Name: マイクロアレイを用いた植物細胞壁ポリマーの糖鎖プロファイリング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-12-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 30 s
Description: 学ぶ植物細胞壁ポリマーの糖鎖プロファイリング法。マイクロアレイとモノクローナル抗体を用いて、多様な植物組織の糖鎖組成を比較・定量する包括的な手法です。

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IEMは資金調達のためにデンマークの研究評議会（FTPとFNU）を承認したいと思います。 ERLは、ARCのDP助成金の支援を認めている。 ABは、植物の細胞壁の助成金で優秀のARCセンターの支援を認めている。

1。組織収集＆準備<ol><li>関心のある各組織には、少なくとも三重に植物組織100 mgの生体重（10 mgの乾燥重量の最小値）を収集します。次の手順では、植物組織からの細胞壁物質の調製を記載している。貯蔵組織の場合には、非指名澱粉を酵素的に前述の13のような細胞壁ポリマーの抽出を続行する前に削除されます。 </li><li> 24チューブアダプタセットと3 mmのタングステンカーバイドビー​​ズ（30ヘルツ、2×30秒）で、キアゲンTissueLyserをIIを用いて液体窒素で微粉末にサンプルをホモジナイズする。唯一のいくつかのサンプルが処理されている場合、あるいは、乳鉢と乳棒を使用しています。 </li><li> 10ミリリットルプラスチックのコニカルチューブにホモジネートを転送します。 </li><li>室温で10ミリリットル80パーセントv / vエタノールでホモジネートを洗浄し、2分間激しくボルテックスすることによって細胞壁材料を準備します。 </li><li> 3500 xgでサンプルを遠心分離し、上清を捨てる。上澄みが透明になるまで70％エタノールが特にクロロフィルを含む組織のために、または少なくとも3回洗いを繰り返します。 </li><li> 100％アセトンで最終洗浄を行い、一晩空気乾燥する際には、アルコール性残留物（AIR）を含有するペレットを残す。 </li><li>ふるい0.4ミリメートル2メッシュを使用したAIRサンプルは罰金、均質な粉末を達成し、いつかホモジネートに残るほど、貧弱グラウンド粒子を除去する。 </li><li>マイクロチューブ、サンプルの混合を助けるために3ミリメートルのガラスビーズを含んだそれぞれに10mgのAIRサンプルを計量する。 </li></ol> 2。細胞壁糖鎖の抽出<ol><li>ペクチン、およびペクチンに関連付けられたポリマーは、各試料に50μMのCDTA液（pH7.5）500μlを加えてサンプルから抽出されます。 </li><li>簡潔にボルテックスチューブは溶媒が試料物質と接触していることを確認してから、8 Hzで3時間TissueLyserを用いて混合します。 </li><li>慎重に、12,000 xgでサンプルを遠心R4℃で上清と店を残したまま削除</li><li> 13000×gで残っている溶剤、ボルテックス、遠心を薄めて除去するために脱イオン水1ml中のペレットを洗浄します。ペレットを乱さずに、この手順を繰り返して、次のステップに進む前に、チューブから液体をすべて削除します。 </li><li> CDTA抽出のために2.4 - 架橋結合型糖鎖を順次ステップ2.1で説明したのと同じ手順を使用して、0.1％（w / v）の水素化ホウ素ナトリウムと4M NaOHを500μlの残りの細胞壁ペレットから抽出されます。 NaBH 4をそれによって多糖類の剥離を防止するベースアルコールに多糖類の還元末端にアルデヒド基（またはケト基）を低減するために追加されます。 </li><li>遠心分離後、上清を再び除去され、4℃で保存し、ペレットは、次の抽出に進む前に、脱イオン水で2回洗浄した。 </li><li>オプションの手順として、セルロースなどの残留性ポリマーは、500μlのcadoxen（31％v / vの1,2 - diamiで抽出する2.4 - 手順2.1で説明したのと同じ手順を使用して、0.78 MのCDOとnoethane）。代わりに、残りのペレットで絶対セルロース含有量は、酢酸/硝酸アッセイ（説明を参照してください）​​を使用して決定することができます。 </li></ol> 3。印刷マイクロアレイ<ol><li>任意の粒子状物質を除去するためにxgの13000で抽出された細胞壁ポリマーを含有する上清を遠心分離します。 </li><li>ウェルポリプロピレン384サンプルは、組織の種類と抽出の種類に応じて配置され、あらかじめデザインされたカスタムレイアウトを使用したマイクロタイタープレートに各サンプル50μlをロードします。 </li><li>脱イオン水で0,5、および25×シリアル希釈系列の細胞壁ポリマー試料を希釈します。 </li><li>そのようなピンの高さなどのパラメータは、収集および滞留時間、および洗浄工程は、マイクロアレイを制御するソフトウェアで設定されます。 </li><li>印刷室の湿度は、サンプルの蒸発を防ぐために60％に制御されます。 </li><li>印刷ジョブがLabNEXTソフト制を使用して開始されreとマイクロアレイのレイアウトに対応したプログラム。 </li><li>ロボットは機械で平板に取り付けられた20×20cmのニトロセルロース膜上にサンプルプレートから溶液をプリントする毛管チャネルピンを使用しています。アレイ上の各スポットは、溶液15 NLが含まれており、三重に印刷されています。 </li><li>印刷ジョブが完了した後、同一のマイクロアレイは、個々の配列への膜とカットで隣同士に印刷されます。 </li><li>各実験において、配列は多かれ少なかれサンプル、希釈または複製に対応するために修正することができます。 </li></ol> 4。糖鎖マイクロアレイのプロービング<ol><li>印刷後、非特異的結合を低減するために2時間、室温で生理食塩水（MPBS）をリン酸緩衝に溶解し5％w / vの脱脂粉乳で個々のマイクロアレイをブロック。 </li><li> MPBSで2時間の細胞壁糖鎖エピトープに特異的なモノクローナル抗体を用いたプローブのマイクロアレイ。モノクローナルantibの過半数細胞壁糖鎖に対するodiesは、次の3つの会社から市販されており、Biosupplies（ <a href="http://www.biosupplies.com.au" target="_blank">www.biosupplies.com.au</a> ）、Carbosourceサービス（ <a href="http://www.carbosource.net" target="_blank">www.carbosource.net</a> ）とPlantProbes（ <a href="http://www.plantprobes.net" target="_blank">www.plantprobes.net</a> ）。 </li><li>ネガティブコントロール、のみMPBS無一次抗体と共にインキュベートマイクロアレイを含む。 </li><li>マイクロアレイのリン酸塩で3回洗浄すると、非特異的な結合を除去するために5分間緩衝生理食塩水（PBS）。 </li><li> 2時間MPBSにおける西洋ワサビペルオキシダーゼ（HRP）に結合させた二次抗体を用いてマイクロアレイを探る。細胞壁糖鎖に対する最もモノクローナル抗体は抗マウスまたは抗ラット二次抗体を必要とします。 </li><li>非特異的結合を除去するために5分間3回PBS緩衝液での洗浄手順を繰り返します。 </li><li>発色（3,3 - ジアミノベンジジン）またはchemilを使用してマイクロアレイを開発uminecent（ルミノール）基板。 </li></ol> 5。定量化<ol><li>現像後、高解像度（1,200 dpiの）デスクトップスキャナを使用して、個々のマイクロアレイをスキャンして、負の、16ビットのTIFFファイル（ 図3）のように画像を保存します。 </li><li>自動グリッドツールを搭載画像処理ソフトウェア（LabNEXT）Xplore使用して、各スポットの積分強度を計算します。インテグラルスポット強度は、各スポットを囲むグリッド領域内のピクセルの合計から導出されます。 </li><li>各マイクロアレイのグリッドデータをtxtファイルとしてエクスポートされ、手動で解析するためのExcelスプレッドシートにインポートすることができます。オンラインツール（ <a href="http://arraytemplates.charliehart.com.au/" target="_blank">http://microarray.plantcell.unimelb.edu.au/は</a> ）自動的に翻訳して、個々のtxtファイルからのデータを処理するために開発されました。 </li><li>インテグラルスポット強度は &#39;平均スポットを得るために、印刷複製し、希釈液で平均化されている各サンプルの強度&quot;の値（ 図2）。代わりに、アレイ上のちょうど1希釈値に対応するスポット信号は、各サンプルの相対的な糖鎖エピトープの存在量を定量化するために使用されています。 </li><li>異なるサンプル間の相対的な平均スポット強度は、Excelまたはオンラインヒートマッパーツール（で条件付き書式を使用してヒートマップ（ 図4）として提示されている<a href="http://bar.utoronto.ca/welcome.htm" target="_blank">http://bar.utoronto.ca/welcome.htm</a> ）。各抗体の種類のデータを100に修正され、5％のカットオフ値は、バックグラウンド信号と誤検出を​​除去するために課せられています。 </li></ol>

