Name: 可変角度全内部反射蛍光顕微鏡（VA-TIRFM）の際に、細胞接着のナノトポロジー (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-02T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 14 s
Description: 学ぶVA-TIRFMを用いた細胞接着のナノトポロジー測定法。ガラススライド上で細胞を培養し、蛍光マーカーで標識して複数角度から撮影することで、ナノメートル精度で細胞と基質間の距離を解析し、がん細胞と非がん細胞の接着差を明らかにする。

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著者らは、土地、バーデン·ヴュルテンベルク州とアオイ連合ユーロぺフォンエリーゼのためダイエオリエEntwicklungに感謝-資金ZAFH光子N、無資金研究助成金のためにエリーゼのためBundesministerium Bildung undのForschung（BMBF）のために。 1792C08ならびにプロジェクト &quot;Auramiを&quot;資金調達のためのバーデン·ヴュルテンベルク·財団社。

1。細胞の播種およびインキュベーション<ol><li>シード個々の細胞、 例えば U373-MGまたはU-251-MGの神経膠芽腫細胞をスライドガラス上に100細胞/ mm 2の典型的な密度にする（ 例えば RPMI-1640、10％ウシ胎児血清を添加した培地中で4872時間のためにそれらを育てると抗生物質）で37℃、5％CO 2のインキュベーターを用いた。 </li><li> 8μM（培地中の）4、または細胞質マーカーの濃度で60分間適用例 6-ドデカノイル-2 -ジメチルナフタレン（laurdan）、膜マーカーで細胞をインキュベートし、 例えばカルセインacetomethlyesterは、少なくとも40分間印加4,5;5μMの3、または光増感膜関連の濃度は、 例えば、プロトポルフィリンIXは、その前駆体5 -アミノレブリン酸（1mMの5-ALA）を用いて4時間のインキュベーションの際に誘導した。 </li><li>蛍光顕微鏡の前に緩衝生理食塩水（PBS）培地またはリン酸で細胞を洗浄。&lt;/ LI&gt; </ol> 2。 VA-TIRFM <ol><li>正立顕微鏡、 例えばツァイスAxioplanを使用しており、文献に記載されているように、照明装置によって、そのコンデンサーを交換してください。半球状または光学的にオブジェクトをスライドします （ 図1を参照）に結合された半円筒形のガラスプリズムで3。 </li><li>その試料の表面（テレセントリック瞳孔線）上の平行ビームでガラスプリズム、さらに光学部品（ 例えば凹面鏡）による撮影後、再び結果並列コリメートされたレーザービームを使用しています。電場ベクトルが入射面に垂直偏光であるように注意してください。 </li><li>試料面に結像されると発生率（オブジェクトの線）の可変角度で試料に照射されるコンデンサーの内部に位置調整可能なミラーを使用しています。 goniometric測定3によって決定された調整可能なミラーは、それぞれの位置は入射よく定義された角度に対応するステップモータによって駆動することができる</&gt;（商標）。 </li><li> ΘC = 61.3°ガラス-水移行のための固定値として臨界角を使用して調整可能なミラーの角度位置のキャリブレーションを行います。 Θcは蛍光色素（ 例えば 1mMのフラビンモノヌクレオチド、FMN）を水に溶解させ、Θの変化に応じて可視化することができる。でミラーの位置Θ=ΘCミラー位置決めプログラムに格納されています。 </li><li>温度、ゲイン、録音時間と変速速度を含むカメラのパラメータを指定します（バック点灯アンドールIXON EMCCD、DV887DC、アンドールテクノロジー、ベルファースト、イギリス6）、設定します。 </li><li>適切な倍率と優先的に適度な開口数（ 例えば、40×/ 63×0.75 / 0.90水浸）の対物レンズを使用し、顕微鏡内のオブジェクトのスライドをローカライズします。ガラスプリズムと試料の光学的接触を確実にするためにイマージョンオイルを使用しています。の変動により、同一試料の蛍光画像を記録照明の角度（Θ≥ΘΘCとCセル-ガラス界面のための64.5°に対応）。 0.5°または1°刻みで66°-74°の角度範囲が推奨されます。蛍光検出のための適切なロングパスまたはバンドパス·フィルタを使用します。 </li></ol> 3。データ解析<ol><li>様々な角度Θと同様、カメラの設定（背景差別のために）、励起波長とガラス（N 1 = 1.52）と細胞（N 2 = 1.37）に対する屈折率で記録された画像（ 例えば 、ASCIIフォーマットで）読み込む評価プログラム（; NanoCell LabViewの）に挿入します。各パラメータセット浸透深さd（Θ）と透過率のためにTは（Θ）は自動的に計算されます。 </li><li>細胞 - 基質距離Δは式（5）（膜マーカー）または式（4）（細胞質マーカー）によると、不均質を有する個々の画像の評価に使用される画像を選択照明（顕E、G。ストライプ）が除外されることがあります。 </li><li>細胞 - 基質トポロジーの画像を計算して表示するのに適したカラーコードを選択します。 図2に示すように、個々の画素の評価プロファイルの間に、表示させることができます。これらのプロファイルは、フィットの質の指標として用いることができる。 </li><li>評価プロトコルを格納します。 </li></ol> 4。代表的な結果代表的な実験は、親切教授ヤンモレンハウアー、分子腫瘍学専攻、南デンマーク大学、オーデンセによって供給される遺伝子組み換えU251-MGの神経膠芽腫細胞を用いて行われる。それらのU251細胞のサブクローン2腫瘍抑制遺伝子でTP53またはPTENはテトオン誘導性発現系、これらの細胞が減少し腫瘍形成の可能性を発揮し、より少ない悪性とみなすことができること等を用いて過剰発現されています。抑制遺伝子のない高悪性U251-MG細胞を対照として用い、およびU251-アールMGは野生型細胞は、さらに比較のために役立つ。 （;：391 nmで、パルスエネルギー：12 PJ、繰り返し率：波長ドライバーPDL 800-B Picoquant、ベルリン、ドイツでLDH400 40 MHz）をピコ秒光パルスの準連続シリーズを発するレーザダイオードを励起光源として使用されます。 図において、活性化されたTP53腫瘍抑制遺伝子を持つとlaurdan（8μM、60分）と一緒にインキュベートU251-MGの神経膠芽腫細胞の3 TIRFM画像は、66.0°の入射角69.0°、73.0°の侵入深さに対応するために描かれているそれぞれ約140nm、75 nmおよび60 nmのエバネセント電磁界。侵入深さの蛍光の減少に伴って強度が低下（スケールを参照）、細胞のより表面的な部位（その辺で例えばフォーカルコンタクト）に由来する。細胞-基質間距離（0から600 nmの範囲のカラーコードによって図3dで可視化）に強く間のセルにわたって変化LY数ナノメートル（白黄色）と250から300ナノメートル（暗赤色）、 すなわち焦点連絡先やより大きなセル基板の距離はすぐ近くにあります。細胞-基質距離はU251-MG制御と80から100ナノメートル（黄色の典型的な値を持つ野生型細胞のためではなく、一定である同じことが、活性化抑制遺伝子PTEN（ 図4d）とU251-MGの神経膠芽腫細胞のために保持します。 図4b ）と150から200ナノメートル（橙赤色、 図4a）。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/4133/4133fig1.jpg" /> 図1：正立顕微鏡のVA-TIRFM用の照明装置。ステップモータにより駆動される調整可能なミラーが±0.25°の角度分解能を可能にします。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/4133/4133fig2.jpg" /> 1つのPIXについては、 図2。評価プロファイルEL（図）。 LN [I、F / Tは（Θ）] 1 / D（Θ）の関数としてプロットすると、傾きは、細胞-基質距離Δを表しています。このスロープは、一般的に±10％程度の精度で決定されます。つの値が - 不均一な照明に起因する - のマークが付けられ、評価から除外されました。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/4133/4133fig3.jpg" /> 照明の様々な角度（AC）で記録され、示されて0から600 nmの範囲で細胞-基質間の距離。laurdan（60分8μM）とのインキュベーションにより活性TP53抑制遺伝子とU251-MGの神経膠芽腫細胞の図3 TIRFM画像カラーコードにより、（d）は、励起波長：391 nmで検出：≥420 nmで、画像サイズ：210×210μmのμmの<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4133/4133fig3large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するには、ここをクリックしてください</a> 。 図4に、カラーコードで示さ0から600 nmの範囲でU251-MGのglioblatoma細胞の細胞-基質間距離;（a）は野生型（b）管理;活性化抑制遺伝子TP53と（c）の細胞と、（d）活性化抑制遺伝子PTENと細胞;励起波長：391 nmで検出：≥420 nmで、画像サイズ：210×210μmのμmの<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4133/4133fig4large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するには、ここをクリックしてください</a> 。

