検出。正常なヒトの脳からの可溶性および不溶性のPrP Cは、それぞれ、超遠心分離により分離し、ゲルろ過を行った。個々の画分の分子の大きさは分子量マーカーのグループを実行することにより測定した。 SCJD脳試料から（A）の PrP Scの種 。 PrPの種の2つの集団が検出されました：ゲルろ過画分49 - 27から33分画が大きな凝集体を含んでいるのに対し、65は、単量体および小さいオリゴマーが含まれています。正常対照の可溶性画分（S2）は（B）と不溶性画分（P2）（C）からのPrP Cの種が検出された。 PRPは3F4抗体でプローブした。 PrPの二量体（フラクション55）、テトラマー（フラクション51）はP2でなく、正常な脳samplのS2だけでなく検出されたES（BとC）。大きな凝集のみ正常サンプルのP2（C）が検出された。 <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/3788/3788fig4.jpg" /> 図4通常の人間の脳からg5p富む製剤中の様々なPK耐性IPRP断片の検出。 g5pによって豊かにサンプル（左パネル）1E4プロービングブロッティング前西にPKおよびPNGアーゼFで処理し、1E4は1E4エピトープ（中央パネル）、および抗Cと同一の配列を持っていた合成ペプチドとプレインキュベート（右パネル）。 1E4は、PrP * 20は、PrP * 19、とPrP * 7（左パネル）と呼ばれる3 PK耐性PrPの断片を検出しました。ペプチドで1E4のブロッキングした後、何のPrP resは 1E4で検出されたバンドがPrP断片であることを示す、（中央のパネル）は検出されなかった。抗Cは、PrP * 18および/ ​​PRP-CTF12と呼ばれる2さらにPK耐性PrPの断片が明らかになったPrPの* 20に加えて13。