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</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

CoMPPは、数日のうちに何百もの植物由来のサンプルの糖組成をプロファイリングするための迅速かつ高感度な方法である。この方法は、レクチン、受容体、抗体16と糖結合タンパク質と糖の相互作用のハイスループットスクリーニングのためにすでに利用可能な細菌または哺乳動物糖鎖アレイ·プラットフォームを補完します。細胞壁糖鎖を検出するための利用可能なプローブの大きな多様性と、それは植物の細胞壁8,9の多糖類のすべての主要なクラスに属するグリカンエピトープに関する詳細な情報を得ることが可能である。しかし、これらは8,9確認されている糖鎖構造のわずかな割合を包含し、いくつかの事情でCoMPPのわかりやすさを制限します。それにもかかわらず、この機能は最近植物グリカン17に対して、また、非グリコシル解像度によって特徴付けエピトープに対する糖結合モジュールの使用（CBMS）によって拡張されましたそのようなグリコシル残基を変更し、糖鎖機能に重要な役割を果たしているフェノール類18とアセチル残19としてidues。 <p c...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント（オプション） </td></tr><tr><td> 3 mmのタングステンカーバイドビー​​ズ</td><td>キアゲン</td><td> 69997 </td><td></td></tr><tr><td>コレクション·マイクロチューブ（1.2ミリメートル） </td><td>キアゲン</td><td> 19560 </td><td> 1.5 mlのマイクロチューブを使用することもできます</td></tr><tr><td>キアゲンTissueLyserを世</td><td>キアゲン</td><td> 85300 </td><td></td></tr><tr><td> 3ミリのガラスビーズ</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> Z143928 </td><td></td></tr><tr><td> CDTA </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 34588 </td><td></td></tr><tr><td>酸化カドミウム</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 202894 </td><td></td></tr><tr><td> 1,2 - ジアミノエタン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 03550 </td><td></td></<html> TR&gt; <tr><td>ニトロセルロース膜（孔径0.22μmのサイズ） </td><td> GEウォーター＆プロセス·テクノロジー</td><td> EP2HY00010 </td><td>異なる大きさの細孔膜は異なるピンタイプに適しています</td></tr><tr><td> XACT IIマイクロアレイロボット</td><td> Labnext </td><td> 001A </td><td>トランザクション配信IIのロボットは、ニトロセルロース膜が添付されているカスタム20×20センチメートルセラミックプレートが取り付けられていた</td></tr><tr><td> RMのマイクロアレイ上のアイコンをXTEND </td><td> Labnext </td><td> 0037-350 </td><td>ピンは、膜上スポッティングに適していなければならない</td></tr><tr><td> 384ウェルマイクロタイタープレート（ポリプロピレン） </td><td>グライナー</td><td> 781207 </td><td></td></tr><tr><td>抗糖鎖モノクローナル抗体</td><td>植物プローブ/ CarboSource / Biosupplies </td><td></td><td>ウェブサイト; PlantProbes（ <a href="http://www.plantprobes.net" target="_blank">www.plantprobes.net</a> ）、Carbosource（ww.carbosource.net &quot;ターゲット=&quot; _blank &quot;&gt; www.carbosource.net）とBiosupplies（ <a href="http://www.biosupplies.com.au" target="_blank">www.biosupplies.com.au</a> ）。 </td></tr><tr><td>抗ラットIgG（全分子） - ヤギで産ペルオキシダーゼ抗体。 </td><td>シグマ</td><td> A9037 </td><td>二次抗体の種類（ 例えば 、ラット、マウス、ヤギなどで提起された）を使用し、一次抗体に依存します。 </td></tr><tr><td> SIGMA FAST 3,3 &#39; -ジアミノベンジジン錠</td><td>シグマ</td><td> D4293 </td><td>試薬の開発のタイプは、使用される二次抗体および検出方法（colourmetric、またはchemiluminecent）に依存します。 </td></tr><tr><td> SuperSignalウェスト·ピコ化学発光基質</td><td> Thermoscientific </td><td> 34080 </td><td>上記を参照</td></tr><tr><td>画像処理ソフトXplore </td><td> LabNext </td><td> 008 </td><td>自動グリッド化ツールを使用して、多くのソフトウェアの種類がありますマイクロアレイのスポットの画素値を測定します。 </td></tr><tr><td>植物性多糖類</td><td>シグマ/ Megazyme </td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