<ol><li>Gingell, D., Todd, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interference+reflection+microscopy%3A+a+quantitative+theory+of+image+interpretation+and+its+application+to+cell-substratum+separation+measurement%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Interference reflection microscopy: a quantitative theory of image interpretation and its application to cell-substratum separation measurement.</a> Biophys. J. 26, 507-526 (1979).</li>
<li>Reichert, W. M., Truskey, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Total+internal+reflection+fluorescence+%28TIRF%29+microscopy+%28I%29+Modelling+cell+contact+region+fluorescence%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Total internal reflection fluorescence (TIRF) microscopy (I) Modelling cell contact region fluorescence.</a> J. Cell Sci. 96, 219-230 (1990).</li>
<li>Stock, K., Sailer, R., Strauss, W. S. L., Lyttek, M., Steiner, R., Schneckenburger, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variable-angle+total+internal+reflection+fluorescence+microscopy+%28VA-TIRFM%29%3A+realization+and+application+of+a+compact+illumination+device%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Microsc%22%5BJournal%5D)">Variable-angle total internal reflection fluorescence microscopy (VA-TIRFM): realization and application of a compact illumination device.</a> J. Microsc. 211, 19-29 (2003).</li>
<li>Wagner, M., Weber, P., Strauss, W. S. L., Lassalle, H. -P., Schneckenburger, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanotomography+of+cell+surfaces+with+evanescent+fields%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Opt.+Technol%22%5BJournal%5D)">Nanotomography of cell surfaces with evanescent fields.</a> Adv. Opt. Technol. 2008, 254317(2008).</li>
<li>Lassalle, H. -P., Baumann, H., Strauss, W. S. L., Schneckenburger, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-substrate+topology+upon+ALA-PDT+using+variable-angle+total+internal+reflection+fluorescence+microscopy+%28VA-TIRFM%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Environ.+Pathol.+Toxicol+Oncol%22%5BJournal%5D)">Cell-substrate topology upon ALA-PDT using variable-angle total internal reflection fluorescence microscopy (VA-TIRFM).</a> J. Environ. Pathol. Toxicol Oncol. 26, 83-88 (2007).</li>
<li>Coates, C. G., Denvir, D. J., McHale, N. G., Thornbury, K. D., Hollywood, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimizing+low-light+microscopy+with+back-illuminated+electron+multiplying+charge-coupled+device%3A+enhanced+sensitivity%2C+speed+and+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Opt%22%5BJournal%5D)">Optimizing low-light microscopy with back-illuminated electron multiplying charge-coupled device: enhanced sensitivity, speed and resolution.</a> J. Biomed. Opt. 9, 1244-1252 (2004).</li>
<li>Gustafsson, M. G. L., Shao, L., Carlton, P. M., Wang, C. J. R., Golubovskaya, I. N., Cande, W. Z., Agard, D. A., Sedat, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+resolution+doubling+in+wide-field+fluorescence+microscopy+by+structured+illumination%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional resolution doubling in wide-field fluorescence microscopy by structured illumination.</a> Biophys. J. 94, 4957-4970 (2008).</li>
