Name: 吸引脂肪から採取した脂肪由来間質細胞を使用したクリティカル·サイズの頭蓋冠欠損モデルの修復 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-31T10:03:00.000+00:00
Duration: 11 min 31 s
Description: 学ぶ 脂肪由来間質細胞の採取とマウス頭蓋冠欠損モデルへの応用手順。吸引脂肪から多能性細胞を単離し、三次元スキャフォールドに播種して骨再生を評価する再生医療手法です。

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我々は、我々の研究の支援とコラボレーションのための博士ジョージ·コモンズ博士とディーンVistnesに感謝したいと思います。セントジョセフマーシー病院GMEによってサポートされているこの作品は、歯科および頭蓋顔面研究助成1 R21はDE019274-01、R01EB009689およびRC2 DE020771-02、MTL博士ヒョンに小児再生医療のためのオーク財団とHagey研究所の国立研究所によってサポートされています。

1。細胞分離および増殖<ol><li>すべての患者の同意と実験プロトコルはスタンフォード大学の治験審査委員会（プロトコル＃2188と＃9999）によって検討され、承認された。 </li><li>一般的/局所麻酔下での選択科目lipoaspiration手続きからヒト皮下脂肪組織を取得します。 </li><li>吸引脂肪の2つの層（ 図1A）があるでしょう。上清は、処理細胞物質の大半が含まれています。底層は、主に生理食塩水が注入される。 脂肪由来間質細胞は、いずれかの層から採取したが、収量は清からはるかに大きいことができます。 </li><li>間質血管画分（SVF）を分離し、1Xの等量で広範囲に脂肪吸引を洗うベタジンずに1×PBS（x1）と等量のに続いて2.5％ベタジン（x2）を含む生理食塩水（PBS）、リン酸緩衝。沈殿に洗浄を可能にします。 </li><li>滅菌TEを維持するように注意してください処理されたヒト組織による汚染が起こることができるようにプロセス全体chnique。 </li><li>底層を吸引除去し、各洗浄後に破棄します。 </li><li> 50ミリリットルBDファルコンコニカルチューブに脂肪組織のアリコート15ミリリットル。 </li><li> 37℃ハンクス液でフィルタリング0.075%タイプIIコラゲナーゼの等量（15ml）中（HBSS）℃の水浴中で60分間一定の攪拌下（約180 /分を振る）と脂肪組織を消化 - 各チューブに15分ごとに換気を行ってください。 </li><li> 15ミリリットルPBSで4℃で5分間1,000 rpmで10％（ウシ胎児血清）FBS、遠心分離を含有する酵素活性を中和℃で高密度SVFペレットを得た。ペレットは、脂肪由来の間質細胞と赤血球のミックスになります。 </li><li>ペレットを中断することなく、上清を捨てる。 </li><li>伝統的な増殖培地（ダルベッコ改変イーグル培地[DMEM] / 10％FBS / 1％ペニシリン - ストレプトマイシン溶液）10ml中にペレットを再懸濁します。 </li><li>フィルタサスペンション<html>細胞残渣を除去するために100μmナイロンセルストレーナーを通してシオン。 </li><li> 1クリーン50mlコニカルチューブに3を兼ね備えています。 4℃で5分間1,000 rpmで遠心する</li><li>ペレットを中断することなく、上清を捨てる。 </li><li>伝統的な増殖培地5mlにペレットを再懸濁し</li><li> 1 10cmプレートまたは1 15cmのプレートのための5つの50ミリリットルconicalsごとに2つの50ミリリットルconicalsを兼ね備えています。 </li><li> 37°C/21％O 2、5％CO 2で一晩初代培養を確立します。 </li><li>一晩インキュベートした後、残留非付着赤血球を除去するためにPBSでプレートを洗浄する。得られた細胞集団は、脂肪由来の間質細胞である。 </li><li> 37°C/21％O 2、5％CO増殖培地中2で自発的分化を防止するためのサブコンフルエントレベルで細胞を維持。細胞は一般的に50％コンフルエントで播種したときに定期的な増殖培地で3〜4日ごとに分割する必要があります。 </li></ol>ve_title &quot;&gt; 2。足場の準備<ol><li>足場は、カリフォルニア大学ロサンゼルス校博士ミンリーによって作られた - 歯学部。 </li><li> PLGAの足場は、溶媒キャストおよび粒状浸出法によりポリ85/15（乳酸-co-グリコール酸）（固有粘度= 0.61（dl / g）で、バーミンガム·ポリマーズ）から作製した。 </li><li> PLGA /クロロホルムソリューションは92％の気孔率を（体積分率）を得るために、200から300μmの直径のスクロースと混合し、テフロン製の型に薄いシート状に圧縮した。 </li><li>一晩凍結乾燥した後、足場がスクロースを溶解させるために二重蒸留（DD）のH 2 O 3の変更に浸漬し、ゆっくりと精密チップ·スパチュラでテフロン板から削除されます。 </li><li>微粒子浸出した後、すべての足場は蒸留H 2 Oの3回のすすぎに続いて、30分ごとに50％、60％、70％エタノールに浸漬して消毒した</li><li>すべての足場は、層流フード下で乾燥した。 </li><li>足場製作、sの後にcaffoldsは、アパタイトを被覆した。 <ol class="ualpha"><li> SBF（擬似体液）溶液は、ヒト血漿のそれの5倍であったイオン濃度で調製した。すべてのソリューションは0.22μmのPES膜（ナルゲン）を通して濾過滅菌だった。直ちにコーティングプロセスの前に、乾燥したPLGAの足場は濡れおよびコーティングの均一性を向上させるためにグロー放電、アルゴンプラズマエッチング（Harrickサイエンティフィック）に供した。 </li><li>エッチングされたPLGA足場はその後37℃でインキュベートしたSBF°のMg 2に続いて12時間水ジャケットインキュベーターの中でC、+とHCO 3 - 37℃でさらに12時間のための無料のSBF 2℃穏やかに撹拌しながら。 </li><li>コーティングされたPLGAの足場は、層流フード内で乾燥させ、70％エタノールで消毒し、過剰の塩化ナトリウム溶液を洗い流すために、無菌ddH 2 Oで穏やかに洗浄した。 </li><li>アパタイトコーティングの完全性は、走査型電子顕微鏡（SEM）を用いて解析した。アパタイトでコーティングされたSCAffoldsは、SEMスタブ（テッド·ペラ）に搭載され、導電性を向上させるために炭素で被覆した。二次電子モードは、SEM（FEI /フィリップスXL-30）観察中に適用された。エネルギー分散X線スペクトルは、アパタイト構造の元素組成を確認するために得られた。 </li></ol></li></ol> 3。細胞播種<ol><li>サブ合流レベルに到達すると、PBS（×2）で細胞を洗浄し、トリプシン処理。 </li><li>シードするために定量化するために細胞数を数える</li><li> 1.5×10 5個の細胞を持つプレカット4.0 mm径の足場の上にシード。 <ol class="ualpha"><li> 96ウェルプレートのウェルに置き、個々の足場</li><li> メディアの20μlあたり約1.5×10 5細胞の濃度との定期的な増殖培地で再懸濁細胞 </li><li>足場と30分間、細胞培養インキュベーターに場所に直接ピペットで20μlの。 </li><li> 30分後、メディアを200μl加え、細胞がインキュベートすることができます手術前に一晩で足場</li><li>それは、大半が足場上に添付するのを確実にするでしょう十分な細胞数を播種すると足場の上に細胞の接着性を確保する必要はありません。これは、生物発光と組織学的分析を用いた in vivo で弊社ラボで検証されています。 </li></ol></li></ol> 4。頭蓋冠の欠陥の生成と生体内注入時の <ol><li>麻酔カクテルを持つ成人（60日齢）のCD-1ヌードマウスを麻酔。 （ケタミン/キシラジン/アセプロマジン）50％濃度（0.9％NaClで1:1希釈）で、または機関プロトコルあたりの推奨麻酔薬レジメンごと。 