<ol><li>Prusiner, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prions.+Proc%5BTitle%5D)+AND+%22Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Prions. Proc.</a> Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95, 13363-13383 (1998).</li>
<li>Oesch, B., Westaway, D., Wälchli, M., McKinley, M. P., Kent, S. B. H., Aebersold, R., Barry, R. A., Tempst, P., Teplow, D. B., Hood, L. E., Prusiner, S. B., Weissmann, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+cellular+gene+encodes+scrapie+PrP+27-30+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A cellular gene encodes scrapie PrP 27-30 protein.</a> Cell. 40, 735-746 (1985).</li>
<li>Bolton, D. C., McKinley, M. P., Prusiner, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+protein+that+purifies+with+the+scrapie+prion%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Identification of a protein that purifies with the scrapie prion.</a> Science. 218, 1309-1311 (1982).</li>
<li>Prusiner, S. B., McKinley, M. P., Bowman, K. A., Bolton, D. C., Bendheim, P. E., Groth, D. F., Glenner, G. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scrapie+prions+aggregate+to+form+amyloid-like+birefringent+rods%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Scrapie prions aggregate to form amyloid-like birefringent rods.</a> Cell. 35, 349-358 (1983).</li>
<li>Hope, J., Morton, L. J., Farquhar, C. F., Multhaup, G., Beyreuther, K., Kimberlin, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+major+polypeptide+of+scrapie-associated+fibrils+%28SAF%29+has+the+same+size%2C+charge+distribution+and+N-terminal+protein+sequence+as+predicted+for+the+normal+brain+protein+%28PrP%29%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">The major polypeptide of scrapie-associated fibrils (SAF) has the same size, charge distribution and N-terminal protein sequence as predicted for the normal brain protein (PrP).</a> EMBO J. 5, 2591-2597 (1986).</li>
<li>Prusiner, S. B., Groth, D. F., Bolton, D. C., Kent, S. B., Hood, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+and+structural+studies+of+a+major+scrapie+prion+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Purification and structural studies of a major scrapie prion protein.</a> Cell. 38, 127-134 (1984).</li>
<li>Hall, D., Edskes, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silent+prions+lying+in+wait%3A+a+two-hit+model+of+prion%2Famyloid+formation+and+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Silent prions lying in wait: a two-hit model of prion/amyloid formation and infection.</a> J. Mol. Biol. 336, 775-786 (2004).</li>
<li>Yuan, J., Xiao, X., McGeehan, J., Dong, Z., Cali, I., Fujioka, H., Kong, Q., Kneale, G., Gambetti, P., Zou, W. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insoluble+aggregates+and+protease-resistant+conformers+of+prion+protein+in+uninfected+human+brains%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Insoluble aggregates and protease-resistant conformers of prion protein in uninfected human brains.</a> J. Biol. Chem. 281, 34848-34858 (2006).</li>
<li>Yuan, J., Dong, Z., Guo, J. P., McGeehan, J., Xiao, X., Wang, J., Cali, I., McGeer, P. L., Cashman, N. R., Bessen, R., Surewicz, W. K., Kneale, G., Petersen, R. B., Gambetti, P., Zou, W. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accessibility+of+a+critical+prion+protein+region+involved+in+strain+recognition+and+its+implications+for+the+early+detection+of+prions%5BTitle%5D)+AND+%22Cell.+Mol.+Life+Sci%22%5BJournal%5D)">Accessibility of a critical prion protein region involved in strain recognition and its implications for the early detection of prions.</a> Cell. Mol. Life Sci. 65, 631-643 (2008).</li>
<li>Zou, W. Q., Zheng, J., Gray, D. M., Gambetti, P., Chen, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibody+to+DNA+detects+scrapie+but+not+normal+prion+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Antibody to DNA detects scrapie but not normal prion protein.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 1380-1385 (2004).</li>
<li>Gambetti, P., Dong, Z., Yuan, J., Xiao, X., Zheng, M., Alshekhlee, A., Castellani, R., Cohen, M., Barria, M. A., Gonzalez-Romero, D., Belay, E. D., Schonberger, L. B., Marder, K., Harris, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+human+disease+with+abnormal+prion+protein+sensitive+to+protease%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Neurol%22%5BJournal%5D)">A novel human disease with abnormal prion protein sensitive to protease.</a> Ann. Neurol. 63, 697-708 (2008).</li>
<li>Zou, W. Q., Puoti, G., Xiao, X., Yuan, J., Qing, L., Cali, I., Shimoji, M., Langeveld, J. P., Castellani, R., Notari, S., Crain, B., Schmidt, R. E., Geschwind, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variably+protease-sensitive+prionopathy%3A+A+new+sporadic+disease+of+the+prion+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Variably protease-sensitive prionopathy: A new sporadic disease of the prion protein.</a> Ann. Neurol. 68, 162-172 (2010).</li>
<li>Zou, W. Q., Xiao, X., Yuan, J., Puoti, G., Fujioka, H., Wang, X., Richardson, S., Zhou, X., Zou, R., Li, S., Zhu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amyloid-beta42+interacts+mainly+with+insoluble+prion+protein+in+the+Alzheimer+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Amyloid-beta42 interacts mainly with insoluble prion protein in the Alzheimer brain.</a> J. Biol. Chem. 286, 15095-15105 (2011).</li>
<li>Zou, W. Q., Colucci, M., Gambetti, P., Chen, S. G. Characterization of prion proteins. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aZou%2C+WQ+%22Methods+in+Molecular+Biology-Neurogenetics%3A+Methods+and+Protocols%22">Methods in Molecular Biology-Neurogenetics: Methods and Protocols</a>. Potter, N. T. , Humana Press Inc. Totowa. 305-314 (2002).</li>
<li>Tzaban, S., Friedlander, G., Schonberger, O., Horonchik, L., Yedidia, Y., Shaked, G., Gabizon, R., Taraboulos, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protease-sensitive+scrapie+prion+protein+in+aggregates+of+heterogeneous+sizes%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Protease-sensitive scrapie prion protein in aggregates of heterogeneous sizes.</a> Biochemistry. 41, 12868-12875 (2002).</li>
</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