<li>Betzig, E., Patterson, G. H., Sougrat, R., Lindwasser, O. W., Olenych, S., Bonifacino, J. S., Davidson, M. W., Lippincott-Schwartz, J., Hess, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+intracellular+fluorescent+proteins+at+nanometer+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Imaging intracellular fluorescent proteins at nanometer resolution.</a> Science. 313, 1642-1645 (2006).</li>
<li>Hess, S. T., Girirajan, T. P. K., Mason, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultra-high+resolution+imaging+by+fluorescence+photoactivation+localization+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Ultra-high resolution imaging by fluorescence photoactivation localization microscopy.</a> Biophys. J. 91, 4258-4272 (2006).</li>
<li>Rust, M. J., Bates, M., Zhuang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sub-diffraction-limit+imaging+by+stochastic+optical+reconstruction+microscopy+%28STORM%29%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Meth%22%5BJournal%5D)">Sub-diffraction-limit imaging by stochastic optical reconstruction microscopy (STORM).</a> Nat. Meth. 3, 793-796 (2006).</li>
<li>Willig, K. I., Harke, B., Medda, R., Hell, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((STED+microscopy+with+continuous+wave+beams%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Meth%22%5BJournal%5D)">STED microscopy with continuous wave beams.</a> Nat. Meth. 4, 915-918 (2007).</li>
<li>Schneckenburger, H., Wagner, M., Weber, P., Bruns, T., Richter, V., Strauss, W. S. L., Wittig, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multi-Dimensional+Fluorescence+Microscopy+of+Living+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biophotonics%22%5BJournal%5D)">Multi-Dimensional Fluorescence Microscopy of Living Cells.</a> J. Biophotonics. 3, 143-149 (2011).</li>
<li>Dougherty, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photosensitizers%3A+therapy+and+detection+of+malignant+tumours%5BTitle%5D)+AND+%22Photochem.+Photobiol%22%5BJournal%5D)">Photosensitizers: therapy and detection of malignant tumours.</a> Photochem. Photobiol. 45, 879-889 (1987).</li>
<li>Axelrod, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-substrate+contacts+illuminated+by+total+internal+reflection+fluorescence%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell-substrate contacts illuminated by total internal reflection fluorescence.</a> J. Cell Biol. 89, 141-145 (1981).</li>
<li>Ölveczky, B. P., Periasamy, N., Verkman, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+fluorophore+distribution+in+three+dimensions+by+quantitstive+multiple+angle+total+internal+reflection+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Mapping fluorophore distribution in three dimensions by quantitstive multiple angle total internal reflection fluorescence microscopy.</a> Biophys. J. 73, 2836-2847 (1997).</li>
<li>Axelrod, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+imaging+of+surface+fluorescence+with+vry+high+aperture+microscope+objectives%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Opt%22%5BJournal%5D)">Selective imaging of surface fluorescence with vry high aperture microscope objectives.</a> J. Biomed. Opt. 6, 6-13 (2001).</li>
<li>Schneckenburger, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Total+internal+reflection+microscopy%3A+technical+innovations+and+novel+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Total internal reflection microscopy: technical innovations and novel applications.</a> Curr. Opin. Biotechnol. 16, 13-18 (2005).</li>
</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