hASCsが免疫反応を引き起こすことはありませんので、これらのマウスは、無胸腺です。 <ol class="lalpha"><li>投与量：塩酸ケタミン（80 mg / kg）を、キシラジン（2.5 mg / kg）をアセプロマジン（2.5 mg / kg）を</li><li>効果の持続時間：約30分</li></ol></li><li>外科的に動物をドレープと手術を殺菌ベタジンおよびアルコール（×3）と敷地前に右頭頂骨を露出させるために動物の頭皮の正中矢状切開を作るために軟膏を使用して、マウスの目を覆う。鈍スクレイピング（ 図1B）と右頭頂骨から頭蓋骨膜を取り除きます。 </li><li>無菌性ダイヤモンド被覆の穿孔ドリルビットを使用して、右の非縫合関連する頭頂骨における一方的な4 mmの全層欠損を作成します。 細心の注意を払ってマウス頭蓋冠の厚さに応じて基本となる硬膜（図1B）を乱さないように注意しなければなりません &lt;0.3ミリメートルです。 </li><li>注入前に、培地由来成長因子の移動を防止するために滅菌PBSで足場をすすいでください。 </li><li>欠損部に足場を置きます。 </li><li>最後に、皮膚が閉じ縫合および確立術後のプロトコルごとに動物を監視します。 </li><li>術後、 例えば 、必要に応じて動物の世話·プロトコル監督として確立鎮痛薬を使用してください。ブプレノルフィン0.1 mgの/ Kグラム。 </li></ol> 5。類骨形成の定量<ol><li> MicroCTをマウスで行った後、3次元画像は前述の1としてMicroViewとソフトウェアを使用して再建された。 </li><li> Adobe Photoshopを使用して、画像は標準の高さ大きさとされた。 </li><li>魔法の杖の機能を使用すると、ピクセルは頭蓋冠の欠陥を測定した。 </li><li>欠陥の割合治癒はその後のCTスキャン頭蓋冠欠損面積を測定し、画素数を決定し、元の欠陥の画素数で割って算出された</li><li> MicroCTが使用できない場合はそのため、代替は、Adobe Photoshopを使用し、組織学のために決定された時点で頭蓋を収穫しています。 </li><li>類骨形成を示すアニリンブルーとPentachromeような組織学的な汚れを使用して、欠陥のスパンに沿った複数のセクションでは、ステンドグラスであるべき</li><li> Adobe Photoshopの、ではありませんすべてのエリア外に作物を使用して頭蓋冠欠損における</li><li>魔法の杖の機能を使用して、欠陥の領域でのde novo骨形成の画素数を決定し、コントロールまたは他の変数と比較します。 </li></ol> 6。代表的な結果脂肪組織は、臨床応用のための前駆細胞の生成に重要な役割を果たす可能性を秘めています。脂肪組織は、最小限の罹患率と死亡率を伴う比較的簡単な手順で収穫することができ、容易に利用可能な供給があるという点でユニークな利点を持っています。組織を採取し、収集されると、我々のプロトコルは、 図2に概説されている。脂肪由来の間質細胞は、洗濯の一連の手順、コラゲナーゼ消化し、遠心分離により単離されている。細胞が培養に播種されると、それらは、拡大して、in vitroで種々の分化プロトコルに入れ、またはin vivoで直接配置することができます。 C言語4ミリメートル臨界サイズの頭蓋冠欠損のreationは私たちの脂肪由来の間質細胞の骨分化能力を試験するin vivoモデルで簡単にアクセスして、再現性を提供します。 MicroCTを使用することにより、我々は、in vivoでの骨格組織の形成に従うと、私たちの介入の進捗状況（ 図3）を追跡することができます。重要なサイズの頭蓋冠の欠陥は、動物の生涯中に治らないし、我々は欠陥の約90％が8週間程度残る特許を参照してください。足場自体が（議論を参照）骨形成誘導特性を持っており、いくつかの骨の再生を誘導する能力を示してきた。細胞を含まない足場の配置の典型的な結果は、欠陥の約3分の1は、8週目でのde novo骨形成を持っていることを示しています。 