2012年6月27日
堅牢な、小規模のHeLa細胞核抽出物を調製するためのプロトコルが記述されています。このプロトコルはそのような薬剤又はRNAi処理した細胞などの細胞の小集団の使用を必要とするアッセイのために貴重なものです。方法は、患者の細胞を含む遺伝子発現アッセイおよび他の細胞さまざまな種類のに適用する必要があります。
次の実験の全体的な目標は、細胞から抽出された機能的な核マシナリーを使用して遺伝子発現をアッセイすることです。これは、最初にヘラ細胞を膨潤させて収穫することによって達成されます。次に、細胞をダウンさせることでひもでつなぎ合わせ、次に遠心分離機で核をペレット化します。
核を塩抽出、濃縮、透析することで、可溶性で機能的な遺伝子発現装置を得ることができます。最終的には、核抽出物の機能性は、結合RNAポリメラーゼから転写およびスプライシングシステムへの共役で評価された転写およびスプライシング活性に基づいて評価できます。バルク核抽出物調製のような既存の方法に対するこの技術の主な利点は、この技術を使用すると、少量の細胞を使用して核抽出物を調製できることです。
まず、3枚の150mmプレートにヘラ細胞をDMEM培地にFBSと抗生物質を添加し、37°Cのインキュベーターで5%CO2の培養液を培養し、この時点で細胞が90%Coの流暢さに達するまで培養し、HELOC細胞培養物から培地を吸引し、13ミリリットルの室温で1回洗浄します。その後、プレートあたりのPBSを吸引します。PBSは、各プレートを数秒間横に置き、残りのPBSを吸引します。
次に、セルリフターを使用して細胞を各プレートの下端までこすり落とし、1.5ミリリットルのeinorチューブで細胞を引き抜きます。最後に、細胞をマイクロフージで5分間、Gの100倍、摂氏4度でペレット化します。次に、細胞ペレットからPBSを吸引し、チューブ上のグラデーションを見て、パックされた細胞体積またはPCVを推定します。
次に、PCVの2倍の量の低張緩衝液を細胞ペレットに加えます。チューブを静かに振って再懸濁します。細胞は、1000マイクロリットルのピペットで細胞懸濁液を静かに上下にピペッティングし、必要に応じて細胞クラスターを取り除きます。
次に、以前と同じ遠心分離条件下で細胞をペレット化します。遠心分離後、低張緩衝層を慎重に吸引します。細胞は膨潤し始め、細胞体積は約750〜1000マイクロリットルに増加します。
新しい低張緩衝液を最終容量1.5ミリリットルに追加し、緩衝液内の細胞を再懸濁します。又。最後に、再懸濁した膨潤細胞を氷上で10分間インキュベートし、細胞を冷やします。ダウンホモジナイザーをハイポトニックバッファーですすぎ、細胞と一緒に氷の上に置きます。
その後、キムワイプなどの繊細な作業用ワイパーを使用して、乳棒を乾かします。1000マイクロリットルの拡張マイクロピペットチップを使用して、バッファーをダウンから取り外します。次に、ピペットを使用して、冷やした腫れた細胞を下のダウンに移します。
この手順の最も難しい部分は、成功への入力です 溶解のチェック。顕微鏡でダウンするたびに、ダウンのタイトな乳棒をゆっくりと上下に5回動かして、泡を避けながら細胞をシラミにします。次に、5マイクロリットルのEloquaのlys細胞懸濁液をeinorチューブに移し、10マイクロリットルのトライアンブルーと15マイクロリットルの1つのXPBSを追加します。
細胞溶液をスライドに加え、光学顕微鏡で細胞を溶解するために調べると、lys細胞の核は3オンス後に青く見えます。多数の生細胞が見えるため、十分な溶解がありません。5オンス後、十分な溶解があります。
最後に、lys細胞を予め冷却したeinor tubeに移し、細胞懸濁液をGの1500倍、摂氏4度のマイクロフージで5分間スピンダウンします。次に、ペレットを乱さずにスーパーナチンを新しいチューブに慎重に移します。次に、チューブのグラデーションを見て、パッチ核体積またはPNVを推定します。
マイクロピペットチップにPNVの半分の低塩バッファーを充填します。次に、マイクロピペットの先端をアイノアチューブの下部にある核に挿入します。緩衝液をゆっくりと核内に噴出させながら、穏やかに混合します。
チューブを静かにフリックして、ペレットが完全に再懸濁されていることを確認します。次に、PNVの半分に高塩分バッファーを追加し、チューブを反転させて1回すばやく混合します。チューブを摂氏4度で30分間回転させます。
最後に、マイクロフージで原子核を18,000倍Gと摂氏4度で15分間スピンダウンします。500マイクロリットルの上清を冷やしたマイクロコンに移すことから始めます。遠心分離後、高塩核抽出物を14,000倍Gおよび摂氏4度で15分間スピンダウンし、ミニラコンを反転させ、新しい個々のEORチューブに入れます。
Gの1000倍、摂氏4度で2分間回転させた後、高塩核抽出物は約115マイクロリットルに濃縮されます。次に、高塩核抽出物の45マイクロリットルアリコートをミニ透析SLIに移します。スライドの底がフローターの底と一緒であることを確認してください。
次に、SLIを500ミリリットルの冷却透析バッファーに入れます。最後に、アリコートを摂氏4度で1〜2時間攪拌すると、透析後に核抽出物が濁って見えます。この図は、共役RNAポリメラーゼの2つの転写反応と、小規模核抽出物とバルク核抽出物でのスライス反応を比較した代表的なデータを示しています。
A-C-M-V-D-N-Aコンストラクトをバルクまたはスモールスケールの抽出物でインキュベートすると、アルファとマニンを添加してさらなる転写をブロックした後の5分間の時点で、同程度のレベルの新生プレmRNAが合成され、スプライシング中間体とスプライス生成物は、両方のタイプの抽出物で同様の速度論で経時的に蓄積されました。これらの代表的な結果は、結合RNAポリメラーゼ2転写およびスプライシングシステムの効率が、バルク核抽出物と小規模核抽出物で類似していることを裏付けています。この小規模抽出物の有用性を実証するために、スプライシング阻害剤E7 1 0 7またはネガティブコントロール化合物Platy analy Fで処理したヘラ細胞から抽出物を調製し、次いで共役RNAポリメラーゼ2の転写およびスプライシングアッセイをこの図で示すように実施し、プレイドFおよびE7 1 0 7の両方から調製した抽出物で効率的にRNAポリメラーゼ2による転写を行った細胞。
対照的に、スプライシングは、分析F処理細胞から調製された抽出物では正常に起こったが、E7 1 0 7処理細胞では廃止された。これらのデータは、小規模の細胞の特別な処理に小規模の核抽出物を使用するための概念実証を提供します。一度習得すれば、このテクニックは5時間以内に完了することができます。
この記事では、少数の細胞を必要とするアッセイに有用な、頑強な小規模なHeLa核抽出物の準備プロトコルについて説明します。この方法は、様々な遺伝子発現アッセイや患者細胞を含む他の細胞タイプにも適用可能です。
Small-scale nuclear extract preparation enables functional gene expression assays from limited cell populations, supporting rapid evaluation of cellular responses to diverse treatments. This capability is critical for biopharma teams working with scarce patient samples, engineered cell lines, or drug-exposed populations where bulk extraction is impractical. The method enhances predictive confidence in early discovery and mechanistic de-risking by allowing direct assessment of transcription and splicing machinery under relevant conditions.
This method integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling functional gene expression assays from early target validation through translational research.