メソッドは、ナノメートルの精度で細胞 - 基質間の距離を測定するために記述されている。現在、 例えば構造化照明7または単一分子検出8-10と同様に誘導放出の枯渇に基づく超解像顕微鏡の方法、（STED）顕微鏡11は、かなりの関心が持たれている。これらの技術はいずれも、しかし、50 nm以下の軸方向の分解能を可能にしていません。また、50100 W / cm 2のかなり高い放射照度は、単一分子方法とSTED顕微鏡のために3,000人以上のW / cm 2のために必要とされる。これは桁違いに太陽放射照度（約100mW / cm 2）を超えて、生きた細胞になるように急速な損傷が発生する可能性があります。 VA-TIRFM実験では、しかし、放射照度は、セル12、生体に害なしで数分または数時間の露光時間を可能にして、20未満のMW / cm 2に限定することができるように、MULとの長期的な実験tipleエクスポージャーが十分に可能に表...

屈折率n 1の媒質中を伝搬する光ビームが屈折率n 2の第2の媒質へのインターフェースを満たしたときに、&lt;nの1、全反射は、臨界角より大きい発生率Θのすべての角度で発生ΘC =アークサイン（N 2 / N 1）。全く反映されているにもかかわらず、入射光ビームは、I（Z）= I 0 EZ / D（Θ）に従ってインターフェイスから垂直距離zで指数関数的に減衰し、第二の媒体に浸透エバネセント電磁界を彷彿とさせます。で与えられるように私は（z）は、波長λにおける浸透深さに電磁場の強度に対応するとd（Θ） D（Θ）=（λ/4π）（N 1 2罪Θ2 - N 2）-1 / 2 文献1,2に報告されているように、私は0 </sUB&gt;は入射光の強度に対応して、私はeが透過率T（Θ）と比n 2 / nは1で乗算。この光の電場ベクトルが入射面（入射と反射ビームによって張ら平面をIE）に対して垂直に偏光である場合は、この透過率は次式で与えられます。 T（Θ）= 4 cosの2Θ/ [1 - （N 2 / NL 1）2] TIRFM測定で検出された蛍光強度は、光吸収は、サンプルのすべての層の上に統合されており、検出Ωの立体角と同様に、関連する色素の蛍光量子収率ηと乗算する必要があります。以前に3報告したように、この強度は次のように記述することができます I F（Θ）=（Θ）OC（z）での電子のz / D（Θ）DZ もし独立したfはすべての要因<html>蛍光色素の濃度c（z）はほぼ一定であるとみなされた場合ROM入射角Θと座標zは実験定数Aの式（3）内に含まれているが、解析的に解くことができます -いずれかのすべての座標のz≥Δ、界面からの距離Δを有する細胞の細胞質内に例えばで。この場合、積分はz =Δがために、Z =∞の結果から計算しなければならない 私はF = A C T（Θ）はD（Θ）のe-Δ/ D（Θ） -インタフェースから距離Δに位置するT / 2とz =Δ+ T / 2、厚さtの薄い層内すなわち 、 例えば細胞膜-またはz =Δの間。この場合、蛍光強度は次のように計算できます 私はF = A C T（Θ）TE-Δ/ D（Θ）は 、 トンはΔに比べて小さい場合。 ENT &quot;&gt;蛍光強度の画像は私がFを Θ、およびln IF可変角度（I、F / T d）は（式4）のために記録されている場合、式（4）及び（5）細胞-基質距離からΔは、計算することができます。またはLN（I、F / T）（式5）は、これらの角度の1 / dの関数として評価されます。本稿で用いる膜マーカーlaurdan（S.以下）については評価は式5に準じて行った。 画像収集と評価が必要では、以前に報告したように3 - サンプルの上に励起光の均一な分布、 - 2層モデルの妥当性（基質と細胞質の屈折率n 1とn 2と、それぞれ）。原形質膜が非常に薄い場合には、保持しており、細胞外培地（セルと基板との間）の層は、入射光の波長に比べて小さい場合。 加えて、適度な開口数（通常≤0.90）顕微鏡対物レンズのは、誘電体の界面近傍界での放射の異方性に起因する輝度のばらつきを避けるために有利である。

<table border="1"><tbody><tr><td> 名前 </td><td> 会社 </td><td> タイプ </td><td> 注釈 </td></tr><tr><td>インキュベーター</td><td>ヌンク</td><td>ヌンクCellstar QM1300SVBA </td><td></td></tr><tr><td>層流</td><td>セーフHolten </td><td> S2010 1.2 EN GG 1LN </td><td></td></tr><tr><td> DMEM +10％FCS + 1％ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td> BIOCHROM </td><td></td><td>培養媒体</td></tr><tr><td>ガラスのオブジェクトのスライド</td><td> Marienfeld </td><td>純粋な白ガラス</td><td>使用される特殊なクリーニング手順</td></tr><tr><td> 6-ドデカノイル-2 - ジメチルナフタレン（laurdan） </td><td>分子プローブ</td><td></td><td>蛍光マーカー（ストック溶液：エタノールさ2mm） </td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>カールツァイス</td><td> Axioplan 1 </tD&gt; <td></td></tr><tr><td>半導体レーザー</td><td> PicoQuant </td><td>ドライバのPDL 800-BとLDH 400 </td><td>波長：391 nmの</td></tr><tr><td>シングルモード光ファイバシステム</td><td>点光源</td><td> kineFlex </td><td>平行光学系と一緒に使用</td></tr><tr><td> EMCCDカメラ</td><td>アンドール</td><td> DV887DC </td><td>戻る照らさカメラ</td></tr></tbody></table>