variabはあるものの、脂肪由来の間質細胞の増強では、完全に欠陥の三分の二以上が約8週間で骨の再生が表示されます各動物と手術の間ility。骨格組織の形成は、組織学を介して定量化し、典型的な結果は、アニリンブルーとPentachrome染色（ 図3C）を介してASCを持つサンプルの増加類骨形成を示すことができます。加えて、我々は移植されたヒト細胞が頭蓋冠欠損におけるde novoの骨形成（ 図3D）の領域の近くに2週間でin vivoで染色を示すGFP標識hASCsの使用を介して基礎となるのde novo骨形成に寄与していることを示している。また、欠陥の面積（ 図3E）でヒト細胞の生存および貢献を示すために、ヒト特異的抗体を用いて免疫組織化学を使用しています。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/4221/4221fig1.jpg" /> 図1 -脂肪吸引は、2つの層を持っています。最上層は、脂肪細胞とPRの大部分が含まれて底層はlipoaspiration手順の実行時に使用し生理食塩水が入っている間に細胞材料をocesses。 B - 基礎と硬膜を破壊することなく、右頭頂骨、4ミリメートルサイズの頭蓋冠の重要な欠陥のその後の創作を分離するために、頭蓋骨膜上に正中切開を介して頭蓋冠欠損の創造。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/4221/4221fig2.jpg" /> 図2の進出、分化、in vitro および in vivo での使用に脂肪由来の間質細胞の単離から脂肪吸引の収穫とアプリケーションの概要。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/4221/4221fig3.jpg" /> 図3 HYDを通してASCのアプリケーションとの臨界サイズの頭蓋冠欠陥の in vivoでの治癒に示す-MicroCTroxyapatitie足場（下段）。 ASCの群で有意に増加治癒を示すMicroCTから骨性治癒の定量 - コントロールは細胞（中段）Bなしの足場の配置と全く足場と欠陥（上段）と、欠陥を含んでいません。 C - アニリンブルーとPentachrome染色を通じて、ASCグループ（下の行）の増加した類骨形成を示す組織学。アニリンブルー、類骨汚れダークブルー用とPentachrome、黄色の骨汚れ用。 D - GFPで標識hASCSは、足場上に播種し、頭蓋冠欠損部に配置し、2週目に屠殺した。染色は欠陥の領域で再生に貢献ヒト細胞を示すため、GFP標識した抗体を用いて行った。 E - 2週間で欠陥の領域でヒト細胞の有病率を示すヒト核抗原の免疫組織化学では、 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4221/4221fig3large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するには、ここをクリックしてください</a> 。

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特別な利害関係は宣言されません。

吸引脂肪から脂肪由来の間質細胞の単離2は 、これらの細胞は、細胞系統の多種多様に分化してきた。脂肪組織は中胚葉起源からであり、したがって、多能性脂肪由来間質細胞は、中胚葉系統に向かって可能性が高いアプリケーションで最も効果的であろう。骨格組織を生成する能力は、感染症、拒絶反応、および時間3以上の破壊を含む自家移植と合成材料の固有の限界のためにドナー部位の不足与えられた特に重要です。脂肪由来間質細胞は、外科収穫あたりの比較的大きな降伏4との潜在的な自家多能性細胞株を提供する。 間質血管画分と脂肪組織を処理しているときに、それは優れた滅菌技術を維持することが重要です。 lipoaのバルクの性質を与えられた初代培養の汚染の大きなリスクがあります無菌細胞培養フード外の手順で洗浄、消化、遠心分離の複数のステップと組み合わせるspirate。ペレットを皿の上にめっきされたら、表示されているセルの大半はeyrthrocytesなります。