マイクロアレイを用いた植物細胞壁ポリマーの糖鎖プロファイリング

Glycan Profiling of Plant Cell Wall Polymers using Microarrays 

植物の細胞壁は、植物の生理と発展に重要な役割を果たしており、人間社会のために原材料を提供異種糖鎖の複雑なマトリックス（ 例えば、木材、紙、繊維、バイオ燃料産業）1,2です。しかし、これらの成分の生合成と機能を理解することは困難なままである。 細胞壁糖鎖は、化学とその構築ブロック、グリコシル残基の複雑さに起因するコンフォメーションが多様である。これらのフォームの複数の位置に結合およびリング構造が異なり、異性体またはアノマー配置されているだけでなく、無糖残基の配列で置換されている。グリカンの組成物は、単一細胞壁3の異なる細胞および/ ​​または組織型あるいはサブドメインに変化する。さらに、それらの組成物はまた、開発1時、または環境手がかり4に対応して変更されます。 EXで2000遺伝子の目的税は、植物の細胞壁は、異種の糖鎖の複雑なマトリックスシロイヌナズナ 5で細胞壁糖鎖の生合成と修飾に関与することが予測された多数持っています。しかし、生合成遺伝子の比較的少ないが、機能的に4,5特徴付けられてきた。遺伝子はしばしば差別的細胞型6の間に、多くの場合、低レベルで発現しているので、逆遺伝学的ア ​​プローチが困難である。また、変異体の研究は、多くの場合、適切な細胞壁機能は7に維持されていることを確認するために、遺伝子の冗長性または代償機構によって妨げられている。したがって、新たなアプローチが急速に糖鎖構造の多様な範囲を特徴づけるために理解と細胞壁の生合成と修飾に機能ゲノミクスアプローチを容易にするために必要とされる。 モノクローナル抗体（mAb）8,9は、植物の糖鎖構造と分布を決定するための重要なツールとして浮上している。これらは、dist認識ペクチン、キシログルカン、キシラン、マンナン、グルカンやアラビノガラクタンを含む植物細胞壁糖鎖の主要なクラス内に存在INCTエピトープ。最近、それらの使用は植物や組織の種類を同時に9,10,11の広い範囲で糖鎖の相対量を決定するために、大規模なスクリーニング実験にも拡張されました。 ここでは、複数のサンプル（100秒）が減少した試薬及びサンプル量で小型化されたマイクロアレイプラットフォームを用いてスクリーニングすることができる包括的なマイクロアレイポリマープロファイリング（CoMPP）（ 図1および2）10,11と呼ばれるマイクロアレイベースグリカンスクリーニング法を提案する。マイクロアレイ上のスポット信号は正式に糖鎖エピトープの発生に関する半定量的データを与えるために定量することができる。このアプローチは、複雑な生物システム12の糖鎖変化を追跡し、細胞壁組成のグローバルな概観を提供することに適している場合は特に事前知識Ofはこれができません。

ニコチアナダイジョの花から6種類の組織における糖鎖の相対的な存在量（葯フィラメント、花粉、卵巣、花弁、萼片と偏見）がCoMPPを用いて決定した。図3Aは、部分的に（低）メチルエステル化homogalacturonan（HG）、ペクチン多糖類14日に発生したエピトープに対して特異的mAb JIM5でプロービングされた代表的なマイクロアレイを示しています。 JIM5エピトープは、しかし、柱頭組織中の花粉や最下位（ 図3Aおよび4A）で最も高く、すべての花の組織のCDTA抽出物中に検出されます。興味深いことに、JIM5エピトープはまた、花粉ではなく、他の組織中のNaOH抽出物（ 図3A）で検出される。 興味のある糖鎖の発生に関する定量的な情報は、マイクロアレイ上の内部標準（ 図3B）として精製された多糖類のシリーズを含むことによって得られる。異なるトンの抽出物の積分スポット強度<html> mAbのJIM5でプロービングの問題がhomogalac...