ここで報告アプローチの組み合わせは、通常の人間の脳から一貫して不溶性のPrP Cの集合体と水溶性のPrP Cのオリゴマーを分離します。 1時間100,000×gで遠心分離は広く水溶性PrP Cが14から不溶性のPrP Scの分離のために使用されてきた古典的な方法です。それが効率的ですが、注意事項の一つは、遠心分離後の上澄み液（S2）を引っ張る時の汚染を避けるためです。 IPRP Cのゲル更新のPrP Cのそれとは異なっているので、それはP2画分に検出されたPRPはS2の汚染に起因するとは考えにくい。ショ糖密度勾配沈降アッセイは、その密度、大きさや形状15に基づいて、様々なPrP Scの種を分離するために用いられてきた。私たちは、分数12は、多くの場合、この画分は責任を負わないことかもしれないいくつかの粒子が含まれていることに気づいた。分数10はしばしばgreatesを含むものである分数の間でのPrP凝集体の量は8トン<s...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント（オプション） </td></tr><tr><td>フッ化フェニルメチルスルホニル</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> P7626 </td><td> 2 - プロパノールで72 mMの</td></tr><tr><td>プロテイナーゼK </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> P2308 </td><td> H 2 O中の2 mg / mlの</td></tr><tr><td> PNGアーゼF </td><td>ニューイングランドバイオラボ</td><td> MWGF200 </td><td></td></tr><tr><td>超遠心のLE-80K、ローターSW55 </td><td>ベックマン·コールター</td><td>部品番号365668、356860 </td><td></td></tr><tr><td>たSuperdex 200 HRのビーズ</td><td> GEヘルスケア</td><td> 17-1088-01 </td><td></td></tr><tr><td> AKTA FPLCシステム</td><td> GEヘルスケア</td><td> 18-1900-26 </td><td></td></tr><tr><td>分子量マーカー</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> MWGF200 </td><td>多様な</td></tr><tr><td>ダイナビーズM-280磁気ビーズ</td><td>インビトロジェン</td><td> 143から01 </td><td></td></tr><tr><td> 3F4抗体</td><td> Covance </td><td> SIG-39600 </td><td></td></tr><tr><td> 1E4抗体</td><td>セルサイエンス</td><td> M1840 </td><td></td></tr><tr><td>レディゲル15パーセントのトリス-HClプレキャストゲル</td><td>バイオ·ラッド</td><td> 345-0020 </td><td></td></tr></tbody></table>

正常なヒト脳内の可溶性および不溶性のprpオリゴマーの分離

Isolation of Soluble and Insoluble PrP Oligomers in the Normal Human Brain

プリオン病の病因において中心的なイベントには、その病原性のイソ型の PrP Sc 1にホストでエンコードされた細胞プリオンタンパク質PrP Cをの変換を伴う。 PrP Sc は界面活性剤不溶性の凝集体を形成し、PKの2月6日に部分的に耐性であるのに対し、PrP Cのは 、界面活性剤可溶性およびプロテイナーゼK（PK）消化に敏感です。 PrP ScのためにPRP Cの変換はタンパク質のβシート構造へのα-ヘリックスの構造転移を伴うことが知られている。しかし、in vivo経路でまだよくわかっていない。暫定的な内因性のPrP Scは、中間のPrP *または&quot;サイレントプリオン&quot;は、感染していない脳7で特定されていない。 生物物理学的および生化学的なアプローチの組み合わせを使用して、我々は感染していない哺乳動物の脳や神経細胞培養から不溶性のPrP Cの集計（指定IPRP C）が同定されセル8,9。ここでは、洗剤液、スクロースステップ勾配沈降、サイズ排除クロマトグラフィー、具体的には、構造的に変更されたPrPのフォーム10とPK-治療にバインド遺伝子5タンパク質（g5p）によるIPRP濃縮度の超遠心分離を含め、これらの方法の詳細な手順を説明します。これらの方法の組み合わせで不溶性の PrP ScとPrP Cの集合体でなく、通常の人間の脳からの可溶性PrP Cのオリゴマーだけを分離します。ここに記載されているプロトコルは、感染していない脳から感染した脳からの PrP ScとIPRP Cの両方を分離するために使用されているので、それらは物理化学的特徴、神経毒性、そして二つのアイソフォーム間で感染性の違いを比較する機会を提供してくれる。そのような研究は大幅に感染性病原体のタンパク質性の我々の理解を向上させます。 IPRP Cの生理および病態生理学は、現時点では不明である。特に、新たに-idのentifiedヒトプリオン病はプロテアーゼ感受性prionopathy可変と呼ばれる、私たちはIPRP C 11、12と免疫反応挙動およびフラグメンテーションを共有する新しいPrP Sc を発見した。また、我々は最近、IPRP Cがアルツハイマー病13のアミロイドβタンパク質と相互作用する主要な種であることを実証した。同じ研究では、これらのメソッドは、他の神経変性疾患に関与する非プリオンタンパク質の凝集体への応用を示唆し、アルツハイマー病13安部田集合体およびオリゴマーを分離するために使用されていました。