脂肪由来間質細胞がプレートに付着した場合や赤血球の溶解緩衝液を添加することができると、これらは無...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称： </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント（オプション） </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 収穫を脂肪吸引 </td></tr><tr><td> PBS </td><td>ギブコ</td><td> 10010-023 </td><td></td></tr><tr><td>ハンクス液</td><td> Cellgro </td><td> 21から023-CV </td><td></td></tr><tr><td>コラゲナーゼ</td><td>シグマ</td><td> C6885-500mgの</td><td></td></tr><tr><td>セルストレーナーは100μm </td><td> BDファルコン</td><td> 352360 </td><td></td></tr><tr><td> 0.22μmのフィルター絆創膏トップ500ミリリットル</td><td>ミリポア</td><td> SCGPT05RE </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 頭蓋冠の欠陥 </td></tr><tr><td> Z500ブラシレスMicromotorsUM50C </td><td>日本精工</td><td> NSKZ500 </td><td></td></tr><tr><td>円形のナイフ4.0ミリメートル</td><td> Xemax外科</td><td> CK40 </td><td></td></tr></tbody></table>

吸引脂肪から採取した脂肪由来間質細胞を使用したクリティカル·サイズの頭蓋冠欠損モデルの修復

Repair of a Critical-sized Calvarial Defect Model Using Adipose-derived Stromal Cells Harvested from Lipoaspirate

頭蓋顔面骨格の修復および再生には、幹細胞を用いた細胞ベースのアプローチによるde novoの組織形成の約束を提供しています。脂肪由来間質細胞（ASC）は、骨形成軟骨、脂肪細胞、筋原性と分化を受けることができる多能性幹細胞の豊富な供給源であることが証明された。多くの研究では、細胞送達のための様々な足場生体材料の使用により、生体内でのこれらの細胞の骨形成能を検討されている。それが実証されている骨伝導性ハイドロキシアパタイトでコーティングされたポリ（乳酸-co-グリコール酸）（HA-PLGA）のASCと足場シード、臨界サイズの頭蓋冠欠損、自発受けすることができない点で定義されている欠陥を利用することにより、動物の生涯にわたり癒し、効果的に堅牢な骨再生を表示することができます。 in vivoモデルこれは、骨組織を再生することを目的としたトランスレーショナルアプローチの根拠を示しています-携帯コンポーネントおよび生物学的マトリックス。このメソッドは、特定の組織の欠損の修復に向けた前駆細胞の究極的な臨床応用のためのモデルとして機能します。

このプロトコルは、吸引脂肪や骨格再生を評価するための重要な4ミリメートルサイズの頭蓋冠欠損の作成から脂肪由来の間質細胞の単離を説明します。

頭蓋顎顔面骨格の修復および再生は、幹細胞を利用した細胞ベースのアプローチを通じて、組織のデノボ（de novo）形成を実現させる可能性を秘めています。