と呼ばれる手法<strong&gt; C</strong&gt; omprehensive<strong&gt; M</strong&gt; icroarray<strong&gt; P</strong植物細胞壁糖鎖の特性評価のための&gt; olymerプロファイリング（CoMPP）について説明する。この方法は、生物学的な文脈の広い範囲で発生したグリカンのスクリーニングを可能にする小型のマイクロアレイ分析プラットフォームで定義された糖鎖エピトープに対するモノクローナル抗体の特異性を兼ね備えています。

植物の細胞壁は不均一なグリカンの複雑なマトリックスであり、植物の生理機能および成長において重要な役割を果たし、また...を提供している。

本手順の全体的な目的は、グリカンマイクロアレイを用いて、幅広い植物種または組織タイプにおける細胞壁ポリマー組成を比較することです。まず、目的の植物組織を採取します。ホモジナイズ後、アルコール不溶性残渣を調製します。次に、CDTAおよび水酸化ナトリウムを用いて細胞壁グリカンを順次抽出します。その後、ロボットを用いて細胞壁グリカン抽出物をマイクロアレイにプリントします。細胞壁グリカンに対するモノクローナル抗体でマイクロアレイをプローブし、マイクロアレイ上のスポット信号を定量します。最終的に、これらの結果を用いて、目的のサンプルセットにおける糖鎖エピトープの相対的な存在量を決定することができます。私たちは、複数の植物組織タイプにおける細胞壁糖鎖の出現状況を同時にグローバルに把握し、組成の違いを検出する必要があると考え、このマイクロアレイ法を開発しました。したがって、単糖分析などの従来の手法に対する本手法の主な利点は、マイクロアレイベースのプラットフォームであるため、数百のサンプルを同時にスクリーニングできる点にあります。これは、細胞壁組成をプロファイリングするための迅速かつ包括的な手法です。目的の各組織について、液体窒素を用いて生重量 100 milligrams の植物組織を3連サンプルで準備します。サンプルを均質化して微粉末にし、細胞壁材料を調製するために、均質化したものを10 milliliterのプラスチック製コニカルチューブに移します。均質化したものを室温で10 millilitersの80%ethanolに再懸濁し、2分間激しくボルテックスします。サンプルを3,500 times Gで遠心分離し、上清を捨てます。70% ethanolによる洗浄を、上清が透明になるまで少なくとも3回繰り返します。その後、100% acetoneで最終洗浄を行います。アルコール不溶性残渣をパレットに広げ、一晩風乾させて、微細で均質な粉末にします。アルコール不溶性残渣サンプルを0.4 millimeter squaredのメッシュで篩い分けます。次に、混合用の3 mmのガラスビーズが入ったマイクロチューブに、アルコール不溶性残渣サンプルを10 mgずつ秤量して加えます。ペクチンおよびペクチン関連ポリマーを抽出するため、各サンプルに50 mMのCDTAを500 µL加え、チューブを短時間ボルテックスした後、Tissueizerを用いて8 Hzで3時間混合します。その後、サンプルを12,000 ×gで遠心分離します。G.上清を慎重に取り除き、4°Cで保存する。ペレットを1 mLの脱イオン水で2回洗浄する。残った細胞壁ペレットから、チューブ内のすべての液体を取り除く。0.1% 水化水素ナトリウムを含む 4 M 水酸化ナトリウム 500 µL を用いて、架橋グリカンの抽出を行います。前述の抽出手順に従い、架橋グリカンを含む上清を 4 °C で保存します。ペレットを脱イオン水で2回洗浄してください。次に、500 µLのCainを用いて、セルロースなどの残留ポリマーを抽出します。遠心分離を行い、抽出された細胞壁ポリマーを含む上清を回収して、粒子状物質を除去します。その後、組織型および抽出法に基づいてサンプルを配置した専用のカスタムレイアウトに従い、各サンプル50 µLをポリプロピレン製384ウェルマイクロタイタープレートに分注します。次に、細胞壁ポリマー試料を脱イオン水で希釈し、0倍、5倍、25倍の連続希釈液を調製します。マイクロアレイのピン高さ、回収量、ドウェルタイム、および洗浄ステップなどのパラメータを設定します。試料の蒸発を防ぐため、プリンティングチャンバーの湿度を60%に制御します。印刷を開始します。ロボットはキャピラリーチャンネルピンを使用して、サンプルプレートから装置内のフラットプレートに貼付されたニトロセルロース膜上へ溶液をプリントします。アレイの各スポットには15 nanolitersの溶液が含まれ、3連（トリプリケート）でプリントされます。