可変角度全内部反射蛍光顕微鏡（va-tirfm）の際に、細胞接着のナノトポロジー

Nanotopology of Cell Adhesion upon Variable-Angle Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy (VA-TIRFM)

表面トポロジー、基板上に成長する細胞の例は 、可変アングル全内部反射蛍光顕微鏡（VA-TIRFM）によってナノメートルの精度で決定されます。細胞は透明なスライド上で培養し、均一にそれらの形質膜に分布する蛍光マーカーと共にインキュベートする。照明はエバネセント電磁界の様々な侵入深さを持つ内部全反射（TIR）の可変角度の下で平行レーザビームによって発生します。約10異なる角度で照射により蛍光画像の記録は、数ナノメートルの精度で細胞 - 基質の距離を計算することを可能にする。種々の細胞株、 例えばがん細胞と少ない悪性細胞との間の密着性の違いは、このように決定されています。また、化学的又は光線力学的治療の際の細胞接着の変化の可能性を調べることができます。超解像顕微鏡光曝露の他の方法と比較して保持されます生きている細胞の非常に小さい、無被害が発生することが予想されています。

基板上への細胞接着のトポロジーは、可変角度全内部反射蛍光顕微鏡（VA-TIRFM）によってナノメートルの精度で測定されます。

可変角度全内部反射蛍光顕微鏡（VA-TIRFM）の際に、細胞接着のナノトポロジー

基質上で成長する細胞などの表面トポロジーは、可変角全内部反射蛍光...により、ナノメートル精度の精度で決定されます。

本手順の全体的な目的は、基板上の細胞接着のトポロジーをナノメートル精度で測定することです。まず、透明なガラススライド上で細胞を培養し、蛍光マーカーとともにインキュベートすることでこれを達成します。次に、顕微鏡の可動ミラーの角度位置を校正し、その位置をミラーポジショニングプログラムに保存します。次のステップでは、約10種類の異なる角度で照射し、蛍光画像を記録します。最終ステップでは、数ナノメートルの精度で細胞と基板との距離を算出します。最終的に、基板上の細胞接着のトポロジーの結果を用いて、例えばがん細胞と低悪性度細胞との間などの、さまざまな細胞株における接着の違いを示します。共焦点顕微鏡などの既存の手法に対するこの技術の主な利点は、実際の分解能がわずか数ナノメートルの範囲にあることです。この手法は細胞膜に関する知見を提供できるだけでなく、小型の小胞やナノ材料などの他の系にも適用可能です。実験のデモンストレーションを行うのは、細胞サンプルの調製を担当するポストドクターのPetraと、実験の操作を担当するエンジニアのMichael Wagnerです。可変角全内部反射蛍光顕微鏡用の細胞を調製するには、10%胎児牛血清と抗生物質を添加した培地を用いて、ガラススライド上に1平方ミリメートルあたり100個の密度で個々の細胞を播種します。その後、37 °C、5% CO2のインキュベーター内で細胞を72時間培養します。次に、培養液中で8 µMの濃度の蛍光膜マーカー6-DAPI（10,11-dimethyl amino naphthalene หรือ lorane）を細胞に適用し、蛍光顕微鏡観察の前に60分間インキュベートします。PBSで細胞を洗浄し、バッファー溶液を目的スライド上にピペットで滴下して培地を除去した後、目的スライドの背面からバッファー溶液を拭き取ります。可変角度での観察には、背面照明およびAxion EMCCDカメラを搭載したZeiss Axio planなどの正立顕微鏡を使用します。T-I-R-F-Mでは、コンデンサーを、物体スライドに光学的に結合された半円筒形ガラスプリズムを備えたカスタムメイドの照明装置に置き換えます。レーザービームはコリメートされたシングルモードファイバーから入射し、ガラスプリズムおよびその他の光学コンポーネントによって結像した後、サンプル表面で再び平行光線となります。電界ベクトルが、入射面に対して垂直に偏光していることを確認してください。この位置はファイバーの出力カプラーにマークされています。コンデンサー内部に配置され、サンプル平面に結像し、入射角または物体光の可変角度でサンプルを照射する可動ミラーを使用します。この可動ミラーは、ソフトウェアで制御されるステッピングモーターによって駆動させることができます。各位置は、goniometric測定によって決定された明確な入射角に対応しています。