本手順の全体的な目的は、マウスの生体内（in vivo）頭蓋骨欠損モデルを用いて骨分化を行うために、脂肪組織から多能性間葉系幹細胞を回収することです。まず、脂肪吸引後に得られる脂肪組織の血管間質画分から前駆細胞を単離します。次に、3次元的な基盤（バックボーン）を調製し、その足場（スキャフォールド）に細胞を播種します。最終ステップは、ラットモデルにおいて、スキャフォールドと細胞を配置するための臨界サイズの頭蓋骨欠損部を作製することです。最終的に、脂肪組織から単離した多能性間葉系幹細胞が、in vivoにおける骨格再生能を有することが示されました。骨格再生に利用可能な組織が不足しているため、本手法の応用範囲は臨床的に非常に幅広いと考えられます。自家骨移植はゴールドスタンダードである一方、採取部位の不足や採取部位における合併症がこの選択肢の制限となっている。同種移植や人工材料も使用可能だが、コスト、統合性の低さ、および感染のリスクが制限要因となる。骨組織工学のための前駆細胞の分離に、脂肪組織を利用できる可能性は非常に期待されています。本手順のデモンストレーションは、私とlong anchor laboratoryのMichael Chungが行います。まず、任意の手術による脂肪吸引処置から、ヒト皮下脂肪組織を入手します。脂肪吸引液に2つの層ができていることに注目してください。上清には、処理された細胞物質の大部分が含まれています。底層の大部分は注入された生理食塩水です。脂肪由来間質細胞はどちらの層からも回収可能ですが、上澄み液からの収率は大幅に高くなります。間質血管画分（SVF）を単離するには、まず脂肪吸引液を、2.5% Betadineを含む1×リン酸緩衝生理食塩水（PBS）と同量で十分に洗浄し、次にBetadineを含まない1×PBSと同量で吸引します。その後、洗浄液を沈殿させます。処理済みのヒト組織による汚染を防ぐため、全工程を通じて無菌操作を徹底してください。次に、各洗浄後に下層を吸引して廃棄します。その後、15 mLの脂肪組織を50 mLのFalconコニカルチューブに分注します。続いて、0.075%のフィルター済み溶液15 mLで脂肪組織を消化します。Hank's平衡塩溶液（HBSS）中のタイプ2コラゲナーゼを、恒温水槽を用いて37 °Cで60分間、絶えず撹拌しながら反応させ、15分ごとに必ずチューブ内の換気を行ってください。その後、10%胎児牛血清（FBS）を含むPBS 15 mLを加えて酵素活性を中和し、遠心分離します。これにより高密度のSVFペレットが得られますが、このペレットは脂肪由来幹細胞と赤血球の混合物となります。まず上層の脂肪層を取り除き、次にペレットを乱さないように上清液を除去します。ペレットを10 millilitersの標準的な増殖培地で再懸濁します。その後、3本のチューブの内容物を100 micronフィルターを通して1本の清潔な50 milliliterコニカルチューブにまとめ、遠心分離を行います。ペレットを乱さないように上澄み液を除去し、その後、ペレットを再懸濁します。従来の増殖培地 5 mL を使用し、10 cm プレート 1 枚につき 50 mL コニカルチューブ 2 本、または 15 cm プレート 1 枚につき 5 mL コニカルチューブ 5 本に分配します。37 °C、21% oxygen、5% carbon dioxide の条件下で、一晩静置して一次培養を行います。一晩インキュベートした後、プレートをPBSで洗浄し、付着しなかった残存赤血球を除去します。得られた細胞集団が脂肪由来間質細胞です。自然分化を防ぐため、細胞はサブコンフルエントな状態で維持してください。37 °C、21% oxygen、および5% carbon dioxideの条件下で培養します。増殖培地において、細胞は通常3〜4日ごとに通常の増殖培地で継代する必要があります。50% confluenceで播種した際に、付属の原稿で説明されている方法でスキャフォールドを準備します。細胞がサブコンフルエントの状態に達したら、PBSで2回洗浄し、トリプシン処理を行います。細胞数をカウントして定量します。播種にあたり、あらかじめカットした直径4 mmのスキャフォールドに1.5 × 10⁵個の細胞を播種できるよう準備します。個々のスキャフォールドを96ウェルプレートの1ウェルに配置し、次に、培地20 µLあたり約1.5 × 10⁵ cellsの濃度となるよう、通常の増殖培地で細胞を再懸濁します。この溶液20 µLをスキャフォールドに直接ピペッティングして細胞を播種し、これを細胞培養インキュベーター内に30分間静置します。