細胞プリオンタンパク質の新種（PRP<sup&gt; C</sup&gt;）は最近、ここで説明する方法を使用して、感染していない人間の脳で確認されています。そのうちのいくつかはまた、人間の脳から他のミスフォールドしたタンパク質凝集体を単離するのに有用であるが、これらの方法は、様々な種のPrPを単離することができる。

正常なヒト脳内の可溶性および不溶性のPrPオリゴマーの分離

プリオン病の病原性における中心的な出来事は、宿主がコードする細胞性プリオンタンパク質PrPCが、その病原性アイソフォームへと変換されることです。

本手順の目的は、正常なヒト脳のすべての靭帯から、可溶性および不溶性のプリオンタンパク質（PRP）を単離することです。まず、ヒト脳組織をホモジナイズして画分を分離し、次に、ショ糖ステップ勾配による速度沈降法を行います。次に、サイズ排除クロマトグラフィーを行います。最後に、PRPをgene five protein（G5P）でキャプチャします。最終的に、ショ糖ステップ勾配超遠心分離、サイズ排除クロマトグラフィー、およびG5PによるPRPのキャプチャを通じて、正常なヒト脳から可溶性および不溶性のPRPまたはリガメントを単離できるという結果が得られます。この手法は、クロイツフェルト・ヤコブ病、Bovine spongiform encephalopathy、および臨床的な消耗性疾患を含むプリオン病の研究における重要な疑問への回答に寄与します。さらに、プリオン疾患だけでなく、アルツハイマー病やパーキンソン病などの他の疾患における可溶性および不溶性タンパク質凝集体の単離に関する洞察を提供することができます。一般的に、これらの手法に不慣れな方は、すべての実験ステップが重要であり、細心の注意を要するため、困難に直面することがあります。SEC Fiの深度やG five Pを用いたPRPキャプチャーといったステップは、言葉で説明することが難しく、より精密な操作が行われなければ十分な結果が得られない可能性があるため、ビデオによる実演が不可欠です。脳ホモジネートを調製するには、まず電動ペッスルを用いて、凍結した脳組織100 mgに溶解バッファー100 µLを加え、氷上で組織をホモジナイズし、ドライアイスで5分間凍結させた後、再度ホモジナイズします。溶解バッファーをそれぞれ 300 µL または 800 µL 加えて、20% または 10% の全脳ホモジネートを調製します。ベンチトップ遠心機を用い、ホモジネートを 4 °C、1000 G で 10 分間遠心分離します。S SW 55 ローターを備えた遠心機を用いて、S1 分画を 4 °C、35,000 RPM で 1 時間遠心分離し、SNA を回収します。上清を清潔なチューブに移します。ウェスタンブロット用の試料を調製するため、界面活性剤不溶性ペレットを溶解バッファーに再懸濁させます。S2画分およびP2画分に50 µg/mLのproteinase Kを加え、37 °Cで1時間インキュベートします。5 mMのPMSFとSDSサンプルバッファーを加えて消化反応を停止させます。サンプルを10分間煮沸し、室温で5分間冷却します。速度沈降法を行うには、まず5 mL遠心チューブ内で、20% S1分画 450 µLと等量の2% Sarco X水を氷上で30分間インキュベートします。60%、30%、25%、20%、15%、10%のスクロースをそれぞれ0.5 mLずつ加えます。インキュベートしたS1 0.4 mLを、10〜60%スクロース密度の最上層にロードします。SW 55ローターを用い、チューブ上部から4°Cで48,000 RPMで1時間、ステップ勾配遠心分離を行います。283 µLずつの等量分画を12分画回収します。各分画から20 µLを分取し、等量のSDSサンプルバッファーを加えます。SDS-PAGEゲルのサンプルを調製します。サンプルを10分間煮沸し、その後4分間冷却します。サンプルを1000 Gで1分間遠心分離します。その後、ボルテックスで混合し、プリキャストのサイズ排除ゲルにロードします。PRP分子のオリゴマー状態を決定するためにクロマトグラフィーを用います。まず、7種類の個別の分子量マーカーを200 µLずつ、Superdex 200 HRビーズを用いた1×30カラムにロードすることから始めてください。ブルーデキストランの溶出量空隙容量として使用します。クロマトグラムと分画回収量から、VEのピーク溶出量を算出します。分配係数KAVを、式 KAV = (V - V zero) / (VT - V zero) を用いて算出します。検量線を作成します。タンパク質標準品のKAVを、標準品の分子量の対数に対してプロットします。次に、0.25 milliliters per minuteの流速で、S oneを200 microlitersカラムに適用します。