可動ミラーの角度位置を校正するには、1 mMのフラビンヌクレオチドなどの蛍光染料を水に溶解して使用してください。入射角の変化に伴う臨界角を可視化するために、ガラス-水界面の臨界角である61.3度を固定値として使用し、入射角が臨界角に等しくなるミラーの角度位置をミラー位置決めプログラムに保存します。カメラソフトウェアを使用して、温度ゲイン、記録時間、シフト速度を含むEMCCDカメラのパラメータを設定します。サンプルの光学的な接触を確保するために、浸漬油を使用してください。ガラスプリズムを用いて、細胞に適した倍率と適度な開口数（NA）を持つ対物レンズを選択します。顕微鏡で物体を可視化するには、蛍光検出に適したロングパスフィルターまたはバンドパスフィルターを使用してください。照明角度を変化させながら、同一サンプルの蛍光画像を記録します。入射角は、臨界角と同等かそれ以上の角度にする必要があります。セルとガラスの界面における臨界角が64.5度に相当するため、角度範囲は66度から74度とし、ステップ幅を0.5度または1度とすることが推奨されます。データ解析を開始するには、LabVIEWプログラムを使用して、さまざまな角度で記録された画像、カメラ設定、励起波長、および屈折率を読み込みます。ガラス（1.52）およびセル（1.37）の屈折率設定をインポートすることで、データを適切に評価できます。各パラメータセットについて、手順を成功させるために、浸透深さと透過係数が自動的に算出されます。画像は慎重に記録し、解析用に選択することが重要です。式に従って、細胞と基材間の距離の評価に使用する画像を選択してください。膜マーカーの場合、本例に示すように、均一な照明下にある個々の画像を除外することがあります。細胞基質のトポロジー画像を算出し、評価中の表示に適したカラーコードを選択してください。個々のピクセルのプロファイルは、この図に示すように表示できます。これらのプロファイルは、フィッティングの精度の指標として利用できます。最後に、評価プロトコルを保存します。この図は、TP 53 腫瘍抑制遺伝子が活性化された U2 51 mg グリオブラストーマ細胞の全内部反射像を示しています。さまざまな入射角で記録したところ、66度（エバネッセント電磁場の浸透深さが約140 nanometersに相当）、69度（浸透深さ75 nanometersに相当）、73度（浸透深さ60 nanometersに相当）となり、浸透深さが減少しました。浸透深さが浅くなるにつれて蛍光強度は低下し、細胞の縁にあるフォーカルコンタクトなどのより浅い部位に由来するようになります。細胞と基板間の距離は、パネルDに示されているように、ここに見られる0から600 nanometersまでのカラーコードで描かれています。細胞と基板の距離は、白から黄色で示されるわずか数ナノメートルから、濃い赤色で示される250～300ナノメートルまで、細胞間で大きく異なります。これは、焦点接点とより大きな細胞・基板間距離が近接して存在していることを示しています。同様の細胞・基板間距離の変動が、腫瘍抑制遺伝子P 10が活性化されたU2 51 mg膠芽腫細胞においても算出されています。対照的に、黄色のU2 51 mgコントロール細胞およびオレンジ色から赤色で示される野生型細胞では、発生後の細胞・基質間距離はかなり一定です。この手法は、細胞・基質トポロジー分野の研究者が腫瘍細胞やレーザー治療による形態変化を探索する道を開きました。このビデオを視聴することで、生体にとって十分許容可能な低光量照射において、ナノメートル範囲の実解像度で表面を可視化する方法を十分に理解できるはずです。

nanotopology-cell-adhesion-upon-variable-angle-total-internal

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

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学ぶVA-TIRFMを用いた細胞接着のナノトポロジー測定法。ガラススライド上で細胞を培養し、蛍光マーカーで標識して複数角度から撮影することで、ナノメートル精度で細胞と基質間の距離を解析し、がん細胞と非がん細胞の接着差を明らかにする。

可変角度全内部反射蛍光顕微鏡（VA-TIRFM）の際に、細胞接着のナノトポロジー

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