30分後、200 µLの培地を加え、細胞をスキャフォールド上で一晩インキュベートします。手術前に、播種時に行うような細胞のスキャフォールドへの接着を確認する必要はありません。十分な数の細胞を播種していれば、その大部分がスキャフォールドに接着します。生後60日の成体CD-1ヌードマウスを麻酔後、手術部位をベタジンとアルコールで3回滅菌し、マウスの眼球に潤滑剤を塗布します。次に、マウスの頭皮に正中矢状切開を加え、右側頭頂骨を露出させます。鈍い掻爬によって、右側頭頂骨から骨膜を除去します。次に、右側の縫合線に関連しない頭頂骨に、直径4 mmの片側性全層欠損を作成します。マウスの頭蓋骨の厚さは植込み前で 0.3 mm 未満であるため、ダイヤモンドコーティングされたタインドリルビットを使用し、下層の硬膜を傷つけないよう細心の注意を払ってください。培地由来の成長因子の移行を防ぐため、スキャフォールドを滅菌 PBS で洗浄します。スキャフォールドを欠損部に配置します。最後に、皮膚を縫合して閉じ、確立された術後プロトコルに従って動物を観察します。マウスにmicro CTを行い、microviewソフトウェアを用いて3D再構成画像を取得します。Adobe Photoshopを使用して、画像を標準的な高さにサイズ調整します。通常、頭蓋冠再生の測定は2週間ごとに行います。長期的なフォローアップのためのスキャン中、マウスは麻酔状態で保持され、最終的に安楽死させます。組織学的解析では、マジックワンド機能を使用して頭蓋欠損部のピクセル数を測定します。その後のCTスキャンにより、欠損部の治癒率を決定します。頭蓋欠損部の面積を測定してピクセル数を算出し、それを元の欠損部のピクセル数で除します。欠損部の範囲に沿って複数の切片を作成し、アニリンブルーやペンアロなどの組織学的染色を用いて骨形成を標示します。Adobe Photoshopを使用して、頭蓋骨欠損部以外のすべての領域を切り取り、マジックツールを用いて欠損領域における新生骨形成のピクセル数を算出し、これをコントロール群または他の変数と比較します。ここに、脂肪由来幹細胞の分離から、その増殖、分化、そしてin vitroおよびin vivoでの利用に至るまでの、脂肪吸引物の採取と適用に関する概要を示します。最下段の画像は、ヒドロキシアパタイトスキャフォールドを介してASCを適用した際の、臨界サイズ頭蓋骨欠損部のin vivoでの治癒過程を示すマイクロCT画像です。上段に示されているコントロールには、スキャフォールドなしおよび欠損のみが含まれます。中段は、細胞を含まないスキャフォールドを配置した欠損状態を示しています。ここに示されているLSは、micro CTによる骨治癒の定量化であり、A SC群で治癒が有意に促進されていることを示しています。これは、andalによるA SC群の骨形成の増加を示す組織学的画像です。青色はalのAROM染色を示しています。青色において、骨様組織はpen aromで濃い青色に染色されます。ここで黄色に染色されている類骨は、GFPでラベル化しスカフォールドに播種したヒトASCであり、2週間後に採取したものです。欠損部位における再生に寄与しているヒト細胞を示すため、GFP標識抗体を用いて染色を行いました。ここでは、2週間後の欠損部位におけるヒト細胞の普及を示す、ヒト核抗原免疫化学染色の結果を示しています。習得すれば、脂肪組織の処理は4時間以内に完了でき、手術手順はマウス1匹あたり約10分で完了します。頭頂骨は丸みを帯びているのに対し、ドリルは平らであるため、4 mmの欠損部の全周を確実に穿孔できるよう注意が必要です。脳の硬膜を傷つけないよう、ゆっくりと作業してください。このビデオを視聴することで、脂肪組織から前駆細胞を分離する方法について十分に理解できるはずです。これらの細胞をスキャフォールドに播種し、マウスに移植します。

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吸引脂肪から採取した脂肪由来間質細胞を使用したクリティカル·サイズの頭蓋冠欠損モデルの修復

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