カラムを1%cile溶解バッファーで洗浄し、フラクションコレクターを用いて0.25 mLずつ溶出させます。各フラクションから125 µLを分取し、-20 °Cで予冷した500 µLのメタノールと共に2時間インキュベートします。サンプルを4 °C、13,000 ×gで30分間遠心分離します。ペレットを20 µLのSDSサンプルバッファーで再懸濁し、10分間沸騰させます。室温まで冷却した後、15%ポリアクリルアミドゲルで分離します。標準曲線を用いて、磁気ビーズにG5P分子を結合させるために回収した各種PRP種の分子量を外挿します。100 µgのG five Pを、1 mLのPBSに含まれる350 µLのtoci活性化磁気ビーズとともに、37 °Cで20時間インキュベートします。外部磁石を用いてG five Pビーズをエッペンドルフチューブの側壁に集め、溶液を除去します。非特異的結合をブロックするため、ビーズを1 mLの0.1% BSA含有PBSで3回洗浄します。G5P結合ビーズを、0.1% BSA含有0.2 M Tris-HCl (pH 7.4) 1 mL中で、37 °Cで5時間インキュベートします。その後、ビーズを3回洗浄します。最後の洗浄液を除去し、PRPを分離するためにPBS 1 mLを加えます。S1またはP2 100 µLとG5B結合ビーズ 60 µLを、結合バッファー 1 mL中で、室温にて絶えず回転させながら3時間インキュベートします。チューブをマグネットの上に置きます。溶液を除去し、洗浄バッファーでビーズを3回洗浄します。最後の洗浄液を除去し、SDSサンプルバッファーを加えます。ビーズを95°Cで5分間加熱します。サンプルを15%プリキャストゲルにロードし、150 Vで約80分間電気泳動を行います。メンブレンを5%ミルク含有TBSTでブロッキングした後、タンパク質を70 Vで2時間かけてPVDF膜へ転写します。PRP抗体と共に室温で2時間インキュベートします。3F4、1E4、anti-Nまたはanti-Cを用います。HRP標識二次抗体でインキュベートした後、メーカーの指示に従ってメンブレンを化学発光溶液で処理し、ここに示すようにフィルムに感光させます。散在性クロイツフェルト・ヤコブ病（sCJD）のサンプルと比較して、正常脳のP2画分において少量の不溶性細胞PRPが検出されました。しかしながら、大部分はS2画分で回収されました。不溶性PRPは、フルレングスおよび末端欠損種を含む全PRPの約5〜25%を占めています。スクロースステップ勾配沈降法を用いた解析により、非CJD脳由来のPRPCの大部分は上層画分（1〜3）で回収された一方で、通常は巨大凝集体が含まれる下層画分（9〜11）からも少量のPRPが検出されたことが明らかになりました。病原性PRPまたはPRPSC種には、モノマーから多岐にわたる形態が存在します。CRUT弁やkup病を患った脳において、ゲルろ過により、より小さなリガメントとより大きな凝集体が分離されました。驚くべきことに、2000 kilodaltonsを超える分子量を持つ大きな凝集体が少量、正常な脳の不溶性画分からも検出されました。さらに、PRPCのダイマーおよびテトラマーは、不溶性画分だけでなく、不溶性画分においても検出されました。PKおよびPNGase処理後、G5Pによって捕捉されたPRPを、PRP 97 1 0 5 3に対する1E4抗体を用いて検出した。PRP*20、PRP*19、およびPRP*7と称されるPK耐性コアフラグメントが、それぞれ20 kDa、19 kDa、および7 kDaの位置に検出された。しかし、1E4抗体を1E4エピトープと同一の配列を持つ合成ペプチドと事前にインキュベートすると、PRPは検出されませんでした。このことは、1E4によって検出されたバンドがPRP断片であることを示しています。抗C抗体は、約18 kilodaltonsおよび約12 to 13 kilodaltons付近に移動する2つの異なるPRP断片を検出しました。PRP ETE 20法に加えて。この手法は、適切に実施すれば4日間で完了させることができます。このビデオを視聴することで、ヒト脳下部における可溶性および不溶性のPRPポリマーを、その形成後に分離する方法について十分に理解できるはずです。この手法は、脳内におけるPIPの確証情報を探索するための、その運命に関する研究への道を開きました。

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正常なヒト脳内の可溶性および不溶性のPrPオリゴマーの分離

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