同一のマイクロアレイをメンブレン上に隣接してプリントし、個別のアレイに切り分けます。非特異的結合を抑制するため、各マイクロアレイを5%スキムミルク溶液中で室温で2時間ブロッキングします。細胞壁グリカンおよびエピトープに特異的なモノクローナル抗体を添加し、2時間インキュベートする。次に、非特異的結合を除去するため、マイクロアレイをPBSで5分間、3回洗浄する。その後、PBSで5分間の洗浄を3回行い、西洋わさびペルオキシダーゼ（HRP）標識二次抗体を用いてマイクロアレイを2時間プローブする。発色性または化学発光性基質を用いてマイクロアレイを現像します。高解像度デスクトップスキャナーを使用して、個々のマイクロアレイをスキャンします。画像はネガの16 bit TIFFファイルとして保存してください。自動グリッドツールを備えたexplore画像処理ソフトウェアを用いて、各スポットの積分強度を算出します。次に、各マイクロアレイのグリッドデータをテキストファイルとしてエクスポートします。解析のため、データファイルをExcelスプレッドシートに手動でインポートします。印刷の繰り返し回数および希釈系列におけるスポットの積分強度を平均し、各サンプルの平均スポット強度値を算出します。異なるサンプル間の相対的な平均スポット強度を、Excelの条件付き書式またはオンラインのヒートマップ作成ツールを用いてヒートマップとしてプロットします。抗体種ごとのバックグラウンド信号および偽陽性を除去するツールを使用し、データを100に補正して5%のカットオフ値を適用します。包括的なマイクロアレイポリマープロファイリングを用いて、Nicotianaの6種類の組織（葯、花糸、花粉、子房、花弁、花柱）における多糖類の相対的な存在量を測定しました。多くの花組織が用いられており、マイクロアレイはペクチン多糖類のエピトープに特異的なモノクローナル抗体JIM5でプローブされました。なお、JIM5エピトープは、すべての花組織のCDTA抽出物において検出されます。しかしながら、それは花粉で最も高く、柱頭組織で最も低くなります。興味深いことに、JIM fiveエピトープは花粉の水酸化ナトリウム抽出物でも検出されましたが、他の組織では検出されませんでした。定量的な情報は、子房組織のマイクロアレイ上で内部標準として処理された、さまざまな精製多糖類の標準曲線を作成することによって得られます。各サンプルにはJIM 5エピトープを含むhoogが約157 µg含まれており、これは全細胞壁残渣の約1.5%に相当した。一方、花粉組織にはJIM 5エピトープを含むhoog Roninが625 µg含まれており、全細胞壁残渣の約6.25%に相当した。全組織における15種類の糖鎖エピトープの相対的な存在量をヒートマップとしてまとめている。カラーバーの強度は、各サンプルの補正済み平均スポット強度に比例している。これらのデータを図示することで、異なる花組織間における糖鎖エピトープの出現頻度の差を迅速に解釈することが可能になります。これらの結果は、個々の糖鎖エピトープがさまざまな花の種類の間で特異的に分布していることを示しています。例えば、LM 13エピトープは、他の組織と比較して、葯のフィラメントおよびSE L組織において最も豊富に存在しています。このパターンは、MAB LM6によって優先的に検出される短鎖エピトープのパターンとは著しい対照をなしています。架橋糖鎖もまた、多くの花において特有の出現パターンを示します。例えば、LM10エピトープは他の組織に比べて柱頭組織に豊富に存在しますが、子房組織には存在しません。LM 15 xog グリカンエピトープは、他の組織と比較して花弁および葯糸で最も高く、一方でヘテロマンナンは葯糸で最も高くなります。このビデオを視聴することで、広範な植物種および組織型において、細胞壁グリカンを抽出および相対量を決定する方法について十分に理解できるはずです。マイクロアレイを用いたこの手法は、一度習得すれば3日間で完了させることができます。本手順に従い、各工程においてサンプルおよびレプリケートを一貫して扱うことが重要です。さらに詳細な検討を行うには、酢酸硝酸法などの他の分析手法を用いることができます。例えば、CDTAおよび水酸化ナトリウムを用いてペクチンおよびコンシルベランを連続的に抽出した後に、どれだけの絶対セルロース量が残存しているかといった疑問を検討する場合などが挙げられます。この手法は植物細胞生物学の分野で幅広く応用可能であり、ArabidopsisやFisca、Nutellaなどのモデル植物に加え、綿、小麦、ユーカリ、タバコなどの糖鎖の出現状況を迅速に比較することができます。

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Research

JoVE Journal

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生物学

植物バイオマスは、バイオ燃料の生産に使用できる主要なカーボンニュートラルな再生可能な資源です。植物バイオマスは、主に細胞壁、リグノセルロースと呼ばれる構造的に複雑な複合材料で構成されています。ここでは、壁由来の炭水化物の含有量と組成の包括的な分析のためのプロトコルについて説明します。...

植物細胞壁の包括的な組成分析（リグノセルロース系バイオマス）パートII：炭水化物

迅速な方法は、細胞外マトリックス中の多糖類の構造についての洞察を得るために説明されています。方法はglycosylhydrolasesの特異性と材料の微量を分析できるように質量分析の感度を利用しています。この手法は、組織自体に直接使用するための適応です。...

細胞外多糖のオリゴマスプロファイリング（オリンプ）

結晶性セルロースは、植物の細胞壁の重要な構成要素です。しかし、細胞分解能での定量化は技術的に困難です。...

結晶セルロース蓄積中の高解像度の定量化<em&gt;シロイヌナズナ</em&gt;ルーツは、組織特異的な細胞壁の変更を監視します

このプロトコルは、酵素(エンドキシラナーゼ)加水分解の前にREを2つのアミノベンザミドでタグ付けし、その後、質量分析(MS)および核磁気共鳴(NMR)を使用して得られたオリゴ糖を分析することにより、ヘテロキシランの還元末端(RE)および内部領域のグリコシル配列の構造特性評価に使用される特定の技術について説明しています。...

酵素的、化学（メチル化）と物理（質量分析、核磁気共鳴）技術を用いた植物の壁ヘテロキシランのシーケンシング

マンナン ペースを用いた植物細胞壁多糖の構造解析

簡便・迅速な準備と大根 (ダイコン)...

ダイコン品種使用 PNGase H+からN型糖鎖の解析

多次元固体 NMR 分光法と動的核スピン偏極 (DNP) 調査の13C、15N...

真菌の準備、動的核偏極固体 NMR を用いた構造解明のための植物素材

このプロトコルは、アラビノガラクタンタンパク質およびペクチンの免疫局在化のための植物材料が固定され、親水性アクリル樹脂に埋め込まれ、切り離され、ガラススライドに取り付けられる方法を詳細に記述する。我々は、細胞壁関連エピトープが特定の抗体で検出されることを示す。...

植物組織の細胞壁におけるアラビノガラクタンタンパク質およびペクチンの蛍光免疫局在化

マイクロアレイポリマープロファイリング(MAPP)は、生体サンプル中の糖鎖の組成分析のためのハイスループット技術です。...

ハイスループット糖鎖分析のためのマイクロアレイポリマープロファイリング(MAPP)

マイクロアレイを用いた細菌の遺伝子発現解析

学ぶ植物細胞壁ポリマーの糖鎖プロファイリング法。マイクロアレイとモノクローナル抗体を用いて、多様な植物組織の糖鎖組成を比較・定量する包括的な手法です。

マイクロアレイを用いた植物細胞壁ポリマーの糖鎖プロファイリング

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